Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Ảnh hưởng của thời gian lưu trữ và phương pháp sấy đông đến hoạt tính của các enzym chống oxy hóa trong lá mía
Tóm tắt
Phân tích hệ thống enzym chống oxy hóa trong lá thường được thực hiện trên các mẫu đã được đông lạnh và lưu trữ trong tủ đông siêu lạnh. Kỹ thuật sấy đông có thể là một phương pháp thay thế để bảo quản mẫu trong thời gian dài, nhưng ảnh hưởng của quy trình này đối với các enzym chống oxy hóa vẫn chưa được biết đến. Nghiên cứu này nhằm đánh giá ảnh hưởng của thời gian lưu trữ và sấy đông đến hoạt tính của các enzym chống oxy hóa trong lá mía. Các mẫu được thu thập, ngâm trong nitơ lỏng và lưu trữ ở −80 °C. Hoạt tính của superoxide dismutase, catalase, tổng peroxidase, ascorbate peroxidase và hàm lượng protein được xác định vào ngày lấy mẫu và sau 27 và 53 ngày lưu trữ. Hoạt tính của các enzym chống oxy hóa cũng như nồng độ protein trong lá vẫn không thay đổi sau 53 ngày lưu trữ. Tuy nhiên, sự giảm đáng kể hoạt tính của tất cả các enzym và hàm lượng protein do kỹ thuật sấy đông gây ra. Dữ liệu của chúng tôi cho thấy rằng (i) lá mía có thể được lưu trữ trong tủ đông siêu lạnh gần 2 tháng mà không mất hoạt tính enzym hay hàm lượng protein và (ii) kỹ thuật sấy đông không nên được sử dụng để bảo quản mẫu cho các phân tích tiếp theo về các enzym chống oxy hóa.
Từ khóa
#enzym chống oxy hóa #lá mía #sấy đông #lưu trữ mẫu #hoạt tính enzymTài liệu tham khảo
Abe LT, Da Mota RV, Lajolo FM, Genovese MI (2007) Compostos fenólicos e capacidade antioxidante de cultivares de uvas Vitis labrusca L. e Vitis vinifera L. Ciênc Tecnol Aliment 27:394–400
Azevedo RA, Carvalho RF, Cia MC, Gratão PL (2011) Sugarcane under pressure: an overview of biochemical and physiological studies of abiotic stress. Trop Plant Biol 4:42–51
Boaretto LF, Carvalho G, Borgo L, Creste S, Landell MGA, Mazzafera P (2014) Water stress reveals differential antioxidant responses of tolerant and non-tolerant sugarcane genotypes. Plant Physiol Biochem 74:165–175
Bradford MM (1976) A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye-binding. Anal Biochem 722:248–254
Carpenter JF, Izutsu K, Randolph TW (1999) Freezing-and drying induced perturbations of protein structure and mechanisms of protein protection by additives. Drugs Pharm Sci 96:123–160
Cia MC, Guimarães ACR, Medici LO, Chabregas SM, Azevedo RA (2012) Antioxidant responses to water deficit by drought-tolerant and -sensitive sugarcane varieties. Ann Appl Biol 161:313–324
Esteban R, Balaguer L, Manrique E, Rubio de Casas RR, Ochoa R, Fleck I, Marijuan MP, Casals I, Morales D, Jimenez MS, Lorenzo R, Artetxe U, Becerril JM, García-Plazaola JIG (2009) Alternative methods for sampling and preservation of photosynthetic pigments and tocopherols in plant material from remote locations. Photosynth Res 101:77–88
Fornazier RF, Ferreira RR, Pereira GJG, Molina SMG, Smith RJ, Lea PJ, Azevedo RA (2002) Cadmium stress in sugar cane callus cultures: effect on antioxidant enzymes. Plant Cell Tissue Organ Cult 71:125–131
Giannopolitis O, Ries SK (1977) Superoxide dismutase: I. Occurrence in higher plants. Plant Physiol 59:309–314
Havir EA, Mchale NA (1987) Biochemical and development characterization of multiples forms of catalase in tobacco leaves. Plant Physiol 84:450–455
Kar M, Mishra D (1976) Catalase, peroxidase, and polyphenoloxidase activities during rice leaf senescence. Plant Physiol 57:315–319
Lester GE, Hodges DM, Meyer RD, Munro KD (2004) Pre-extraction preparation (fresh, frozen, freeze-dried, or acetone powdered) and long-term storage of fruit and vegetable tissues: effects on antioxidant enzyme activity. J Agric Food Chem 52:2167–2173
Nakano Y, Asada K (1981) Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplasts. Plant Cell Physiol 22:1068–1072
Pagariya MC, Devarumath RM, Kawar PG (2012) Biochemical characterization and identification of differentially expressed candidate genes in salt stressed sugarcane. Plant Sci 184:1–13
Roy I, Gupta MN (2004) Freeze-drying of proteins: some emerging concerns. Biotechnol Appl Biochem 39:165–177
Sales CRG, Ribeiro RV, Silveira JAG, Machado EC, Martins OM, Lagôa AMMA (2013) Superoxide dismutase and ascorbate peroxidase improve the recovery of photosynthesis in sugarcane plants subjected to water deficit and low substrate temperature. Plant Physiol Biochem 73:326–336
Sales CRG, Marchiori PER, Machado RS, Fontenele AV, Machado EC, Silveira JAG, Ribeiro RV (2015) Photosynthetic and antioxidant responses to drought during the sugarcane ripening. Photosynthetica. doi:10.1007/s11099-015-0146-x
Satbhai RD, Naik RM (2014) Osmolytes accumulation, cell membrane integrity and antioxidant enzymes in sugarcane varieties differing in salinity tolerance. Sugar Tech 16:30–35
Silva KI, Sales CRG, Marchiori PER, Silveira NM, Machado EC, Ribeiro RV (2015) Short-term physiological changes in roots and leaves of sugarcane varieties exposed to H2O2 in root medium. J Plant Physiol 177:93–99
Souza RP, Machado EC, Silveira JAG, Ribeiro RV (2011) Fotossíntese e acúmulo de solutos em feijoeiro caupi submetido à salinidade. Pesq agropec Bras 46:586–592
Van Raij B, Cantarella H, Spironello A, Penatti CP, Morelli JL, Orlando Filho J, Landell MGA, Rossetto R (1996) Cana-de-açúcar. In: Van Raij B, Cantarella H, Quaggio JA, Furlani AMC (eds) Recomendações de adubação e calagem para o Estado de São Paulo. IAC, Campinas, pp 237–239