Gnomoniopsis smithogilvyi: xác định, phân loại và tỷ lệ mắc của tác nhân chính gây thối nâu trên trái hạt dẻ ngọt (Castanea sativa) sau thu hoạch tại Chile

Springer Science and Business Media LLC - Tập 17 - Trang 1-3 - 2022
Viviana Cisterna-Oyarce1, Jorge Carrasco-Fernández1, Jean Franco Castro1, Cecilia Santelices1, Violeta Muñoz-Reyes1, Paz Millas1, Alan G. Buddie2, Andrés France1
1Instituto de Investigaciones Agropecuarias (INIA), Chillán, Chile
2CABI, Surrey, UK

Tóm tắt

Chúng tôi mô tả việc xác định lần đầu tiên Gnomoniopsis smithogilvyi gây ra bệnh thối nâu trên trái hạt dẻ ở Chile, với tỷ lệ mắc bệnh là 4,8%. Trước đây, Phomopsis castanea (IMI 278057) đã được báo cáo là nguyên nhân gây ra bệnh này tại Chile, nhưng việc nhận dạng lại bằng phương pháp phân tử đã tiết lộ rằng nó tương ứng với G. smithogilvyi. Tất cả các trái hạt dẻ được cấy nhiễm với dòng G. smithogilvyi RGM 2903 đã phát triển các triệu chứng thối nâu.

Từ khóa

#Gnomoniopsis smithogilvyi #thối nâu #hạt dẻ ngọt #Chile #tỷ lệ mắc bệnh

Tài liệu tham khảo

Carbone I, Kohn LM (1999) A method for designing primer sets for speciation studies in filamentous ascomycetes. Mycologia 91(3):553–556. https://doi.org/10.1080/00275514.1999.12061051 Curran J, Driver F, Ballard JWO, Milner RJ (1994) Phylogeny of Metarhizium: analysis of ribosomal DNA sequence data. Mycol Res 98(5):547–552. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80478-4 Dennert FG, Broggini GAL, Gessler C, Storari M (2015) Gnomoniopsis castanea is the main agent of chestnut nut rot in Switzerland. Phytopathol Mediterr 54(2):199–211. https://doi.org/10.14601/Phytopathol_Mediterr-14712 Lione G, Danti R, Fernandez-Conradi P, Ferreira-Cardoso JV, Lefort F, Marques G, Meyer JB, Prospero S, Radócz L, Robin C, Turchetti T, Vettraino AM, Gonthier P (2019) The emerging pathogen of chestnut Gnomoniopsis castaneae: the challenge posed by a versatile fungus. Eur J Plant Pathol 153:671–685. https://doi.org/10.1111/ppa.13451 Lione G, Giordano L, Sillo F, Gonthier P (2015) Testing and modelling the effects of climate on the incidence of the emergent nut rot agent of chestnut Gnomoniopsis castanea. Plant Pathol 64(4):852–863. https://doi.org/10.1111/ppa.12319 Maresi G, Oliveira Longa CM, Turchetti T (2013) Brown rot on nuts of Castanea sativa Mill: an emerging disease and its causal agent. IFOREST 6(5):294–301. https://doi.org/10.3832/ifor0952-006 Montealegre J, González S (1986) Hongos causantes de pudriciones en frutos de Castanea sativa Mill. Simiente 56(3–4):166–169 O’Donnell K, Kistler HC, Cigelnik E, Ploetz RC (1998) Multiple evolutionary origins of the fungus causing Panama disease of banana: concordant evidence from nuclear and mitochondrial gene genealogies. Proc Natl Acad Sci USA 95(5):2044–2049. https://doi.org/10.1073/pnas.95.5.2044 Shuttleworth L, Liew ECY, Guest D (2012) Gnomoniopsis smithogilvyi sp. nov. Fungal Planet Description Sheets 107–127. Persoonia 28:138–182. Pers Mol Phylogeny Evol Fungi 28:42–43. https://www.ingentaconnect.com/contentone/nhn/pimj/2012/00000028/00000001/art00011 Shuttleworth LA, Guest DI, Walker DM (2018) The fungus the Code and the mysterious publication date: why Gnomoniopsis smithogilvyi is still the correct name for the chestnut rot fungus. IMA Fungus 9(2):A78–A79. https://doi.org/10.1007/BF03449443 Shuttleworth LA, Liew ECY, Guest DI (2013) Survey of the incidence of chestnut rot in south-eastern Australia. Australas Plant Pathol 42(1):63–72. https://doi.org/10.1007/s13313-012-0170- Smith H, Ogilvy D (2008) Nut rot in chestnuts. The Australian Nutgrower 2:10–15 Trifinopoulos J, Nguyen L-T, von Haeseler A, Minh BQ (2016) W-IQ-TREE: a fast online phylogenetic tool for maximum likelihood analysis. Nucleic Acids Res 44(W1):W232–W235. https://doi.org/10.1093/nar/gkw256 Washington WS, Hood V, Stewart-Wade S (1999) Phomopsis castanea, a seed-borne endophyte in chestnut trees. Aust J Bot 47(1):77–84. https://doi.org/10.1071/BT97023 White T, Bruns T, Lee S, Taylor J, Innis M, Gelfand D, Sninsky J (1990) Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: Innis MA, Gelfand DH, Sninsky JJ, White TJ (eds) PCR - Protocols and Applications - A Laboratory Manual, vol 31. Academic Press, New York, pp 315–322