Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Thí nghiệm thực địa: Khử trùng mặt nạ gây mê bị ô nhiễm cho lợn con
Tóm tắt
Nghiên cứu này nhằm đánh giá hiệu quả của việc làm sạch và khử trùng đối với sự ô nhiễm vi sinh vật của mặt nạ gây mê, được sử dụng cho gây mê isoflurane tự động trong phẫu thuật thiến lợn con đực. Việc thu thập dữ liệu đã diễn ra trên 11 trang trại ở miền Nam nước Đức từ tháng 9 năm 2020 đến tháng 6 năm 2022. Mỗi trang trại được thăm ba lần (một trang trại sử dụng hai thiết bị gây mê khác nhau đã được thăm sáu lần), và các đánh giá vi sinh vật được thực hiện tại bốn điểm mẫu (SP): sau khi mở bao bì mặt nạ (SP0), sau khi khử trùng trước khi gây mê (SP1), sau khi gây mê cho tất cả lợn con sẽ bị thiến trong lần này (SP2), và sau khi khử trùng sau khi gây mê (SP3). Đánh giá vi sinh vật bao gồm việc xác định tổng số lượng vi khuẩn, tổng số lượng vi khuẩn mesophilic chịu khí hemolytic và không hemolytic và phát hiện định tính vi khuẩn chỉ thị Escherichia (E.) coli, E. coli sinh beta-lactamase phổ rộng (ESBL) và Staphylococcus aureus kháng methicillin (MRSA). Để phân tích, một mô hình hỗn hợp tuyến tính tổng quát đã được áp dụng, sử dụng các trang trại và chuyến thăm trang trại như các yếu tố ngẫu nhiên và các điểm lấy mẫu lồng trong chuyến thăm trang trại như yếu tố cố định. Yếu tố cố định có ý nghĩa rất cao đối với cả ba biến (tổng số vi khuẩn, tổng số vi khuẩn mesophilic chịu khí hemolytic và không hemolytic) (p < 0.001). Số lượng vi khuẩn tại SP0 gần như tương đương với SP3. Về vi khuẩn chỉ thị, sự hiện diện của chúng cao nhất tại SP2 và thấp nhất tại SP3. Không có vi khuẩn chỉ thị nào được phát hiện tại SP1. Có thể kết luận rằng việc khử trùng mặt nạ gây mê, đặc biệt trước khi thực hiện gây mê, có thể bảo vệ hiệu quả cho lợn con của lô tiếp theo khỏi nguy cơ truyền bệnh không mong muốn. Những phát hiện này sẽ giúp nông dân lên kế hoạch cho các hoạt động làm sạch và khử trùng.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Ahmed MFE, Ramadan H, Seinige D, Kehrenberg C, El-Wahab A, Volkmann N, Kemper N, Schulz J. Occurrence of extended-spectrum beta-lactamase-producing Enterobacteriaceae, microbial loads, and endotoxin levels in dust from laying hen houses in Egypt. BMC Vet Res. 2020;16:1–9.
Anonymous, 2018. Entwurf eines Vierten Gesetzes zur Änderung des Tierschutzgesetzes: Drucksache 19/5522. Online: https://dserver.bundestag.de/btd/19/055/1905522.pdf.
Anonymous. Verordnung zur Durchführung der Betäubung mit Isofluran bei der Ferkelkastration durch sachkundige Personen (Ferkelbetäubungssachkundeverordnung, FerkBetSachkV); 2020.
Cuny C, Nathaus R, Layer F, Strommenger B, Altmann D, Witte W. Nasal colonization of humans with methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) CC398 with and without exposure to pigs. PLoS ONE. 2009;4: e6800.
Daly SW, Harris AR. Modeling exposure to fecal contamination in drinking water due to multiple water source use. Environ Sci Technol. 2022;56:3419–29.
Enz A, Schüpbach-Regula G, Bettschart R, Fuschini E, Bürgi E, Sidler X. Erfahrungen zur Schmerzausschaltung bei der Ferkelkastration in der Schweiz Teil 1: Inhalationsanästhesie. Schweiz Arch Tierheilkd. 2013;155:651–9.
Fredriksen B, Furnols MF, Lundström K, Migdal W, Prunier A, Tuyttens F, Bonneau M. Practice on castration of piglets in Europe. Animal. 2009;3:1480–7.
Friese A, Schulz J, Hoehle L, Fetsch A, Tenhagen B-A, Hartung J, Roesler U. Occurrence of MRSA in air and housing environment of pig barns. Vet Microbiol. 2012;158:129–35.
