Tác động của một số chiết xuất thực vật thô trong chế độ ăn đến sự tăng trưởng và độ trưởng thành sinh dục của cá tilapia Nile (Oreochromis niloticus) và khả năng kháng nhiễm lẫn Streptococcus agalactiae

Fish Physiology and Biochemistry - Tập 42 - Trang 757-769 - 2015
Zana H. Kareem1,2, Yasser M. Abdelhadi3,4, Annie Christianus1, Murni Karim1, Nicholas Romano1
1Department of Aquaculture, Faculty of Agriculture, Universiti Putra Malaysia, UPM Serdang, Malaysia
2Fish Resource and Aquatic Animal, College of Agriculture, Salahaddin University, Erbil, Kurdistan Region, Iraq
3Faculty of Veterinary Medicine, Universiti Malaysia Kelantan (UMK), Kota Bharu, Malaysia
4The Central Laboratory for Aquaculture Research (CLAR), Abbassa, Abu-Hammad, Egypt

Tóm tắt

Một thử nghiệm cho ăn kéo dài 90 ngày đã được thực hiện nhằm đánh giá hiệu suất tăng trưởng, hiệu quả cho ăn, các chỉ số cơ thể, các tham số huyết học và sinh hóa huyết tương khác nhau, cùng với việc kiểm tra mô bệnh học của tinh hoàn từ cá giống tilapia Nile đực và cái khi được cho ăn các chiết xuất thực vật thô từ Cinnamomum camphora, Euphorbia hirta, Azadirachta indica hoặc Carica papaya với liều lượng 2 g kg−1 so với chế độ ăn kiểm soát. Sau đó, một thử thách kéo dài 14 ngày với Streptococcus agalactiae được thực hiện. Tất cả các nghiệm thức đều được thực hiện lặp lại ba lần, và mỗi nghiệm thức bao gồm 30 con cá. Kết quả cho thấy rằng chiết xuất từ C. papaya là hiệu quả nhất trong việc làm chậm quá trình trưởng thành sinh dục ở cả cá tilapia đực và cái, đồng thời cũng làm tăng đáng kể (P < 0.05) hiệu suất tăng trưởng so với chế độ ăn kiểm soát. Tương tự, các chiết xuất từ C. camphora và E. hirta cũng cải thiện đáng kể sự tăng trưởng, trong khi không có sự khác biệt đáng kể nào về hiệu suất tăng trưởng giữa A. indica và chế độ kiểm soát (P > 0.05). Hơn nữa, tỷ lệ lipid thô trong cơ thể thấp hơn ở các nghiệm thức C. camphora, E. hirta và C. papaya, nhưng chỉ có sự giảm đáng kể đối với nghiệm thức E. hirta so với chế độ kiểm soát. Trong khi đó, không có tham số huyết học hay sinh hóa nào bị ảnh hưởng đáng kể, mặc dù chỉ số ALT huyết tương thấp hơn đáng kể cho cá tilapia được cho ăn A. indica so với chế độ kiểm soát. Sau thử thách vi khuẩn kéo dài 14 ngày, cá tilapia được bổ sung C. camphora có tỷ lệ sống sót cao hơn đáng kể so với chế độ kiểm soát, nhưng không cao hơn đáng kể so với các chế độ ăn bổ sung khác. Các kết quả chỉ ra rằng chiết xuất thực vật từ C. papaya có thể thúc đẩy đáng kể sự tăng trưởng và làm chậm quá trình trưởng thành sinh dục ở cả cá tilapia đực và cái, trong khi C. camphora là biện pháp phòng ngừa hiệu quả nhất đối với S. agalactiae và có thể là một lựa chọn thay thế thân thiện với môi trường và tiết kiệm chi phí cho kháng sinh.

