Phân tích phát sinh chủng loại đầu tiên của bộ gen virus sốt xuất huyết Crimea-Congo trong dịch ngoài tự nhiên trên ve Rhipicephalus appendiculatus (Acari: Ixodidae)

Archives of Virology - Tập 160 - Trang 1197-1209 - 2015
Mohammad Reza Fakoorziba1, Ali Asghar Naddaf-Sani1, Mohammad Djaefar Moemenbellah-Fard1, Kourosh Azizi1, Sara Ahmadnia2, Sadegh Chinikar3
1Department of Medical Entomology and Vector Control, Research Centre for Health Sciences, School of Health, Shiraz University of Medical Sciences, Shiraz, Iran
2Department of Veterinary Sciences, School of Veterinary Medicine, University of Shiraz, Shiraz, Iran
3National Reference Laboratory for Arboviruses and Viral Hemorrhagic Fevers, Pasteur Institute of Iran, Tehran, Iran

Tóm tắt

Sốt xuất huyết Crimea-Congo (CCHF) là một bệnh virus toàn thân có khả năng gây tử vong ở nhiều nơi trên thế giới, trong đó có Iran. Từ năm 2002 đến 2012, tỷ lệ mắc CCHF ở người tại các khu vực dịch tễ đã ghi nhận 870 ca bệnh xác nhận với 126 ca tử vong (tỷ lệ tử vong, CFR = 17,6%). Việc phát hiện bộ gen virus CCHF (CCHFV) trong các vector ve là cực kỳ quan trọng để xác định những loài ve này là những bể chứa tiềm năng của CCHFV. Từ tháng 5 đến tháng 10 năm 2013, sau khi phát hiện bốn ca bệnh lâm sàng mới dẫn đến hai ca tử vong tại thành phố Mashhad (đông bắc Iran), ve cứng đã được thu thập từ gia súc bị nhiễm ở 40 làng thuộc tỉnh Khorasan-Razavi và đã được kiểm tra bằng phương pháp kính hiển vi để xác định loài. Khoảng một phần tư số ve sau đó đã được thực hiện phản ứng chuỗi polymerase phiên mã ngược (RT-PCR) để phát hiện bộ gen CCHFV. Sản phẩm PCR sau đó đã được giải trình tự và dòng phylogenetic của chúng đã được xác định. Tổng cộng có 407 ve cứng đã được bắt, đại diện cho bảy loài khác nhau thuộc hai chi khác nhau. Các thành viên của chi Hyalomma phân bố rộng rãi ở tất cả các làng trừ hai làng đã nghiên cứu, và đây cũng là chi ve phổ biến nhất (83,3%). Trong số 105 ve trưởng thành được thực hiện RT-PCR, bốn (3,8%) ve được tìm thấy dương tính với bộ gen CCHFV. Đây là lần đầu tiên một ve tai nâu, Rhipicephalus appendiculatus, được phát hiện nhiễm tự nhiên ở bất kỳ đâu trên thế giới. Các loài ve Hyalomma asiaticum, Hyalomma marginatum, và Rhipicephalus turanicus cũng được tìm thấy nhiễm tự nhiên với CCHFV. CCHFV được phát hiện trong bốn loài ve khác nhau này đã được phân nhóm trong cùng một dòng với các chủng Matin và SR3 từ Pakistan và một số chủng khác từ Iran, cho thấy rằng các loài ve này đã được nhiễm tự nhiên với CCHFV có mối quan hệ di truyền gần gũi trong khu vực. Sự hiện diện của nhiễm CCHFV trong bốn loài ve cứng khác nhau đã được xác nhận bằng cách sử dụng RT-PCR ở đông bắc Iran. Một phần của nhiễm trùng này được quy cho Rh. appendiculatus, do đó là một vector tự nhiên tiềm năng mới của CCHFV ở Iran. Phân tích phát sinh chủng loại cũng xác nhận rằng CCHFV trong khu vực này có mối quan hệ di truyền gần gũi, ngay cả trong các loài ve khác nhau.

Từ khóa

#CCHF #virus CCHFV #Rhipicephalus appendiculatus #ve cứng #phân tích phát sinh chủng loại #nhiễm tự nhiên

