Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Thất bại của việc tiêm chủng với các protein màng của túi nội bào trypanosome trong việc cung cấp miễn dịch không biến thiên chống lại Trypanosoma brucei
Tóm tắt
Các túi nội bào trypanosome tinh khiết đã được thực hiện tách pha Triton X-114 để thu được một phần làm giàu các thụ thể nghi ngờ của ký sinh trùng cho quá trình nội bào hấp thụ. Thỏ được tiêm chủng với chất liệu này đã tạo ra các kháng thể nhận diện nhiều protein của ký sinh trùng, bao gồm các epitope không biến thiên trên bề mặt nội bào của ký sinh trùng, màng túi flagellum, cũng như trên các màng của endosome và các cấu trúc tương tự lysosome. Các kháng thể này không thể kích thích phản ứng ly giải qua trung gian bổ thể in vitro đối với trypanosome, và trong một bài thử nghiệm in vitro về việc ức chế sự tăng trưởng của ký sinh trùng, chúng thực sự đã nâng cao sự phát triển của ký sinh trùng một cách biênmarginal. Không có tác động nào được quan sát thấy trên thời kỳ tiền tiềm tàng của ký sinh trùng hoặc mức parasitemia ở chuột được tiêm kháng thể tinh chế từ huyết thanh thỏ, nhưng sự sống sót của chúng trước nhiễm trùng đã bị rút ngắn đáng kể. Cuối cùng, không có sự khác biệt lớn nào được phát hiện trong các thông số về ký sinh trùng học hay huyết học giữa các thỏ đã tiêm chủng và thỏ đối chứng khi thách thức bằng nhiễm trùng T. brucei.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Baltz T, Baltz D, Giroud C, Crockett J (1985) Cultivation in a semi-defined medium of animal infective forms ofTrypanosoma brucei, T. equiperdum, T. evansi, T. rhodesiense, andT. gambiense. EMBO J 4:1273–1277
Barry JD, Gathuo H (1984) Antigenic variation inTrypanosoma vivax: isolation of a serodeme. Parasitology 89:49–58
Black SJ, Murray M, Shapiro SZ, Kaminsky R, Borowy NK, Musanga R, Otieno-Omondi F (1989) Analysis ofPropionibacterium acnes-induced nonspecific immunity toTrypanosoma brucei in mice. Parasite Immunol 11:371–383
Bordier C (1981) Phase separation of integral membrane proteins in Triton X-114 solution. J Biol Chem 256:1604–1607
Brandtzaeg P (1973) Conjugates of immunoglobulin G with different fluorochromes. I. Characterization by anionic-exchange chromatography. Scand J Immunol 2:273–290
Brown MS, Anderson RGW, Goldstein JL (1983) Recycling receptors: the round trip itinerary of migrant membrane proteins. Cell 32:663–667
Brown VI, Greene MI (1991) Molecular and cellular mechanisms of receptor-mediated endocytosis. DNA Cell Biol 10:399–409
Cardoso de Almeida ML, Turner MJ (1983) The membrane form of variant surface glycoproteins ofTrypanosoma brucei. Nature 302:349–352
Coppens I, Opperdoes FR, Courtoy PJ, Baudhuin P (1987) Receptor-mediated endocytosis in the bloodstream form ofTrypanosoma brucei. J Protozool 34:465–473
Coppens I, Baudhuin P, Opperdoes FR, Courtoy PJ (1988) Receptors for the host low density lipoproteins on the hemoflagellateTrypanosoma brucei: purification and involvement in the growth of the parasite. Proc Natl Acad Sci USA 85:6753–6757
Coppens I, Bastin P, Opperdoes FR, Baudhuin P, Courtoy PJ (1992)Trypanosoma brucei brucei: antigenic stability of its LDL receptor and immunological cross-reactivity with the LDL receptor of the mammalian host. Exp Parasitol 74:77–86
Grab DJ, Bwayo JJ (1982) Isopycnic isolation of African trypanosomes on Percoll gradients formed in situ. Acta Trop (Basel) 39:363–366
Gurnett AM, Ward J, Raper J, Turner MJ (1986) Purification and characterisation of membrane-form variant surface glycoproteins ofTrypanosoma brucei. Mol Biochem Parasitol 20:1–13
Hapgood J, Liberman TA, Lax I, Yarden Y, Schreiber AB, Naor Z, Schlessinger J (1983) Monoclonal antibodies against epidermal growth factor receptor induce prolactin synthesis in cultured rat pituitary cells (GH3). Proc Natl Acad Sci USA 80:6451–6455
Jacobs S, Chang KJ, Cuatrecasas P (1978) Antibodies to purified insulin receptor have insulin-like activity. Science 200:1283–1284
Lanham SM, Godfrey DG (1970) Isolation of salivarian trypanosomes from man and other mammals using DEAE-cellulose. Exp Parasitol 28:521–534
McLaughlin J (1982) Subcellular distribution of particle-associated antigens inTrypanosoma rhodesiense. J Immunol 128:2656–2663
Olenick JG, Wolff R, Nauman RK, McLaughlin J (1988) A flagellar pocket membrane fraction fromTrypanosoma brucei rhodesiense: immunogold localization and nonvariant immunoprotection. Infect Immun 56:92–98
Shapiro SZ (1987) Elimination of the detection of an artefactual 65 kDa keratin band from immunoblots. J Immunol Methods 102:143–146
Shapiro SZ, Murray M (1982) African trypanosome antigens recognized during the course of infection in N'dama and Zebu cattle. Infect Immun 35:410–416
Shapiro SZ, Pearson TW (1986) African trypanosomiasis: antigens and host-parasite interactions. In: Pearson TW (ed) Parasite antigens: toward new strategies for vaccines. Marcel Dekker, New York, pp 215–274
Shapiro SZ, Webster P (1989) Coated vesicles from the protozoan parasiteTrypanosoma brucei: purification and characterization. J Protozool 36:344–349
Silverstein SC, Steinman RM, Cohn ZA (1977) Endocytosis. Annu Rev Biochem 46:669–722
Smith CJ, Levine RF, Mansfield JM (1982) Cloning of African trypanosomes in mice immunosuppressed by cyclophosphamide treatment. Am J Trop Med Hyg 31:1098–1102
Van Meirvenne N, Janssens PG, Magnus E (1975) Antigenic variation in syringe passaged populations ofTrypanosoma (Trypanozoon) brucei. I. Rationalization of the experimental approach. Ann Soc Belge Med Trop 55:1–23
Vickerman K (1978) Antigenic variation in trypanosomes. Nature 273:613–617
Webster P, Grab DJ (1988) Intracellular colocalization of variant surface glycoprotein and transferrin-gold inTrypanosoma brucei. J Cell Biol 106:279–288
Webster P, Shapiro SZ (1990)Trypanosoma brucei: a membrane-associated protein in coated endocytotic vesicles. Exp Parasitol 70:154–163
Young JR, Donelson JE, Majiwa PAO, Shapiro SZ, Williams RO (1982) Analysis of genomic rearrangements associated with two variable antigen genes ofTrypanosoma brucei. Nucleic Acids Res 10:803–819