Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tính chất giải phẫu bệnh và vi tế bào của bệnh leishmaniasis da ở Tatera indica và Gerbillus spp. nhiễm Leishmania major
Tóm tắt
Leishmaniasis da (CL) là một bệnh zoonotic lây truyền giữa động vật gặm nhấm và chó, chủ yếu do ruồi cát Phlebotomus và con người. Tại khu vực miền nam Iran, tỷ lệ mắc bệnh này đã tăng gấp đôi trong thập kỷ qua. Nghiên cứu hiện tại đề cập đến những đặc điểm giải phẫu bệnh của CL ở Tatera indica và Gerbillus spp. có vai trò trong dịch tễ học của CL ở miền nam Iran. Ba mươi hai con gặm nhấm bị bắt đã được đánh giá về sự nhiễm Leishmania bằng phương pháp điện di enzyme và phản ứng chuỗi polymerase, đồng thời được nghiên cứu về mọi thay đổi giải phẫu bệnh. Các nghiên cứu giải phẫu bệnh cho thấy tủy xương là mô được chọn để nghiên cứu bằng kính hiển vi sáng và điện tử về Leishmania, cho thấy các thực bào bị nhiễm dạng amastigote của ký sinh trùng. Đây là báo cáo đầu tiên về sự phát hiện giải phẫu bệnh của L. major ở T. indica và Gerbillus spp. nhiễm tự nhiên trong khu vực Larestan.
Từ khóa
#leishmaniasis da #Tatera indica #Gerbillus #L. major #giải phẫu bệnh #vi môTài liệu tham khảo
Aguilar-Torrentera F, Glaichenhaus N, Laman JD, Carlier Y (2001) T-cell responses to immunodominant LACK antigen do not play a critical role in determining susceptibility of BALB/c mice to Leishmania mexicana. Infect Immun 69:617–621
Aguilar-Torrentera F, Lambot MA, Laman JD, Meurs MV, Kiss R, Noel JC, Carlier Y (2002) Parasitic load and histopathology of cutaneous lesions, lymph node, spleen, and liver from BALB/c and C57BL/6 mice infected with Leishmania mexicana. Am J Trop Med Hyg 66:273–279
Andrade ZA, Reed SG, Roters S, Sadigursky M (1984) Immunopathology of experimental cutaneous Leishmaniasis. Am J Pathol 114:137–148
Aransay AM, Scoulica E, Tselentis Y (2000) Detection and identification of Leishmania DNA within naturally infected sand flies by seminested PCR on minicircle kinetoplastic DNA. Appl Environ Microbiol 66:1933–1938
Ashford RW (2000) The leishmaniases as emerging and reemerging zoonoses. Int J Parasitol 30:1269–1281
Barral-Netto M, de Freitas LA, Andrade ZA (1987) Histopathologic changes induced by vaccination in experimental cutaneous Leishmaniasis of BAIB/c mice. Am J Pathol 127:271–278
Bryceson ADM (1969) Diffuse cutaneous leishmaniasis in Ethiopia: I. The clinical and histological features of the disease. Trans R Soc Trop Med Hyg 74:508–521
Davies EV, Singleton AM, Blackwell JM (1988) Differences in Lsh gene control over systemic Leishmania major and Leishmania donovni or Leishmania mexicana infections are carried by differential targeting to infiltrating and resident liver macrophage populations. Infect Immun 56:1128–1134
De Souza VL, Souza JA, Silva TMC, Veras PST, de-Freitas LAR (2000) Different Leishmania species determine distinct profiles of immune and histo pathological responses in CBA mice. Microbes Infect 2:1807–1815
Desjeux P (2001) The increase in risk factors for leishmaniasis worldwide. Trans R Soc Trop Med Hyg 95:239–243
Destombes P (1960) Application du concept de “systematization polaire” aux leishmaniases cutanees. Bull Soc Pathol Exot 53:299–301
Edrissian G, Zovein Z, Nadim A (1982) A simple technique for preparation of smears from the ear of Rhombomys opimus for the detection of leishmianial infection. Trans R Soc Trop Med Hyg 76:706–707
Eisenberg JF, Redford K (1999) Mammals of the Neotropics. The central Neotropics: Ecuador, Peru, Bolivia, Brazil, vol. 3. University of Chicago Press, Chicago, IL