Härtel H, Gumbert S, Rauh A, Beisl M, Schulz J, Kempf K, Senf S, Winner E, Weiß C, Nüßlein A, Zablotski Y, Ritzmann M, Zöls S. Untersuchungen zur automatisierten Isoflurannarkose bei der Saugferkelkastration. Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere. 2021;49:167–77.
Hansen MS, Pors SE, Jensen HE, Bille-Hansen V, Bisgaard M, Flachs EM, Nielsen OL. An investigation of the pathology and pathogens associated with porcine respiratory disease complex in Denmark. J Comp Pathol. 2010;143:120–31.
Maes D, Verdonck M, Deluyker H, de Kruif A. Enzootic pneumonia in pigs. Vet Q. 1996;18:104–9.
Marois C, Le Carrou J, Kobisch M, Gautier-Bouchardon AV. Isolation of Mycoplasma hyopneumoniae from different sampling sites in experimentally infected and contact SPF piglets. Vet Microbiol. 2007;120:96–104.
Mateus-Vargas RH, Butenholz K, Volkmann N, Sürie C, Kemper N, Schulz J. Boot swabs to evaluate cleaning and disinfection success in Poultry Barns. Agriculture. 2022;12:57.
Perez F, Endimiani A, Hujer KM, Bonomo RA. The continuing challenge of ESBLs. Curr Opin Pharmacol. 2007;7:459–69.
Rozman U, Pušnik M, Kmetec S, Duh D, Šostar Turk S. Reduced susceptibility and increased resistance of bacteria against disinfectants: a systematic review. Microorganisms. 2021;9:2550.
SAS Institute, 2017. Base SAS 9.4 procedures guide: Statistical procedures. SAS Institute.
Schulz J, Bao E, Clauss M, Hartung J. The potential of a new air cleaner to reduce airborne microorganisms in pig house air: preliminary results. Berl Munch Tierarztl Wochenschr. 2013;126:143–8.
Seiffert SN, Hilty M, Perreten V, Endimiani A. Extended-spectrum cephalosporin-resistant Gram-negative organisms in livestock: an emerging problem for human health? Drug Resist Updates. 2013;16:22–45.
Smith TC, Pearson N. The emergence of Staphylococcus aureus ST398. Vector-Borne Zoonotic Diseases. 2011;11:327–39.
Thacker EL. Immunology of the porcine respiratory disease complex. Vet Clin N Am Food Anim Pract. 2001;17:551–65.
Turner C, Burton CH. The inactivation of viruses in pig slurries: a review. Biores Technol. 1997;61:9–20.
van Beers-Schreurs HM, Vellenga L, Wensing T, Breukink HJ. The pathogenesis of the post-weaning syndrome in weaned piglets; a review. Vet Q. 1992;14:29–34.
van Duijkeren E, Jansen MD, Flemming SC, de Neeling H, Wagenaar JA, Schoormans AHW, van Nes A, Fluit AC. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus in pigs with exudative epidermitis. Emerg Infect Dis. 2007;13:1408.
Verhegghe M, Pletinckx LJ, Crombé F, van Weyenberg S, Haesebrouck F, Butaye P, Heyndrickx M, Rasschaert G. Cohort study for the presence of livestock-associated MRSA in piglets: effect of sow status at farrowing and determination of the piglet colonization age. Vet Microbiol. 2013;162:679–86.
Voss A, Loeffen F, Bakker J, Klaassen C, Wulf M. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus in pig farming. Emerg Infect Dis. 2005;11:1965.
Waldmann KH, Potschka H, Lahrmann KH, Kästner S. Saugferkelkastration unter Lokalanaesthesie. Eine Situationsanalyse aus wissenschaftlicher Sicht. Dtsch Tierärztebl. 2018;66:1218–26.
Weber S, Daş G, Schulz J, Moors E, Hartung J, Waldmann KH, Gauly M. Isoflurane-anaesthesia used for piglet-castration: a bacteriological assessment of the anaesthetic device. Berl Munch Tierarztl Wochenschr. 2013;126:277–84.
Winner E-M, Beisl M, Gumbert S, Härtel H, Kaiser J, Wernecke A, Senf S, Zablotski Y, Ritzmann M, Zöls S. Implementation of piglet castration under inhalation anaesthesia on farrowing farms. Porcine Health Manag. 2022;8:20.