Từ khóa

#Tilapia Nile #chiết xuất thực vật #tăng trưởng #trưởng thành sinh dục #Streptococcus agalactiae

Tài liệu tham khảo

Abbas HH, Abbas WT (2011) Assessment study on the use of pawpaw, Carica papaya seeds to control Oreochromis niloticus breeding. Pak J Biol Sci 14:1117–1123 Abdelhamid AM, Soliman AAA (2012) Possibility of using dried leaves of guava and camphor trees in tilapia diets. J Arab Aquac Soc 7:91–108 Alsaid M, Daud H, Bejo SK, Abuseliana A (2010) Antimicrobial activities of some culinary spice extracts against Streptococcus agalactiae and its prophylactic uses to prevent Streptococcal infection in red hybrid tilapia (Oreochromis sp.). World J Fish Mar Sci 2:532–538 Association of Official Analytical Chemists (AOAC) (1997) Official methods of analysis of AOAC international. In: Cunniff, PA (ed.) 16th edn. AOAC International, Arlington Ayotunde EO, Offem BO, Bekeh AF (2011) Toxicity of Carica papaya Linn: haematological and piscicidal effect on adult catfish (Clarias gariepinus). J Fish Aquatic Sci 6:291–308 Beardmore JA, Mair GC, Lewis RI (2001) Monosex male production in finfish as exemplified by tilapia: applications, problems, and prospects. Aquaculture 197:283–301 Farrag FH, Khalil FF, Mehrim AI, Refaey MMA (2013) Papaw (Carica papaya) seeds powder in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) diet. J Anim Poult Prod 4:363–379 Galina J, Yin G, Ardó L, Jeney Z (2009) The use of immunostimulating herbs in fish: an overview of research. Fish Physiol Biochem 35:669–676 Jamshidzadeh A, Sajedianfard J, Nekooeian AA, Tavakoli F, Omrani GH (2006) Effects of camphor on sexual behaviors in male rats. Iran J Pharm Sci 2:209–214 Jegede T, Fagbenro O (2008a) Histology of gonads in Oreochromis niloticus (Trewavas) fed pawpaw (Carica papaya) seed meal diets. In: 8th international symposium on Tilapia in aquaculture, pp 1135–1141 Jegede T, Fagbenro O (2008b) Dietary neem (Azadirachta indica) leaf meal as reproduction inhibitor in redbelly tilapia, Tilapia zillii. In: 8th international symposium on Tilapia in aquaculture, pp 365–373 Ji S-C, Jeong G-S, Gwang-Soon I, Lee S-W, Yoo J-H, Takii K (2007) Dietary medicinal herbs improve growth performance, fatty acid utilization, and stress recovery of Japanese flounder. Fish Sci 73:70–76 Khalil FF, Farrag FH, Mehrim AI, Refaey MMA (2014) Pawpaw (Carica papaya) seeds powder in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) diets: 2 Liver status, sexual hormones and histological structure of the gonads. Egypt J Aquat Biol Fish 18:97–113 Lam TL, Lam ML, Au TK, Ip DT, Ng TB, Fong WP, Wan DC (2000) A comparison of human immunodeficiency virus type-1 protease inhibition activities by the aqueous and methanol extracts of Chinese medicinal herbs. Life Sci 67:2889–2896 Li YW, Liu L, Huang PR, Fang W, Luo ZP, Peng HL, Want YX, Li AX (2014) Chronic streptococcosis in Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.), caused by Streptococcus agalactiae. J Fish Dis 37:757–763 Logambal SM, Venkatalakshmi S, Michael RD (2000) Immunostimulatory effect of leaf extract of Ocimum sanctum Linn. in Oreochromis mossambicus (Peters). Hydrobiologia 430:113–120 Mathur A, Dixit VP, Dobal MP (1995) Antifertility plant product: Euphorbia hirta in males. In: Proceedings of the international symposium on male contraception: present and future Mousa MAA, El-Ashram AMM, Hamed M (2008) Effect of neem leaf extract on freshwater fishes and zooplankton community. In: 8th international symposium on Tilapia in aquaculture, pp 307–318 Munglue P (2014) Effects of dietary Nelumbo nucifera (lotus) peduncle extract on growth performance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). The 1st environmental and natural resources international conference, 6–7th November, The Sukosol Hotel, Bangkok, Thailand, pp 279–310 