Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Sự không ổn định di truyền trong quá trình nhân bản phôi của cần tây
Tóm tắt
Các mô được đánh dấu di truyền của cần tây (Apium graveolens) đã được sử dụng để so sánh tính ổn định di truyền và nhiễm sắc thể trong các mô cuộn được chuyển liên tục và các cây tái sinh. Sau sáu tháng trong môi trường nuôi cấy, 84% tế bào mô cuộn không khác biệt về mặt nhiễm sắc thể so với tế bào bình thường, trong khi phần còn lại thể hiện sự mất và/hoặc hợp nhất nhiễm sắc thể. Tất cả 50 giống cây con được lấy từ mô này đều thể hiện kiểu hình kiểm soát liên quan đến các dấu hiệu isozyme dị hợp. Trong số 95 cây được tái sinh từ cùng một mô, 94 cây không khác biệt về kiểu hình so với nguồn tủy ban đầu, và phân tích sinh lý nhiễm sắc cho thấy có sự hiện diện của nhiễm sắc thể bổ sung ở 4,3%, trong khi phần còn lại là lưỡng bội bình thường. Phân tích con cháu tự thụ phấn của các cây tái sinh này cho thấy sự hiện diện của một đột biến lặn mới gây ra hình thái lá bất thường với tần suất 1,8%. Chỉ có một trong 40 tế bào trong mô cuộn 12 tháng tuổi là không khác biệt về mặt nhiễm sắc thể so với bình thường, phần còn lại chủ yếu là các tế bào hạ diploid. Sự quan sát rằng tất cả 50 giống cây con đều có kiểu hình dị hợp là không nhất quán về mặt thống kê với giả thuyết rằng hạ diploid có liên quan đến sự mất nhiễm sắc thể hoàn toàn ngẫu nhiên. Môi trường nuôi cấy đã, tại thời điểm này, mất khả năng tái sinh. Có giả thuyết rằng việc nhân bản phôi của cần tây có thể phù hợp trong một số điều kiện nhất định để thiết lập trực tiếp trong ruộng, nhưng mức độ biến đổi di truyền mới đủ cao để loại trừ việc sử dụng nó cho sản xuất hạt giống.
Từ khóa
#cần tây #tái sinh #di truyền #nhiễm sắc thể #biến dị gen #đột biếnTài liệu tham khảo
Arus P, Orton TJ (1984) Inheritance patterns and linkage relationships of eight genes of celery. J Hered 75:11–14
Bayliss MW (1980) Chromosomal variation in plant tissues in culture. Int Rev Cytol 11A:113–143
Browers MA, Orton TJ (1982) A factorial study of chromosomal variability in callus cultures of celery (Apium graveolens). Plant Sci L 26:65–73
Browers MA, Orton TJ (1982) Transmission of gross chromosomal variability from suspension cultures into regenerated celery plants. J Hered 73:159–162
Crisp P, Walkey DGA (1974) The use of aseptic meristem culture in cauliflower breeding. Euphytica 23:305–312
Engler DE, Grogan RG (1984) Variation in lettuce plants regenerated from proto-plasts. J Hered 75:427–430
Fujii DS (1982) In vitro progagation of celery (Apium graveolens L.). M. S. Thesis, University of Californis, Davis, CA (U.S.A.)
Honma S (1959) A method for celery hybridization. Proc Am Soc Hort Sci 73:345–348
Larkin PJ, Scowcroft WR (1981) Somaclonal variation: A novel source of genetic variability from cell cultures for crop improvement. Theoret Appl Genet 60:197–214
Lassner MW, Orton TJ (1983) Detection of somatic variation. In: Tanksley SD, Orton TJ (eds), Isozymes in Plant Genetics and Breeding; Part A, Amsterdam: Elsevier pp 209–218
Lawrence RHJr (1981) In vitro plant cloning systems. Env Exptl Bot 21:289–300
Marks GE (1978) The consequences of an unusual Robertsonian translocation in celery (Apium graveolens var dulce). Chromosoma 69:211–218
Murata M, Orton TJ (1983) Chromosome structural changes in cultured celery cells. In Vitro 19:83–89
Murata M, Orton TJ (1984) G-band like differentiation in mitotic prometaphase chromosomes of celery. J Hered 75:225–228
Ogihara Y (1981) Tissue culture in (Haworthia IV: Genetic characterization of plants regenerated from callus. Theoret Appl Genet 60:353–363
Orton TJ (1980) Chromosomal variability in tissue cultures and regenerated plants of Hordeum. Theoret Appl Genet 56:101–112
Orton TJ (1983) Genetic variation in somatic tissues — method or madness? Adv Plant Pathol 2:153–189
Orton TJ (1983) Spontaneous electrophoretic and chromosomal variability in callus cultures and regenerated plants of celery. Theoret Appl Genet 67:17–24
Orton TJ (1984) Celery and celeriac (Apium graveolens) In: Sharp WR, Evans DA, Ammirato PV, Yamada Y (eds), Handbook of Plant Cell Culture, Vol. 2, New York: Macmillan pp 243–267
Orton TJ, Durgan ME, Hulbert SD (1984) Studies of the inheritance of resistance to the Fusarium yellows pathogen of celery. Plant Disease 68:574–578
Pullman GS, Rappaport L (1983) Tissue culture—induced variation for Fusarium yellows. Phytopathol 73:818
Rappaport L (1980) Cloning celery for plant propagation, inducing variation, and screening for disease resistance. In: Pusateri F (ed), California Celery Research Program-1978–1979 Annual Report, Bakersfield, CA: Calif Celery Res Advisory Board pp 29–33
Sacristan MD, Melchers G (1969) The caryological analysis of plants regenerated from tumorous and other callus cultures of tobacco. Molec Gen Genet 105:317–333
Sharma AK, Bhattacharyya NK (1959) Further investigations on several genera of Umbelliferae and their interrelationship. Genetica 30:1–62
Shields CR, Orton TJ, Stuber CW (1983) An outline of general resource needs and procedures for the electrophoretic separation of active enzymes from plant tissues. In: Tanksley SD, Orton TJ (eds), Isozymes in Plant Genetics and Breeding; Part A, Amsterdam: Elsevier pp 443–468
Takatori FH, Murashige T, Stillman JI (1968) Vegetative propagation of asparagus through tissue culture. Hort Sci 3:20–22
Vallejos CE (1983) Enzyme activity staining. In: Tanksley SD, Orton TJ (eds), Isozymes in Plant Genetics and Breeding: Part A, Amsterdam: Elsevier pp 469–516
Williams L, Collin HA (1976) Embryogenesis and plantlet formation in tissue cultures of celery. Ann Bot 40:325–332
Williams L, Collin HA (1976) Growth and cytology of celery plants derived from tissue cultures. Ann Bot 40:333–338