Tài liệu tham khảo

Bente DA, Forrester NL, Watts DM, McAuley AJ, Whitehouse CA, Bray M (2013) Crimean-Congo hemorrahgic fever: History, epidemiology, pathogenesis, clinical syndrome and genetic diversity. Antiviral Res 100:159–189 Papa A, Velo E, Papadimitriou E, Cahani G, Kota M, Bino S (2009) Ecology of the Crimean-Congo hemorrhagic fever endemic area in Albania. Vect Zoonotic Dis 9:713–716 Champour M, Mohammadi G, Chinikar S, Razmi G, Shah-Hosseini N, Khakifirouz S, Mostafavi E, Jalali T (2014) Seroepidemiology of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in one-humped camels (Camelus dromedarius) population in northeast of Iran. J Vect Dis 51:62–65 Ergonul O (2006) Crimean-Congo haemorrahgic fever. Lancet Infect Dis 6:203–214 Chinikar S, Ghiasi SM, Hewson R, Moradi M, Haeri A (2010) Crimean-Congo hemorrhagic fever in Iran and neighboring countries. J Clin Virol 47:110–114 Saidi S, Casals J, Faghih MA (1975) Crimean hemorrhagic fever-Congo (CHF-C) virus antibodies in man and domestic and small mammals in Iran. Am J Trop Med Hyg 24:353–357 Mild M, Simon M, Albert J, Mirazimi A (2010) Towards an understanding of the migration of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus. J Gen Virol 91:199–207 Chinikar S, Shah-Hosseini N, Bouzari S, Jalali T, Shokrgozar MA, Mostafavi E (2013) New circulating genomic variant of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in Iran. Arch Virol 158:1085–1088 Keshtkar-Jahromi M, Sajadi MM, Ansari H, Mardani M, Holakouie-Naieni K (2013) Crimean-Congo hemorrhagic fever in Iran. Antiviral Res 100:20–28 Sureau P, Klein JM, Casals J, Digoutte J, Salaun J, Piazak N (1980) Isolation of Thogoto, Wad medani, Wanowrie and Crimean-Congo hemorrhagic fever viruses from ticks of domestic animals in Iran. Ann Virol (Inst Pasteur) 131E:185–200 Chinikar S, Shayesteh M, Khakifirouz S, Jalali T, Rasi Varaie FS, Rafigh M, Mostafavi E, Shah-Hosseini N (2013) Nosocomial infection of Crimean-Congo haemorrhagic fever in eastern Iran: case report. Travel Med Infect Dis 11:252–255 Logan TM, Linthicum KJ, Bailey CL, Watts DM, Dohm DJ, Moulton JR (1990) Replication of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in four species of ixodid ticks (Acari) infected experimentally. J Med Entomol 27:537–542 Nabian S, Rahbari S, Changizi A (2009) The distribution of Hyalomma spp. ticks from domestic ruminants in Iran. Med Vet Entomol 23:281–283 Schwarz TF, Nsanze H, Longson M (1996) Polymerase chain reaction for diagnosis and identification of distinct variants of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in the United Arab Emirates. Am J Trop Med Hyg 55:190–196 Burt FJ, Leman PA, Smith JF, Swanepoel R (1998) The use of a reverse transcription-polymerase chain reaction for the detection of viral nucleic acid in the diagnosis of Crimean-Congo haemorrhagic fever. J Virol Methods 70(2):129–137 Tamura K, Peterson D, Peterson N, Stecher G, Nei M, Kumar S (2011) MEGA5: Molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol Biol Evol 28:2731–2739 Fakoorziba MR, Neghab M, Alipour H, Moemenbellah-Fard MD (2006) Tick-borne Crimean-Congo haemorrhagic fever in Fars province, southern Iran: Epidemiologic characteristics and vector surveillance. Pak J Biol Sci 9:2681–2684 Fakoorziba MR, Golmohammadi P, Moradzadeh R, Moemenbellah-Fard MD, Azizi K, Davari B, Alipour H, Ahmadnia S, Chinikar S (2012) Reverse transcription PCR-based detection of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus isolated from ticks of domestic ruminants in Kurdistan province of Iran. Vect Zoonotic Dis 12:794–799 Moemenbellah-Fard MD, Benafshi O, Rafinejad J, Ashraf H (2009) Tick-borne relapsing fever in a new highland endemic focus of western Iran. Ann Trop Med Parasitol 103:529–537 Nuttall PAN (2001) Crimean-Congo haemorrhagic fever. In: Service MV (ed) Encyclopedia of arthropod-transmitted infections of man and domesticated animals. CABI Publishing, Wallingford, UK, pp 126–132 Hassanzadeh J, Mohammadbeigi A, Eshrati B, Moemenbellah-Fard MD (2012) Estimation of the regional burden of non-communicable diseases due to obesity and overweight in Markazi province, Iran, 2006-2007. J Cardiovasc Dis Res 3:26–31 Azizi K, Moemenbellah-Fard MD, Fakoorziba MR, Fekri S (2011) Gerbillus nanus (Rodentia: Muridae): a new reservoir host