Ng WK, Romano N (2013) A review of the nutrition and feeding management of farmed tilapia throughout the culture cycle. Rev Aquac 5:220–254 Obaroh IO, Achionye-Nzeh GC (2011) Effects of crude extract of Azadirachta indica leaves at controlling prolific breeding in Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1758). Asian J Agric Res 5:277–282 Obaroh IO, Nzeh GG (2013) Antifertility effect of some plant leaf extracts on the prolific breeding of Oreochromis niloticus. Acad J Interdiscip Stud 2:87–94 Osuala FO, Okwuosa VN (1993) Toxicity of Azadirachta indica to freshwater snails and fish, with reference to the physicochemical factor effect on potency. Appl Parasitol 34:63–68 Putra A, Santoso U, Lee M-C, Nan F-H (2013) Effects of dietary katuk leaf extract on growth performance, feeding behavior and water quality of grouper Epinephelus coioides. Aceh Int J Sci Technol 2:17–25 Rattanachaikunsopon P, Phumkhachorn P (2010) Potential of cinnamon (Cinnamomum verum) oil to control Streptococcus iniae infection in tilapia (Oreochromis niloticus). Fish Sci 76:287–293 Reverter M, Bontemps N, Lecchini D, Banaigs B, Sasal P (2014) Use of plant extracts in fish aquaculture as an alternative to chemotherapy: current status and future perspectives. Aquaculture 433:50–61 Saccol EMH, Uczay J, Pês TS, Finamor IA, Ourique GM, Riffel APK, Schmidt D, Caron BO, Heinzmann BM, Llesuy SF, Lazzari R, Baldisserotto B, Pavanato MA (2013) Addition of Lippia alba (Mill) N. E. Brown essential oil to the diet of the silver catfish: an analysis of growth, metabolic and blood parameters and the antioxidant response. Aquaculture 416–417:244–254 Saravanan M, Kumar DV, Malarvizhi A, Ramesh M (2010) Biosafety of Azadirachta indica (A. Juss) leaves extracts on certain biochemical parameters of Labeo rohita. J Biopestic 3:227–231 Sarder MRI, Thompson KD, Penman DJ, McAndrew BJ (2001) Immune responses of the Nile tilapia, Oreochromis niloticus L. clones. Non-specific responses. Dev Comp Immunol 25:37–46 Shalaby AM, Khattab YA, Abdel Rahman AM (2006) Effects of garlic (Allium sativum) and chloramphenicol on growth performance, physiological parameters and survival of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). J Venom Anim Toxins 12:172–201 Sheikhlar A, Alimon AR, Daud H, Saad CR, Ramezani-Fard E (2011) Effects of crude methanol extract of Euphorbia hirta on hematological and biochemical indices and histological changes of liver in African catfish Clarias gariepinus (Burchell, 1822). J Fish Aquat Sci 6:802–808 Singh AK (2013) Introduction of modern endocrine techniques for the production of monosex population of fishes. Gen Comp Endocrinol 181:146–155 Srijunngam J, Wattanasirmkit K (2001) Histological structures of Nile tilapia Oreochromis niloticus Linn. ovary. Nat Hist J Chulalongkorn Univ 1:53–59 Suanyuk N, Kong F, Ko D, Gilbert GL, Supamattaya K (2008) Occurrence of rare genotypes of Streptococcus agalactiae in culture red tilapia Oreochromis sp. and Nile tilapia O. niloticus in Thailand—Relationship to human isolates? Aquaculture 284:35–40 Talpur AD, Ikhwanuddin M (2013) Azadirachta indica (neem) leaf dietary effects on the immunity response and disease resistance of Asian seabass, Lates calcarifer challenged with Vibrio harveyi. Fish Shellfish Immunol 34:254–264 Winkaler EU, Santos TR, Machado-Neto JG, Martinez CB (2007) Acute lethal and sublethal effects of neem leaf extract on the neotropical freshwater fish Prochilodus lineatus. Comp Biochem Physiol 145C:236–244 Yeh R-Y, Shiu Y-L, Shei S-C, Cheng S-C, Huang S-Y, Lin J-C, Liu C-H (2009) Evaluation of the antibacterial activity of leaf and twig extracts of stout camphor tree, Cinnamomum kanehirae, and the effects on immunity and disease resistance of white shrimp, Litopenaeus vannamei. Fish Shellfish Immunol 27:26–32