Đánh giá các cơ chế tiềm tàng gây suy giảm sinh sản do atrazine ở cá chép mập (Pimephales promelas) và cá medaka Nhật Bản (Oryzias latipes)

Environmental Toxicology and Chemistry - Tập 35 Số 9 - Trang 2230-2238 - 2016
Catherine A. Richter1, Diana M. Papoulias1, Jeffrey J. Whyte1, Donald E. Tillitt1
1Columbia Environmental Research Center, US Geological Survey, Columbia, Missouri

Tóm tắt

Tóm tắt

Atrazine đã được liên kết với sự rối loạn sinh sản ở các sinh vật bị phơi nhiễm, và các nghiên cứu trước đây đã ghi nhận sự giảm sản lượng trứng ở cá medaka Nhật Bản (Oryzias latipes) và cá chép mập (Pimephales promelas) trong các khảo sát từ 30 đến 38 ngày với nồng độ atrazine là 0,5 µg/L, 5 µg/L và 50 µg/L. Các tác giả đã đánh giá các cơ chế có thể gây ra sự giảm sản lượng trứng. Biểu hiện gene trong các con đường sinh steroid và trục hypothalamus–tuyến yên–tinh hoàn của cá đực và cá cái đã được đo lường. Atrazine không làm tăng đáng kể biểu hiện của aromatase tinh hoàn (cyp19a1a). Đã quan sát thấy sự thay đổi do atrazine trong số lượng cá cái trong trạng thái sinh sản tích cực. Biểu hiện của các gene trưởng thành trứng vitellogenin 1 (vtg1) và glycoprotein zona pellucida 3.1 (zp3.1) ở cá cái medaka có sự tương quan và có phân bố nhị nguyên. Ở cả hai loài, cá cái có biểu hiện thấp của vtg1 hoặc zp3.1 cũng có biểu hiện thấp của các gene sinh steroid trong tinh hoàn, thụ thể estrogen trong gan và gonadotropin trong não. Ở medaka, số lượng cá cái trong mỗi bể có biểu hiện cao của zp3.1 có mối tương quan đáng kể với sản lượng trứng mỗi bể. Số lượng cá cái medaka có biểu hiện thấp của zp3.1 đã tăng đáng kể với sự phơi nhiễm atrazine. Do đó, sự giảm sản lượng trứng quan sát được là phản ứng với sự phơi nhiễm atrazine có thể là kết quả của việc điều chỉnh giảm phối hợp các gene cần thiết cho sinh sản ở một bộ phận cá cái.

Từ khóa


Tài liệu tham khảo

10.1111/j.1752-1688.2005.tb03738.x

LarsonSJ GilliomRJ CapelPD.1999. Pesticides in streams of the United States: Initial results from the National Water‐Quality Assessment Program. WRIR 98–4222. US Geological Survey Sacramento CA.

10.1111/j.1752-1688.2010.00503.x

10.1897/03-40

10.1021/es0403662

10.1016/j.aquatox.2005.05.014

10.1016/j.jsbmb.2011.03.015

10.1002/etc.5620220222

10.1016/j.scitotenv.2012.09.063

10.1093/toxsci/kfh127

10.1002/bdrb.20110

10.1093/toxsci/kfp194

10.1016/j.reprotox.2014.05.008

10.1093/toxsci/kfp135

10.1016/j.aquatox.2003.10.009

10.1016/j.marenvres.2008.02.005

10.1289/ehp.011091027

10.1016/j.toxlet.2004.07.005

10.1016/j.fct.2005.11.014

10.1371/journal.pone.0002117

10.1006/taap.2002.9420

10.1289/ehp.9758

10.1016/j.aquatox.2010.04.011

10.1016/j.aquatox.2014.05.022

NickumJG BartHLJr. BowserPR GreerIE HubbsC JenkinsJA MacMillanJR RachlinJW RoseJD SorensenPW TomassoJR.2004. Guidelines for the Use of Fishes in Research. The American Fisheries Society American Institute of Fisheries Research Biologists American Society of Ichthyologists and Herpetologists Bethesda MD.

10.1016/S0021-9673(97)00360-9

10.1677/jme.0.0250169

10.1006/meth.2001.1262

10.1111/j.1439-0426.2009.01289.x

10.1289/ehp.02110s3429

10.1093/toxsci/kft017

10.1093/toxsci/kfv204

10.1897/03-180

10.1002/etc.2594

10.1289/ehp.0901164

10.1016/j.taap.2013.03.031

10.1016/S1096-4959(01)00321-9

10.1007/s002449900406

10.1023/A:1023375931734

10.1016/j.aquatox.2009.06.009

10.1073/pnas.0436133100