Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Ảnh hưởng của sự hấp thu chì, kẽm và đồng đến tốc độ dẫn truyền dây thần kinh ngoại biên ở công nhân chế biến kim loại
Tóm tắt
Để kiểm tra các tác động đối kháng của chì, kẽm và đồng lên hệ thần kinh ở con người, chúng tôi đã đo tốc độ dẫn truyền vận động tối đa và cảm giác (MCV và SCV, tương ứng) ở dây thần kinh quay và thần kinh giữa ở 20 người thợ đúc kim loại với sự hấp thu các kim loại này tăng lên mà không có triệu chứng [nồng độ chì trong máu dao động từ 16 đến 64 μg/dl (trung bình 42)]; và phân tích ảnh hưởng của các kim loại đến dẫn truyền dây thần kinh bằng phân tích hồi quy bội. Tốc độ MCV ở dây thần kinh quay và thần kinh giữa và SCV ở đoạn cẳng tay của dây thần kinh giữa đã chậm một cách có ý nghĩa; các chỉ số hấp thu chì (axit delta-aminolevulinic trong nước tiểu và coproporphyrin) đã có tương quan nghịch với SCV ở dây thần kinh quay. SCV ở dây thần kinh quay và ở đoạn tay của dây thần kinh giữa, mà không bị chậm có ý nghĩa, lại có tương quan thuận với các chỉ số hấp thu đồng (đồng huyết tương hoặc đồng trong hồng cầu). SCV ở dây thần kinh quay cũng có mối quan hệ thuận với chỉ số hấp thu kẽm (kẽm huyết tương); tương tự, MCV ở dây thần kinh quay và thần kinh giữa có mối quan hệ thuận với các chỉ số hấp thu kẽm (kẽm trong hồng cầu hoặc kẽm trong nước tiểu). Những phát hiện này gợi ý rằng, đồng và kẽm có tác dụng đối kháng với các tác động dưới lâm sàng của chì lên tốc độ dẫn truyền dây thần kinh ngoại vi; tốc độ dẫn truyền ở dây thần kinh quay distal nhạy cảm không chỉ với sự hấp thu chì không triệu chứng mà còn với sự hấp thu kẽm và đồng.
Từ khóa
#chì #kẽm #đồng #tốc độ dẫn truyền dây thần kinh #công nhân chế biến kim loại #hiệu ứng đối khángTài liệu tham khảo
Aono H, Araki S (1984) The effects of CaEDTA injection on lead, zinc, copper and ALAD in erythrocyte, plasma and urine in lead-exposed workers: a 24-h observation. Int Arch Occup Environ Health 55:13–18
Araki S, Honma T (1976) Relationships between lead absorption and peripheral nerve conduction velocities in lead workers. Scand J Work Environ Health 4:225–231
Araki S, Murata K, Yokoyama K, Yanagihara S, Niinuma Y, Yamamoto R, Ishihara N (1983) Circadian rhythms in the urinary excretion of metals and organic substances in “healthy” men. Arch Environ Health 38:360–366
Araki S, Aono H, Fukahori M, Tabuki K (1984) Behavior of lead and zinc in plasma, erythrocytes, and urine and ALAD in erythrocytes following intravenous infusion of CaEDTA in lead workers. Arch Environ Health 39:363–367
Araki S, Murata K, Aono H (1986) Subclinical cervico-spino-bulbar effects of lead: a study of short-latency somatosensory evoked potentials in workers exposed to lead, zinc, and copper. Am J Ind Med 10:163–175
Ashby JAS (1980) A neurological and biochemical study of early lead poisoning. Br J Ind Med 37:133–140
Baloh RW, Spivey GH, Brown CP, Morgan D, Campion DS, Browdy BL, Valentine JL, Gonick HC, Massey FJ, Culver BD (1979) Subclinical effects of chronic increased lead absorption — a prospective study II. Results of baseline neurologic testing. J Occup Med 21:490–496
Bordo BM, Filippini G, Massetto N, Musicco M, Boeri R (1982) Electrophysiological study of subjects occupationally exposed to lead and with low levels of lead poisoning. Scand J Work Environ Health 8 [Suppl 1]:142–147
Buchthal F, Behse F (1979) Electrophysiology and nerve biopsy in men exposed to lead. Br J Ind Med 36:135–147
Cerklewski FL, Forbes RM (1976) Influence of dietary zinc on lead toxicity in the rat. J Nutr 106:689–696
Cerklewski FL, Forbes RM (1977) Influence of dietary copper on lead toxicity in the young male rat. J Nutr 107:143–146
Chen ZQ, Chan QI, Par CC, Qu JY (1985) Peripheral nerve conduction velocity in workers occupationally exposed to lead. Scand J Work Environ Health 11 [Suppl 4]:26–28
