Tính Chất Chức Năng Của Các Chủng Lactobacillus plantarum Được Tách Chiết Từ Sản Phẩm Sữa Lên Men Truyền Thống Của Người Maasai Tại Kenya

Current Microbiology - Tập 56 - Trang 315-321 - 2008
Julius Maina Mathara1,2, Ulrich Schillinger1, Phillip M. Kutima2, Samuel K. Mbugua3, Claudia Guigas1, Charles Franz1, Wilhelm H. Holzapfel1
1Institute of Hygiene and Toxicology, Federal Research Centre for Nutrition and Foods (BfEL), Karlsruhe, Germany
2Department of Food Science and Technology, Jomo Kenyatta University of Agriculture and Technology, Nairobi, Kenya
3Department of Food Technology and Nutrition, University of Nairobi, Nairobi, Kenya

Tóm tắt

Lactobacillus plantarum là loài chủ yếu trong số các chủng vi khuẩn axit lactic được tách chiết từ sữa lên men truyền thống của người Maasai ở Kenya. Các chủng được chọn đã được đặc trưng hóa về các tính chất chức năng thông qua các quy trình tiêu chuẩn in vitro. Tất cả các chủng đều thể hiện khả năng chịu axit ở pH 2.0 sau 2 giờ tiếp xúc với giá trị dao động từ 1% đến 100%, trong khi khả năng chịu mật của các tế bào bị căng thẳng axit ở 0.3% oxgal thay đổi từ 30% đến 80%. Khả năng bám dính in vitro vào dòng tế bào tiết nhầy HT 29 MTX và khả năng gắn kết với các ma trận protein ngoài tế bào đã được chứng minh ở một số chủng. Bốn chủng được thử nghiệm trong quá trình giả lập đoạn dạ dày-tá tràng đã sống sót với tỷ lệ phục hồi dao động từ 17% đến 100%. Các chủng này có khả năng kháng lại một số kháng sinh đã được thử nghiệm. Từ những nghiên cứu in vitro này, một số chủng Lb. plantarum tách chiết từ sữa lên men truyền thống của người Maasai cho thấy tiềm năng probiotic. Các chủng này là những ứng viên tốt cho việc phát triển chế phẩm khởi đầu đa chức năng.

Từ khóa

#Lactobacillus plantarum #sữa lên men #Maasai #probiotic #tính chất chức năng

Tài liệu tham khảo

Cebeci A, Gürakan C (2003) Properties of potential probiotic Lactobacillus plantarum strains. Food Microbio 20:511–518 Charteris WP, Kelly PM, Morelli L, Collins JK (1998) Antibiotic susceptibility of potentially probiotic Lactobacillus species. J Food Pro 61:1636–1643 De Vries MC, Vaughan EE, Kleerebezem M, de Vos WM (2006) Lactobacillus plantarum survival, functional and potential probiotic properties in the human intestinal tract. Int Dairy J 16:1018–1028 Doyle RJ, Rosenberg M (1995) Measurement of microbial adhesion to hydrophobic substrata. Methods Enzymol 253:542–550 FAO-WHO (2002) Guidelines for the Evaluation of Probiotics in Food Report of a Joint FAO/WHO Working Group on Drafting Guidelines for the Evaluation of Probiotics in Food London Ontario, Canada April 30 and May 1, 2002 Gilliland SE, Staley TE, Bush LJ (1984) Importance of bile tolerance of Lactobacillus acidophilus used as a dietary adjunct. J Dairy Sci 67:3045–3051 Goldstein EJC, Citron DM, Merriam CV, WarrenY, Tyrrell LL (2000) Comparative in vitro activities of ertapenem (MK-0826) against 1001 anaerobes isolated from human intra-abdominal infections. Antimicrob Agents Chemo 44:2389–2394 Haller D, Colbus H, Gänzle MG, Scherenbacher P, Bode C, Hammes WP (2001) Metabolic and functional properties of lactic acid bacteria in the gastro-intestinal ecosystem: A comparative in vitro study between bacteria of intestinal and fermented food origin. Syst Appl Microbiol 24:218–226 Holzapfel WH (2002) Appropriate starter culture technologies for small-scale fermentation in developing countries. Int J Food Microbiol 75:197–212 Hummel AS, Hertel C, Holzapfel WH, Franz CAMP (2007) Antibiotic resistances of starter and probiotic strains of lactic acid bacteria. Appl Environ Microbiol 73:730–739 Hydrominus B, Le Marrec C, Hadj Sassi AH, Deschamps A (2000) Acid and bile tolerance of spore forming lactic acid bacteria. Int J Food Microbiol 61:193–197 Kostinek M, Sprecht I, Edward VA, Pinto C, Egounlety M, Sossa C, Mbugua S, Dortu C, Thonart L, Mengu M, Franz CMAP, Holzapfel WH (2007) Characterisation and biochemical properties of predominant lactic acid bacteria from fermenting cassava for selection as starter cultures. Int J Food Microbiol 114:342–351 Lorca G, Torino MI, de Valdez GF, Ljungh A (2002) Lactobacilli express cell surface proteins which mediate binding of immobilized collagen and fibronectin. FEMS Microbiol Lett 206:31–37 Mathara JM, Schillinger U, Kutima PM, Mbugua SK, Holzapfel WH (2004) Isolation, identification and characterisation of dominant microorganisms of Kule naoto: the Maasai traditional fermented milk in Kenya. Int J Food Microbiol 64:269–278 National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS) (1990) Methods of antimicrobial susceptibility testing of anaerobic bacteria, second edition. Approved standard MII-AZ. Philadelphia: Villanova Ouwehand AC, Kirjavainen PV, Grönlund MM, Isolauri E, Salminen SJ (1999) Adhesion of probiotic microorganisms to intestinal mucus. Int Dairy J 9:623–630 Parvez S, Malik KA, Ah Kang S, Kim HY (2006) Probiotics and their fermented food products are beneficial for health. J Appl Microbiol 100:1171–1185 Schillinger U, Guigas C, Holzapfel WH (2005) In vitro adherence and other properties of lactobacilli used in probiotic yoghurt-like products. Int Dairy J 15:1289–1297 Temmerman R, Pot B, Huys G, Swings J (2003) Identification and antibiotic susceptibility of bacterial isolates from probiotic products. Int J Food Microbiol 81:1–10 Vinderola CG, Reinheimer JA (2003) Lactic acid starter and probiotic bacteria: a comparative “in vitro” study of probiotic characteristics and biological barrier resistance. Food Res Int 36:895–904 Vizoso Pinto MG, Franz CMAP, Schillinger U, Holzapfel WH (2006) Lactobacillus spp. with in vitro probiotic properties from human faeces and traditional fermented products. Int J Food Microbiol 109:205–214 Vizoso Pinto MG, Schuster T, Briviba K, Watzl B, Holzapfel WH, Franz CM (2007) Adhesive and chemokine stimulatory properties of potentially probiotic Lactobacillus strains. J Food Prot 70:125–134 Zareba TW, Pascu C, Hryniewicz W, Wadström T (1997) Binding of extracellular matrix proteins by enterococci. Curr Microbiol 34:6–11