Ảnh hưởng của hai muối natri đến thành phần axit béo và tinh dầu của lá húng quế (Ocimum basilicum L.)

Springer Science and Business Media LLC - Tập 35 - Trang 2365-2372 - 2013
Imen Tarchoune1, Olfa Baâtour1, Jamel Harrathi1, Ghaith Hamdaoui2, Mokhtar Lachaâl1, Zeineb Ouerghi1, Brahim Marzouk2
1Faculté des Sciences de Tunis, Physiologie et Biochimie de la Réponse des Plantes Aux Contraintes Abiotiques, Campus Universitaire, Tunis, Tunisia
2Laboratoire des Substances Bioactives, Centre de Biotechnologie de Borj-Cedria (CBBC), Hammam-Lif, Tunisia

Tóm tắt

Nguyên cứu này nhằm đánh giá ảnh hưởng của hai muối natri đến sự phát triển, thành phần axit béo và tinh dầu trong một loại cây thuốc và cây cảnh, húng quế (Ocimum basilicum) được trồng trong điều kiện thủy canh. Các cây trồng được xử lý với nồng độ mol tương đương của Na2SO4 (25 mM) và NaCl (50 mM) trong 15 ngày. Kết quả cho thấy tốc độ tăng trưởng lá bị ức chế nhiều hơn bởi 25 mM Na2SO4 so với 50 mM NaCl. Tổng hàm lượng axit béo không có sự thay đổi ở các cây trồng. Axit α-linolenic, axit palmitic và axit linoleic là các axit béo chính. Việc xác định axit béo trong lá húng quế chưa được nghiên cứu trước đây và công trình này đã chỉ ra sự ưu thế của các axit béo không bão hòa đa. Dưới tác động của cả hai muối, thành phần axit béo trong lá vẫn không thay đổi. Về sản lượng tinh dầu, nó giảm đáng kể 28 % khi xử lý bằng 25 mM Na2SO4 và tăng 27 % khi xử lý bằng 50 mM NaCl. Hợp chất bay hơi chính trong lá là linalool, chiếm 34,3 % tổng thành phần tinh dầu, tiếp theo là eugenol (19,8 %), 1.8-cineole (14,4 %) và methyl eugenol (5,2 %). Hơn nữa, nồng độ eugenol và methyl eugenol được điều chỉnh nhiều nhất bởi muối, và mối tương quan tiêu cực giữa hai hợp chất này phản ánh sự kích thích hoạt động của O-methyltransferase dưới cả hai loại muối.