Corsi G, Bartolucci GB, Fardin P, Negrin P, Manzoni S (1984) Biochemical and electrophysiological study of subjects with a history of past lead exposure. Am J Ind Med 6:281–290
Downie AW, Scott TR (1967) An improved technique for radial nerve conduction studies. J Neurol Neurosurg Psychiat 30:332–336
Hietanen E, Aitio A, Koivusaari U, Kilpio J, Nevalainen T, Nährhi M, Savolainen H, Vainio H (1982) Tissue concentrations and interaction of zinc with lead toxicity in rabbits. Toxicology 25:113–127
Jebsen RH (1966) Motor conduction velocity of distal radial nerve. Arch Phys Med Rehabil 47:12–16
Jebsen RH (1966) Motor conduction velocity in proximal and distal segments of the radial nerve. Arch Phys Med Rehabil 47:597–602
Jeyaratnam J, Devathasan G, Ong CN, Phoon WO, Wong PK (1985) Neurophysiological studies on workers exposed to lead. Br J Ind Med 42:173–177
Klauder DS, Petering HG (1975) Protective value of dietary copper and iron against some toxic effects of lead in rats. Environ Health Perspect 12:77–80
Lilis R, Fischbein A, Eisinger J, Blumberg WE, Diamond S, Anderson HA, Rom W, Rice C, Sarkozi L, Kon S, Selikoff IJ (1977) Prevalence of lead disease among secondary lead smelter workers and biological indicators of lead exposure. Environ Res 14:255–285
Malhotra KM, Shukla GS, Chandra SV (1982) Neurochemical changes in rats coexposed to lead and copper. Arch Toxicol 49:331–336
Meredith PA, Moore MR (1980) The in vivo effects of zinc on erythrocyte deltaaminolaevulinic acid dehydratase in man. Int Arch Occup Environ Health 45:163–168
Nielsen CJ, Nielsen VK, Kirkby H, Gyntelberg F (1982) Absence of peripheral neuropathy in long-term lead-exposed subjects. Acta Neurol Scandinav 65:241–247
Okuno T, Kume H, Haga T, Yoshizawa T (1971) Multivariate statistical methods. Nikkagiren, Tokyo [in Japanese]
Paulev P-E, Gry C, Dossing M (1979) Motor nerve conduction velocity in asymptomatic lead workers. Int Arch Occup Environ Health 43:37–43
Rehman SU, Chandra O (1984) Regional interrelationships of zinc, copper and lead in the brain following lead intoxication. Bull Environ Contam Toxicol 32:157–165
Repko JD, Corum CR, Jones PD, Garcia JrLS (1978) The effects of inorganic lead on behavioral and neurologic function. US Government Printing Office, Washington, DC, pp 1–92
Rosen I, Wildt K, Gullberg B, Berlin M (1983) Neurophysiological effects of lead exposure. Scand J Work Environ Health 9:431–441
Seppäläinen AM, Tola S, Hernberg S, Kock B (1975) Subclinical neuropathy at “safe” levels of lead exposure. Arch Environ Health 30:180–183
Seppäläinen AM, Hernberg S, Vesanto R, Kock B (1983) Early neurotoxic effects of occupational lead exposure: a prospective study. Neurotoxicology 4:181–192
Singer R, Valciukas JA, Lilis R (1983) Lead exposure and nerve conduction velocity: the differential time course of sensory and motor nerve effects. Neurotoxicology 4:193–202
Spivey GH, Baloh RW, Brown CP, Browdy BL, Campion DS, Valentine JL, Morgan DE, Culver BD (1980) Subclinical effects of chronic increased lead absorption — a prospective study III. Neurologic findings at follow-up examination. J Occup Med 22:607–612
Thomasino JA, Zuroweste E, Brooks SM, Petering HG, Lerner SI, Finelli VN (1977) Lead, zinc, and erythrocyte delta-aminolevulinic acid dehydratase: relationships in lead toxicity. Arch Environ Health 32:244–247
Triebig G, Weltle D, Valentin H (1984) Investigations on neurotoxicity of chemical substances at the workplace V. Determination of the motor and sensory nerve conduction velocity in persons occupationally exposed to lead. Int Arch Occup Environ Health 53:189–204
Vasilescu C (1973) Motor nerve conduction velocity and electromyogram in chronic lead poisoning. Rev Roum Neurol 10:221–226