Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Các tham số huyết học và sinh hóa huyết thanh của dê lùn Tây Phi được cho ăn chế độ ăn tập trung dựa trên lá sắn khô
Tóm tắt
Nghiên cứu này được thực hiện để điều tra tác động của việc cho ăn với các mức độ khác nhau của lá sắn khô ở 0%, 20%, 40% và 60%, lần lượt, sử dụng cỏ guinea làm thức ăn chính, lên các tham số huyết học và sinh hóa huyết thanh của dê lùn Tây Phi (WAD). Nghiên cứu kéo dài trong 116 ngày, trong thời gian đó các tham số huyết học và sinh hóa huyết thanh được theo dõi ở 40 con dê đực trước và sau, sử dụng thiết kế hoàn toàn ngẫu nhiên. Tại thời điểm bắt đầu thí nghiệm, thể tích tế bào đóng gói (PCV) dao động từ 21,5% đến 25,5% trong khi nồng độ hemoglobin (Hb) và hồng cầu (RBC) có sự khác biệt đáng kể (P < 0,01) dao động từ 7,3 đến 8,6 g/dl và 10,4 đến 13,2 × 1012/l, tương ứng. Số lượng bạch cầu giảm đáng kể (P < 0,05) từ 16,4 đến 11,7 × 109/l khi mức độ lá sắn khô trong khẩu phần tăng lên. Vào cuối thí nghiệm, có sự gia tăng nhẹ trong các giá trị PCV và Hb trong khẩu phần (P > 0,05). Số lượng lympho giảm đáng kể (P < 0,05) từ 50,0% đến 63,5% trong khẩu phần. Tuy nhiên, bạch cầu trung tính tăng lên (P > 0,05) từ mức 0% đến 40% và giảm ở mức 60% khi bổ sung lá sắn khô. Tại thời điểm bắt đầu thí nghiệm, giá trị glucose có sự khác biệt đáng kể (P < 0,05) dao động từ 40,1 đến 56,0 mg/dl. Giá trị protein tổng số và albumin có sự khác biệt đáng kể (P < 0,05) dao động từ 56,0 đến 68,5 g/dl và 30,6 đến 38,4 g/dl, tương ứng. Vào cuối thí nghiệm, creatinine huyết thanh tăng lên đáng kể (P < 0,05) khi mức độ lá sắn khô trong khẩu phần tăng từ 0% đến 60%. Nghiên cứu cho thấy rằng việc bổ sung lá sắn khô vào khẩu phần của dê lùn Tây Phi không có tác động có hại đến các tham số huyết học và sinh hóa huyết thanh của dê WAD và do đó có thể được đưa vào khẩu phần của động vật nhai lại lên đến 60%.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
A.O.A.C., 1995. Association of Official Analytical Chemists. Official Methods of Analysis. 16th Edition, Washington DC.
Ajala, O. O., Oyeyemi, M. O., Oke, A. O., Alakpa, C. O., 2000. Haematological and biochemical parameters in West African dwarf (WAD) bucks fed diets containing Milletia thonningii. African Journal of Biomedical Research, 3, 121–124.
Balikci, E., Yildiz, A., Gurdogan, F., 2007. Blood metabolite concentrations during pregnancy and post-partum in Akkaraman ewes. Small Ruminant Research, 67, 247–251.
Bauer, T.D., Ackermann, P.G., and Toro, G., 1974. Methods in clinical chemistry. Clinical laboratory methods. The C.V. Mosley Company, Saint Louis, P. 946.
Belewu, M. A., Ogunsola, F. O., 2010. Haematological and serum indices of goat fed fungi treated Jatropha curcas kernel cake in a mixed ration. Journal of Agricultural Biotechnology and Sustainable Development, 2(3), 035–038.
Benjamin, M.M., 1978. Outline of Veterinary Clinical Pathology, 2nd edition. Iowa State University Press, Iowa, U.S.A., 35–105
Bousnes, R., Taussky, H.H., 1945. Colorimetric determination of creatinine by Jaffe reaction. Journal of Biochemistry, 158, 581–591.
Daramola, J. O., Adeloye, A. A., Fatoba, T. A., Soladoye, A. O., 2005. Haematological and biochemical parameters of West African dwarf goats. Livestock Research for Rural Development. Vol. 17 Retrieved from http://www.cipva.org.co/lrrd/lrrd17/8/dara17095.htm.
Ekpenyong, T. E., Biobaku, W. O., 1986. Growth response of rabbits fed activated sewage and dried poultry waste. Journal of Applied Rabbit Research, 1, 14–16.