Từ khóa

#muối natri #húng quế #axit béo #tinh dầu #thủy canh

Tài liệu tham khảo

Adams RP (2001) Identification of essential oil components by gas chromatography/quadrupole mass spectroscopy. Allured, Carol Stream Baâtour O, Kaddour R, Aidi Wannes W, Lachaâl M, Marzouk B (2010) Salt effects on the growth, mineral nutrition, essential oil yield and composition of marjoram (Origanum majorana). Acta Physiol Plant 32(1):45–51 Ben Taârit M, Msaada K, Hosni K, Marzouk B (2010) Changes in fatty acid and essential oil composition of sage (Salvia officinalis L.) leaves under NaCl stress. Food Chem 119:951–956 Ben Taârit M, Msaada K, Hosni K, Marzouk B (2011) Physiological changes and essential oil composition of clary sage (Salvia sclarea L.) rosette leaves as affected by salinity. Acta Physiol Plant 33:153–162 Benson AA (1964) Plant membrane lipids. Ann. Rev. Plant Physiol 15:1 Bernstein N, Kravchik M, Dudai N (2010) Salinity-induced changes in essential oil, pigments and salts accumulation in sweet basil (Ocimum basilicum) in relation to alterations of morphological development. Ann App Bio 156:167–177 Bilski JJ, Nelson DC, Conlon RL (1988) The response of four potato cultivars to chloride salinity, sulfate salinity and calcium in pot experiments. Am Pot J 65:85–90 Bligh EG, Dyer WJ (1959) A rapid method of total lipid extraction and purification. Can J Biochem and Physiol 37:911–917 Bourgou S, Bettaieb I, Saidani M, Marzouk B (2010) Fatty acids, essential oil and phenolics modifications of black cumin fruit under NaCl stress conditions. J Agr Food Chem 58:12399–12406 Cecchi G, Biasini S, Castano J (1985) Méthanolyse rapide des huiles en solvant. Note de laboratoire. Rev Fran Corp Gra 4:163–164 Charles DJ, Joly RJ, Simon JE (1990) Effect of osmotic stress on the essential oil content and composition of peppermint. Phytochem 29:2837–2840 Finley JW, Shahidi F (2001) The chemistry, processing and health benefits of highly unsaturated fatty acids: an overview. In: John WJ, Shahidi F (eds) Omega- 3 Fatty acids, Chemistry, Nutrition and Health Effects, vols 1–13. Am Chem Soc, Washington, pp 258–279 Gignon A, Matos AR, Aferay D, Zuily-Fodil Y, Pham-Thi AT (2004) Effect of drought stress on lipid metabolism in the leaves of Arabidopsis thaliana (Ecotype Columbia). Ann Bot 94:345–351 Halliwell B (1987) Oxidative damage, lipid peroxidation, and antioxidant protection in chloroplasts. Chem Phy Lip 44:327–340 Harrathi J, Hosni K, Bouraoui KN, Attia H, Marzouk B, Magne C, Lachaâl M (2011) Effect of salt stress on growth, fatty acids and essential oils in safflower (Carthamus tinctorius L.). Acta Physiol Plant 24:129–137 Hoagland DR, Arnon DI (1950) The water culture method for growing plants without soil. Cal Agr Exp Stat Cir 347:1–32 Khan AH, Ashraf MY, Naqvi SSM, Khanzada B, Ali M (1995) Growth, ion and solute contents of sorghum grown under NaCl and Na2SO4 salinity stress. Acta Physiol Plant 17:61–268 Lachowicz KJ, Jones GP, Briggs DR, Bienvenu FE, Palmer MV, Mishra V, Hunter MM (1997) Characteristics of plants and plant extracts from five varieties of basil (Ocimum basilicum L.) grown in Australia. J Agr Food Chem 45:2660–2665 Lee SJ, Umano K, Shibamoto T, Lee KG (2005) Identification of volatile components in basil (Ocimum basilicum L.) and thyme leaves (Thymus vulgaris L.) and their antioxidant properties. Food Chem 91:131–137 Lewinsohn E, Ziv-Raz I, Dudai N, Tadmor Y, Lastochkin E, Larkov O, Chaimovitsh D, Ravid U, Putievsky E, Pichersky E, Shoham Y (2000) Biosynthesis of estragole and methyl-eugenol in sweet basil (Ocimum basilicum L). Developmental and chemotypic association of allylphenol O-methyltransferase activities. Plant Sci 160:27–35 Malkit A, Sadka A, Fisher M, Goldshlag P, Gokhman I, Zamir A (2002) Salt induction of fatty acid elongase and membrane lipid modifications in the extreme halotolerant Alga Dunaliella salina. Plant Physiol 129:1320–1329 Mansour MMF, Salama KHA (2004) Cellular basis of salinity tolerance in plants. Environ Exp Bot 52:113–122 Marotti M, Piccaglia R, Giovanelli E (1996) Differences in essential oil composition of basil (Ocimum basilicum L.) Italian cultivars related to morphological characteristics. J Agr Food Chem 44:3926–3929 Meiri A, Kamburoff J, Poljakoff-Mayber A (1971) Response of bean plants to sodium chloride and sodium sulfate salinization. Ann Bot 35:837–847 Naffati M, Marzouk B (2008) Changes in essential oil and fatty acid composition in coriander (Coriandrum sativum L.) leaves under saline conditions. Ind Crop Prod 28:137–142 Parida AK, Das AB (2005) Salt tolerance and salinity effects on plants: a review. Ecotox Environ Saf 60:324–349 Rie De Vos CH, Ten Bookum WM, Voojis R, Schat H, Deko LJ (1993) Effect of copper on fatty acid composition and peroxydation of lipids in the roots of copper tolerant and sensitive Silene cucubalus. Plant Physiol Biochem 31:151–158 Said-Al Ahl HAH, Mahmoud Abeer A (2010) Effect of zinc and/or iron foliar application on growth and essential oil of sweet basil (Ocimum basilicum L.) under salt stress. Oz J App Sci 3(1):97–111 Sakuradani E, Kobayashi M, Ashikari T, Shimizu S (1999) Identification of D12-fatty acid desaturase from arachidonic acid-producing Mortierella fungus by heterologous expression in the yeast Saccharomyces cerevisiae and the fungus Aspergillus oryzae. Eur J Biochem 261:812–820 Simon JE, Morales MR, Phippen WB, Vieira RF, & Hao Z (1999) A source of aroma compounds and a popular culinary and ornamental herb. In J. Janick (Ed.), Perspectives on new crops and new uses. Alexandria, pp. 499-505 Tarchoune I, Sgherri C, Izzo R, Lachaâl M, Ouerghi Z, Navari-Izzo F (2010) Antioxidative responses of Ocimum basilicum to sodium chloride or sodium sulphate salinization. Plant Physiol Biochem 48:772–777 Tarchoune I, Degl’Innocenti E, Kaddour R, Guidi L, Lachaâl M, Navari-Izzo F, Ouerghi Z (2012) Effects of NaCl or Na2SO4 salinity on plant growth, ion content and photosynthetic activity in Ocimum basilicum L. Acta Physiol Plant 34:607–615 Telci I, Bayram E, Yılmaz G, Avcı B (2006) Variability in essential oil composition of Turkish basils (Ocimum basilicum L.). Biochem Syst Ecol 34:489–497 Vernin G, Metzger J (1984) Analysis of basil oils by GC-MS data bank. Perfum Flavor 9:71–86