Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tác động của việc truyền apomorphine tại chỗ lên mức citrulline ngoại bào trong vùng đuôi: Vai trò của các thụ thể dopamine D1 và D2
Tóm tắt
Các nghiên cứu sử dụng vi điều hòa sinh học và sắc ký lỏng hiệu suất cao cho thấy việc truyền địa phương chất ức chế tổng hợp NO N-nitro-L-arginine (1 mM) vào vùng đuôi làm giảm, trong khi việc truyền chất kích thích thụ thể dopamine apomorphine (100 µM) làm tăng mức citrulline (một sản phẩm phụ của quá trình tổng hợp nitric oxide) trong không gian gian bào của cấu trúc này trên chuột Sprague-Dawley. Sự gia tăng mức citrulline do việc truyền apomorphine gây ra đã bị ngăn chặn hoàn toàn bởi việc truyền địa phương N-nitro-L-arginine (1 mM) và raclopride (10 µM), một chất chặn thụ thể dopamine D2, nhưng không bị ảnh hưởng bởi việc truyền SCH-23390 (50 µM), một chất chặn thụ thể dopamine D1. Những dữ liệu này cho thấy rằng sự gia tăng citrulline ngoại bào trong vùng đuôi do kích thích dopaminergic xảy ra từ sự gia tăng hoạt động của tổng hợp NO địa phương và rằng tác động này liên quan đến các thụ thể dopamine D2, nhưng không phải D1.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
S. A. Savel’ev, N. S. Repkina, and N. B. Saul’skaya, “A sensitive method for estimating citrulline for the vital monitoring of nitric oxide production in the CNS,” Ros. Fiziol. Zh. im. I. M. Sechenova, 91, No. 5, 587–591 (2005).
V. Bashkatova, M. Kraus, H. Prast, A. Vanin, K. Rayevsky, and A. Phillipu, “Influence of NOS inhibitors on changes in ACH release and NO level in the brain elicited by amphetamine neurotoxicity,” NeuroReport, 10, No. 15, 3155–3158 (1999).
E. Bracci, D. Centonze, G. Bernardi, and P. Calabresi, “Dopamine excites fast spiking interneurons in the striatum,” J. Neurophysiol., 87, 2190–2194 (2002).
M. Carlberg, “Assay of neuronal nitric oxide synthase by HPLC determination of citrulline,” J. Neurosci. Meth., 52, 165–167 (1994).
J. De Vente, M. Markerink van Ittersum, J. Van Aheelen, P. C. Emson, H. Axer, and H. W. Steinbusch, “NO-mediated cGMP synthesis in cholinergic neurons in the rat forebrain: effects of lesioning dopaminergic or serotonergic pathways on nNOS and cGMP synthesis,” Eur. J. Neurosci., 12, 507–519 (2000).
J. Garthwaite, S. L. Charles, and R. Chess-Williams, “Endothelium-derived relaxing factor release on activation of NMDA receptors suggests role as intercellular messenger in the brain,” Nature, 336, 385–388 (1988).
Y. Kawaguchi, Ch. J. Wilson, S. J. Augood, and P. C. Emson, “Striatal interneurones: chemical, physiological and morphological characterization,” Trends Neurosci., 18, 527–535 (1995).
K. M. Kendrick, R. Guevara-Guzman, C. Riva, J. Christensen, K. Ostergaard, and P. C. Emson, “NMDA and kainite-evoked release of nitric oxide and classical transmitters in the rat striatum: in vivo evidence that nitric oxide may play a neuroprotective role,” Eur. J. Neurosci., 8, 2619–2634 (1996).
R. G. Knowles and S. Moncada, “Nitric oxide synthases in mammals,” J. Biochem., 298, 249–258 (1994).
G. P. T. Martinalli, V. L. Friedrich, and G. R. Holstein, “L-citrulline immunostaining identifies nitric oxide production sites within neurons,” Neurosci., 114, No. 1, 111–122 (2002).
T. Momiyama and E. Koga, “Dopamine D(2)-like receptors selectively block N-type Ca(2+) channels to reduce GABA release onto rat striatal cholinergic interneurones,” J. Physiol. (London), 533, 479–492 (2001).
K. Ohta, K. Shimazu, S. Komatsumoto, N. Araki, M. Shibata, and Y. Fukuuchi, “Modification of striatal arginine and citrulline metabolism by nitric synthase inhibitor,” Neurochemistry, 5, 766–768 (1994).
C. Paxinos and C. Watson, The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates, Academic Press, San Diego, New York, Berkeley, Sydney, Tokyo, Toronto Second edition (1978).
V. F. Sahach, O. V. Baziliuk, M. M. Oleshko, O. V. Kotsiuruba, O. M. Bukhanevych, and O. Appenzeller, “The nitric oxide system in a chronic deficiency of mesostriatal dopamine: the action of nitroglycerin, ” Fiziolohichnyi Zhurnal, 46, 55–63 (2000).
N. B. Saulskaya and M. O. Mikhailova, “Feeding-induced decrease in extracellular glutamate level in the rat nucleus accumbens: dependence on glutamate uptake,” Neurosci., 112, No. 4, 791–801 (2002).