of Leishmania major. Ann Trop Med Parasitol 105:431–437 Azizi K, Moemenbellah-Fard MD, Kalantari M, Fakoorziba MR (2012) Molecular detection of Leishmania major kDNA from wild rodents in a new focus of zoonotic cutaneous leishmaniasis in an oriental region of Iran. Vect Zoonotic Dis 12:844–850 Moemenbellah-Fard MD, Saleh V, Banafshi O, Dabaghmanesh T (2012) Malaria elimination trend from a hypo-endemic unstable active focus in southern Iran: predisposing climatic factors. Pathog Glob Health 106:358–365 Sharifi-Mood B, Metanat M, Rakhshani F, Shakeri A (2011) Co-infection of malaria and Crimean-Congo hemorrhagic fever. Iran J Parasitol 6:113–115 Chinikar S, Hezareh Moghadam A, Parizadeh SMJ, Moradi M, Bayat N, Zeinali M, Mostafavi E (2012) Seroepidemiology of Crimean-Congo hemorrhagic fever in slaughter house workers in north eastern Iran. Iran J Publ Health 41:72–77 Mostafavi E, Haghdoost A, Khakifirouz S, Chinikar S (2013) Spatial analysis of Crimean-Congo hemorrhagic fever in Iran. Am J Trop Med Hyg 89(6):1135–1141 Tonbak S, Aktas M, Altay K, Azkur AK, Kalkan A, Bolat Y, Dumanli N, Ozdarendeli A (2006) Crimean-Congo hemorrhagic fever virus: Genetic analysis and tick survey in Turkey. J Clin Microbiol 44:4120–4124 Telmadarraiy Z, Moradi AR, Vatandoost H, Mostafavi E, Oshaghi MA, Zahirnia AH, Haeri A, Chinikar S (2008) Crimean-Congo hemorrhagic fever: A seroepidemiological and molecular survey in Bahar, Hamadan province of Iran. Asian J Anim Vet Adv 3:321–327 Tahmasebi F, Ghiasi SM, Mostafavi E, Moradi M, Piazak N, Mozafari A, Haeri A, Fooks AR, Chinikar S (2010) Molecular epidemiology of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus genome isolated from ticks of Hamadan province of Iran. J Vect Dis 47(4):211–216 Gould EA, Higgs S (2009) Impact of climate change and other factors on emerging arbovirus diseases. Trans R Soc Trop Med Hyg 103:109–121 Pfäffle M, Littwin N, Muders SV, Petney TN (2013) The ecology of tick-borne diseases. Int J Parasitol 43:1059–1077 Mahzounieh M, Dincer E, Faraji A, Akin H, Akkutay AZ, Ozkul A (2012) Relationship between Crimean-Congo hemorrhagic fever virus strains circulating in Iran and Turkey: possibilities for transborder transmission. Vect Zoonotic Dis 12:782–785 Walker JG, Klein EY, Levin SA (2014) Disease at the wildlife-livestock interface: Acaricide use on domestic cattle does not prevent transmission of a tick-borne pathogen with multiple hosts. Vet Parasitol 199:206–214 Mostafavi E, Chinikar S, Bokaei S, Haghdoost A (2013) Temporal modeling of Crimean-Congo hemorrhagic fever in eastern Iran. Int J Infect Dis 17:e524–e528 Yesilbag K, Aydin L, Dincer E, Alpay G, Girisgin AO, Tuncer P, Ozkul A (2013) Tick survey and detection of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in tick species from a non-endemic area, South Marmara region, Turkey. Exp Appl Acarol 60(2):253–261 Christova I, Gladnishka T, Taseva E, Kalvatchev N, Tsergouli K, Papa A (2012) Seroprevalence of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus, Bulgaria. J Med Virol 84(4):608–614 Olcay Hekimoglu O, Ozer N, Ergunay K, Ozkul A (2012) Species distribution and detection of Crimean Congo hemorrhagic fever virus (CCHFV) in field-collected ticks in Ankara Province, Central Anatolia, Turkey. Exp Appl Acarol 56(1):75–84 Tekin S, Bursali A, Mutluay N, Keskin A, Dundar E (2012) Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in various ixodid tick species from a highly endemic area. Vet Parasitol 186(3–4):546–552 Deyde VM, Khristova ML, Rollin PE, Ksiazek TG, Nichol ST (2006) Crimean-Congo hemorrhagic fever virus genomics and global diversity. J Virol 80(17):8834–8842 Zeller HG, Cornet JP, Diop A, Camicas JL (1997) Crimean-Congo hemorrhagic fever in ticks (Acari: Ixodidae) and ruminants: field observations of an epizootic in Bandia, Senegal (1989-1992). J Med Entomol 34(5):511–516 Shepherd AJ, Swanepoel R, Cornel AJ, Mathee O (1989) Experimental studies on the replication and transmission of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in some African tick species. Am J Trop Med Hyg 40(3):326–331 Alam MM, Khurshid A, Sharif S, Shaukat S, Rana MS, Angez M, Zaidi SSZ (2013) Genetic analysis and epidemiology of Crimean Congo hemorrhagic fever viruses in Baluchistan province of Pakistan. BMC Infect Dis 13:201