Esugbohungbe, O. O. and Oduyemi, A.O., 2002. Comparisons of nutritional potentials of Terminalia catappa and Acalypha wilkesiana leaves as sole feed for goats. In: Proceedings of the 27th Annual Conference of the Nigerian Society of Animal Production, Federal University of Technology, Akure, Nigeria. 205–208
Fraser, C.M. and Mays, A., 1986. The Merck Veterinary Manual. A handbook of diagnosis, therapy and disease prevention and control for the Veterinarian. Sixth Edition. Merck & Co., Inc. Rahway, New Jersey, USA, 905–908
Ganong, W.F., 2001. Review of Medical Physiology. 20th Edition. Lange Medical Book. McGraw Hill Medical Publishing Division, San Fransisco, Pp. 408–515.
Gomez, A. K. and Gomez, A. A., 1983. Statistical procedures for agricultural research, Second edition. International Rice Research Institute, The Philippines.
Jain, N. C., 1986. Schalman’s Veterinary Haematology, 4th edition. Lea and Babings, Philadelphia, P. A., USA, 208–224
Lazzaro, J., 2001. Normal blood chemistry values for adult goats. www.saanendoah.com/bloodvalues.html.
Ledin, I., Ngo Tien Dung, Nguyen, T.M., 2005. Effect of replacing a commercial concentrate with cassava hay (Manihot esculenta crantz) on the performance of growing goats. Animal Feed Science and Technology, 119 (3–4), 271–281.
MAFF (Ministry of Agriculture, Fisheries and Food)., 1984. Energy Allowances and Feeding Systems for Ruminants, Second edition. Chalcombe Publications, Marlow, UK.
Oluremi, O. I. A., Ngi, J., 2006. Evaluation of dried cassava leaf meal and maize offal as supplements for goats fed rice straw in dry season. Livestock Research for Rural Development, 18(9).
Opara, M.N. and Fagbemi, B.O., 2009. Dietary influences of feed types on the haematological indices of captive-reared grasscutters experimentally infected with Trypanosoma congolense. In: Proceedings of the 10th Biennial Conference of the Society for Tropical Veterinary Medicine, June 28-July 3, Lubeck, Germany, 63–67.
Opara, M.N., Udevi, N., Okoli, I.C., 2010. Haematological Parameters and Blood Chemistry of Apparently Healthy West African Dwarf (WAD) goats in Owerri, South Eastern Nigeria. New York Science Journal, 3 (8), 68–72.
Orheruata, A. M., Akhuomobhogbe, P. U., 2006. Haematological and blood biochemical indices in West African dwarf goats vaccinated against Pestes des petit ruminants (PPR). African Journal of Biotechnology, 5(9), 743–748.
Radostits, O. M., Blood, D.C. and Gay, C.C., 1994. Veterinary medicine, 8th Edition, Bailliere Tindall, London. 1786.
SPSS., 1999. Statistical Package for Social Sciences. Procedures and facilities for release. McGraw-Hill Book Co. NY.
Taiwo, V.O., Ogunsanmi, A.O., 2003. Haematology, plasma, whole blood and erythrocyte biochemical values of clinically healthy captive-reared grey duiker (Sylvicarpa grimmia) and West African dwarf sheep and goats in Ibadan, Nigeria. Israel Journal of Veterinary Medicine. 58(2–3), Retrieved from: http://www.isrvma.org/article/58_2_3.htm
Tambuwal, F.M., Agale, B.M. and Bangana, A., 2002. Haematological and biochemical values of apparently healthy Red Sokoto goats. In: Proceedings of the 27th Annual conference of the Nigerian Society for Animal Production (NSAP), 17–21 March 2002, Federal University of Technology, Akure, Nigeria. 50–53
Tanwar, R.K., Tinna, N.K., Gahlot, A.K. and Sharma, S.N., 2000. Biochemical profile of clinical ketosis in goats. In: Proceedings of the 7th International Goat Association (IGA), Toulouse, France, 306–307
Tavares-Dias, M., Oliveira-Ju´ nior, A., Marcon, J.L., 2008. Methodological limitations of counting total leukocytes and thrombocytes in reptiles (Amazon turtle, Podocnemis expansa): An analysis and discussion. Acta Amazonica, 38, 159–163.
Van Soest, P. J., Robertson, J. B., Lewis, B. A., 1991. Methods for dietary fibre, neutral detergent fibre and non-starch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science, 74, 3583–3597.
Varley, H., Van, E. and Kass I., 1980. Practical clinical chemistry, New York, Inter Science Publishers Inc. 197 – 240
Zapata, B., Fuentes, V., Bouacic, C., Gonzalez, B., Villouta, G., Bas, F., 2003. Haematological and clinical biochemical findings in captive juvenile guanacos (Lama guanacoe Muller, 1976) in Central Chile. Small Ruminant Research, 48, 15–21.