Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Đánh giá tiềm năng chống oxy hóa của phân đoạn ethyl acetate từ cây hương thảo (Rosmarinus officinalis L.) và các thành phần chính của nó
Tóm tắt
Các phân đoạn dung môi từ chiết xuất methanol của cây hương thảo được thu được bằng cách chiết xuất liên tiếp với n-hexane, chloroform, ethyl acetate, butanol và nước. Phân đoạn ethyl acetate (EAF) chứa một lượng polyphenol và flavonoid đáng kể, cũng như mức độ hoạt động quét gốc tự do alkyl và 2,2′-azino-bis(3-ethylbenzthiazoline-6-sulphonic acid) (ABTS) cao. Hoạt động này đã hướng dẫn quá trình phân tách và tách chiết bằng sắc kí lặp lại trên gel silica, RP C18 và Sephadex LH-20, dẫn đến việc phân lập sáu hợp chất từ EAF. Các phép đo quang phổ 1H NMR, 13C NMR, 2D NMR, MS và IR đã xác định các hợp chất là axit caffeic (1), axit rosmarinic (2), ester methyl axit rosmarinic (3), luteolin (4), apigenin (5) và hispidulin (6); sự định lượng bằng sắc ký lỏng hiệu năng cao (HPLC) đã được sử dụng để xác định nồng độ trong EAF. Trong số sáu hợp chất được phân lập, ester methyl axit rosmarinic thể hiện hoạt tính quét gốc tự do cao nhất chống lại di(phenyl)-(2,4,6-trinitrophenyl) iminoazanium, gốc alkyl và ABTS. Hỗn hợp EAF, nhưng không phải các hợp chất riêng lẻ, đã bảo vệ tế bào fibroblast da khỏi độc tính do H2O2 gây ra ở nồng độ bao gồm SC50 của gốc alkyl và ABTS. Do đó, phát hiện của chúng tôi lần đầu tiên gợi ý rằng khả năng chống oxy hóa của hỗn hợp EAF dẫn đến hiệu ứng hiệp đồng trong hành động chống oxy hóa.
Từ khóa
#Rosmarinus officinalis #phân đoạn ethyl acetate #hoạt tính chống oxy hóa #axit rosmarinic #polyphenol #flavonoidTài liệu tham khảo
Antolovich M, Prenzler PD, Patsalides E, McDonald S, Robards K (2002) Methods for testing antioxidant activity. Analyst 127:183–198
Aruoma OI, Galliwell B, Aeschbach R, Loligers J (1992) Antioxidant and pro-oxidant properties of active rosemary constituents: carnosol and carnosic acid. Xenobiotica 22:257–268
Begum N, Prasad RN (2012) Apigenin, a dietary antioxidant, modulates gamma radiation-induced oxidative damages in human peripheral blood lymphocytes. Biomed Prev Nutr 2:16–24
Borrás-Linares I, Stojanović Z, Quirantes-Piné R, Arráez-Román D, Švarc-Gajić J, Fernández-Gutiérrez A, Segura-Carretero A (2014) Rosmarinus officinalis leaves as a natural source of bioactive compounds. Int J Mol Sci 15:20585–20606
Celiktas OY, Kocabas EEH, Bedir E, Sukan FV, Ozek T, Baser KHC (2007) Antimicrobial activities of methanol extracts and essential oils of Rosmarinus officinalis, depending on location and seasonal variations. Food Chem 100:553–559
Chen YH, Chang FR, Lin YJ, Wang L, Chen JF, Wu YC, Wu MJ (2007) Identification of phenolic antioxidants from Sword Brake fern (Pteris ensiformis Burm.). Food Chem 105:48–56
Chen GL, Chen SG, Xie YQ, Chen F, Zhao YY, Luo CX, Gao YQ (2015) Total phenolic, flavonoid and antioxidant activity of 23 edible flowers subjected to in vitro digestion. J Funct Foods 17:243–259
Cheung LM, Cheung PCK, Ooi VEC (2003) Antioxidant activity and total phenolics of edible mushroom extracts. Food Chem 81:249–255
Erkan N, Ayranci G, Ayranci E (2008) Antioxidant activities of rosemary (Rosmarinus Officinalis L.) extract, blackseed (Nigella sativa L.) essential oil, carnosic acid, rosmarinic acid and sesamol. Food Chem 110:76–82
Finkel T, Holbrook NJ (2000) Oxidants, oxidative stress, and the biology of ageing. Nature 408:239–247
Floegel A, Kim DO, Chung SJ, Koo SI, Chun OK (2011) Comparison of ABTS/DPPH assays to measure antioxidant capacity in popular antioxidant-rich US foods. J Food Compos Anal 24:1043–1048
Fu X, Tang Y, Dickinson BC, Chang CJ, Chang Z (2015) An oxidative fluctuation hypothesis of aging generated by imaging H2O2 levels in live Caenorhabditis elegans with altered lifespans. Biochem Biophys Res Commun 458:896–900
Gião MS, González-SaImmnjosé ML, Rivero-Pérez MD, Pereira CI, Pintado ME, Malcata FX (2007) Infusions of Portuguese medicinal plants: dependence of final antioxidant capacity and phenol content on extraction features. J Sci Food Agric 87:2638–2647