Evans DA (1989) Handbook on isolation, characterization and cryopreservation of leishmania. United Nations development programmed World Bank/World Health Organization, Geneva
Hall JO (1988) Pathophysiology of experimental leishmaniasis: the role of parasite physiology in the development of metastatic disease. Am J Trop Med Hyg 39:256–260
Hall LR, Titus RG (1995) Sand fly vector saliva selectively modulates macrophage functions that inhibit killing of Leishmania major and nitric oxide production. J Immunol 155:3501–3506
Hertig M, Fairchild GB, Johnson CM (1975) Leishmaniasis transmission reservoir project. Ann Rep Gorgas Mem Lab 9:110
Kahl L, Bryam JE, David JR et al (1991) Leishmania (Viannia) braziliensis: comparative pathology of golden hamsters infected with isolates from cutaneous and mucousal lesions of patients residing in Tres Bracos, Bahia, Brazil. Am J Trop Med Hyg 44:218–232
Lache TE Jr, Mares MA, Alho CJR (1989) The structure of a small mammal community in a central brazilin Savanna. In: Redford KH, Eisenberg JF (eds) Advances in neotropical mammalogy. The Sandhill Crane, Gainesville, FL, pp 137–162
Mehrabani D, Motazedian MH, Oryan A, Asgari Q, Hatam GR, Karamian M (2007) Microscopical and PCR-based detection and identification of Leishmania major in Tatera indica and rodents of the genus Gerbillus in search of its reservoir in the Larestan Region, Fars Province, southern Iran. Ann Trop Med Parasitol 101(4):315–322
Moody ATSF, Handman E (1993) Persistence of virulent Leishmania major in murine cutaneous leishmaniasis: a possible hazard for the host. Infect Immun 61:220–226
Motazedian MH, Karamian M, Noyes HA et al (2002) DNA extraction and amplification of Leishmania form archived, Giemsa-stained slides, for the diagnosis of cutaneous Leishmaniasis by PCR. Ann Trop Med Parasitol 96:31–34
Neva F, Sacks D (1990) Leishmaniasis. In: Warren K, Sacks D (eds) Tropical and geographical medicine. McGraw-Hill, New York, NY, pp 296–300
Rasmusson B, Descoteaux A (2004) Contribution of electron and confocal microscopy in the study of Leishmania–macrophage interactions. Microsc Microanal 10:656–661
Reiner SL, Locksley RM (1995) The regulation of immunity to Leishmania major. Annu Rev Immunol 13:151–177
Ridley DS (1987) Pathology. In: Preters W, Killick-Kendrick R (eds) The Leishmaniases in biology and medicine. Academic, London, pp 665–701
Ridley DS, Ridley MJ (1984) Late-stage cutaneous Leishmaniasis: immunopathology of tubercloid lesions in skin and lymph nodes. Br J Exp Pathol 65:337–346
Ridley DS, Marsden PD, Cuba CC, Barreto AC (1980) A histological classification of mucocutaneous leishmaniasis in Brazil and its clinical evaluation. Trans R Soc Trop Med Hyg 74:508–514
Roberts M, Alexander J, Blackwell JM (1989) Influence of Lsh, H-2, and an H-11-linked gene on visceralization and metastasis associated with Leishmania mexicana infection in mice. Infect Immun 57:875–881
Roberts M, Alexander J, Blackwell JM (1990) Genetic analysis of Leishmania mexicana infection in mice: single gene (Scl-2) controlled predisposition to cutaneous lesion development. J Immunogenet 17:89–100
Theodos CM, Titus RG (1993) Salivary gland material from the sand fly Lutzomyia longipalpis has an inhibitory effect on macrophage function in vitro. Parasite Immunol 15:481–487
Titus RG Ribeiro JMC (1990) The role of vector saliva in transmission of arthropod-borne diseases. Parasitol Today 6:157–160
World Health Organization (1984) The Leishmaniases. Report of a WHO Expert Committee. Technical Report Series no. 793. WHO, Geneva