Guedes AC, Amaro HM, Gião MS, Malcata FX (2013) Optimization of ABTS radical cation assay specifically for determination of antioxidant capacity of intracellular extracts of microalgae and cyanobacteria. Food Chem 138:638–643
Hansen MB, Nielsen SE, Berg K (1989) Re-examination and further development of a precise and rapid dye method for measuring cell growth/cell kill. J Immunol Methods 119:293–301
Hiramoto K, Johkoh H, Sako KI, Kikugawa K (1993) DNA breaking activity of the carbon-centered radical generated from 2,2′-azobis(2-amidinopropane) hydrochloride (AAPH). Free Radic Res 19:323–332
Jayaprakasha GK, Patil BS (2007) In vitro evaluation of the antioxidant activities in fruit extracts from citron and blood orange. Food Chem 101:410–418
Jeon DH, Moon JY, Hyun HB, Cho SK (2013) Composition analysis and antioxidant activities of the essential oil and the hydrosol extracted from Rosmarinus officinalis L. and Lavandula angustifolia Mill. Produced in Jeju. J Appl Biol Chem 56:141–146
Jeong CH, Jeong HR, Choi GN, Kim DO, Lee U, Heo HJ (2011) Neuroprotective and anti-oxidant effects of caffeic acid isolated from Erigeron annuus leaf. Chin Med UK. doi:10.1186/1749-8546-6-25
Karaçelik AA, Küçük M, İskefiyeli Z, Aydemir S, De Smet S, Miserez B, Sandra P (2015) Antioxidant components of Viburnum opulus L. determined by on-line HPLC-UV-ABTS radical scavenging and LC-UVESI-MS methods. Food Chem 175:106–114
Kim DO, Lee KW, Lee HJ, Lee CY (2002) Vitamin C equivalent antioxidant capacity (VCEAC) of phenolic phytochemicals. J Agr Food Chem 50:3713–3717
Lecomte J, Giraldo LJL, Laguerre M, Baréa B, Villeneuve P (2010) Synthesis, characterization and free radical scavenging properties of rosmarinic acid fatty esters. J Am Oil Chem Soc 87:615–620
Lin FJ, Yen FL, Chen PC, Wang MC, Lin CN, Lee CW, Ko HH (2014) HPLC-fingerprints and antioxidant contituents of Phyla nodilora. Sic World J. doi:10.1155/2014/528653
Mata AT, Proença C, Ferreira AR, Serralheiro MLM, Nogueira JMF, Araújo MEM (2007) Antioxidant and antiacetylcholinesterase activities of five plants used as Portuguese food spices. Food Chem 103:778–786
Moon JY, Lee S, Jeong S, Kim JC, Ahn KS, Ashik M, Cho SK (2013) Free radical-scavenging activities and cytoprotective effect of polyphenol-rich ethyl acetate fraction of Guava (Psidium cattleianum) leaves on H2O2-treated HepG2 cell. J Korean Soc Appl Biol Chem 56:687–694
Nakao M, Takio S, Ono K (1998) Alkyl eroxyl radical-scavenging activity of catechins. Phytochemistry 49:2379–2382
Nanjo F, Goto K, Seto R, Suzuki M, Sakai M, Hara Y (1996) Scavenging effects of tea catechins and their derivatives on 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl radical. Free Radic Bio Med 21:895–902
Pérez-Sánchez A, Barrajón-Catalán E, Caturla N, Castillo J, Benavente-García O, Alcaraz M, Micol V (2014) Protective effects of citrus and rosemary extracts on UV-induced damage in skin cell model and human volunteers. J Photochem Photobiol B 136:12–18
Qin Z, Robichaud P, He T, Fisher GJ, Voorhees JJ, Quen T (2014) Oxidant exposure induces cysteine-rich protein 61 (CCN1) via c-Jun/AP-1 to reduce collagen expression in human dermal fibroblasts. Plus One. doi:10.1371/journal.pone.0115402
Sotelo-Félix JI, Martinez-Fong D, Muriel P, Santillán RL, Castillo D, Yahuaca P (2002) Evaluation of the effectiveness of Rosmarinus officinalis (Lamiaceae) in the alleviation of carbon tetrachloride-induced acute hepatotoxicity in the rat. J Ethnopharmacol 21:145–154
Wawer I, Zielinska A (2001) 13C CP/MAS NMR studies of flavonoids. Magn Reson Chem 39:374–380
Yang Y, Mu S (2013) Antioxidant activities and radical scavenging activities of flavonoids studied by the electrochemical methods and ESR technique based on the novel paramagnetic properties of poly(aniline-co-5-aminosalicylic acid). Electrochim Acta 109:663–670
Zhishen J, Mengcheng T, Jianming W (1999) The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chem 64:555–559
Zhou XJ, Yan LL, Yin PP, Shi LL, Zhang JH, Liu Y, Ma C (2014) Structural characterisation and antioxidant activity evaluation of phenolic compounds from cold-pressed Perilla frutescens var. arguta seed flour. Food Chem 164:150–157
