Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Ảnh hưởng của Pseudomonas putida và Rhizophagus irregularis khi tác động riêng lẻ và kết hợp đến sự phát triển, nội dung chlorophyll, carotenoid và phức hợp bệnh của cà rốt
Tóm tắt
Các tác động của Pseudomonas putida và Rhizophagus irregularis khi được áp dụng riêng lẻ và kết hợp đã được quan sát trên các yếu tố bệnh do Meloidogyne incognita, Alternaria dauci và Rhizoctonia solani gây ra ở cà rốt (Daucus carota). Rhizoctonia solani gây ra mức suy giảm cao hơn trong sự phát triển của cây trồng, hàm lượng chlorophyll và carotenoid, tiếp theo là A. dauci và M. incognita. Việc sử dụng P. putida và R. irregularis, cả khi áp dụng riêng lẻ và kết hợp, đã tạo ra sự gia tăng đáng kể trong sự phát triển của cây trồng, chlorophyll, carotenoid và làm giảm các chỉ số bệnh, sự nổi galls và sự sinh sản của tuyến trùng. Việc áp dụng P. putida tạo ra sự gia tăng lớn hơn trong sự phát triển của cây, hàm lượng chlorophyll và carotenoid, và làm giảm các chỉ số bệnh, sự nổi galls và mức độ sinh sản của tuyến trùng vượt trội hơn so với R. irregularis. Việc áp dụng P. putida kết hợp với R. irregularis là giải pháp tốt nhất cho việc quản lý phức hợp bệnh M. incognita, A. dauci và R. solani. Mức độ xâm nhập của R. irregularis/P. putida ở mức cao khi tác động riêng lẻ, nhưng việc xâm nhập của cả hai tác nhân sinh học này đã tăng lên khi được cùng nhau cấy chứa. M. incognita, A. dauci và R. solani đã làm giảm mức độ xâm nhập vào bộ rễ do P. putida và R. irregularis gây ra. Các chỉ số bệnh được đánh giá theo thang điểm từ 1 đến 5. Chỉ số bệnh cháy lá và thối ngọn lần lượt gần đạt mức 3 khi A. dauci và R. solani được cấy chứa. Các chỉ số bệnh gần đạt mức 5 khi các tác nhân gây bệnh được cấy chứa kết hợp theo nhóm 2 hoặc 3. Việc áp dụng P. putida hoặc R. irregularis cùng với A. dauci hoặc R. solani đã giảm chỉ số xuống còn gần mức 2, trong khi cả hai tác nhân sinh học cùng nhau đã giảm chỉ số xuống gần mức 1. Trong các phép thử khác, các chỉ số bệnh nằm trong khoảng 2–4 trên 5. Phân tích các thành phần chính cho thấy có sự tương quan đáng kể giữa các thuộc tính khác nhau đã nghiên cứu với 82.10% sự biến động tổng thể của dữ liệu.
Từ khóa
#Pseudomonas putida #Rhizophagus irregularis #Meloidogyne incognita #Alternaria dauci #Rhizoctonia solani #sự phát triển cây trồng #chlorophyll #carotenoid #phức hợp bệnh #cà rốtTài liệu tham khảo
Ahmad L, Siddiqui ZA (2019) Effects of different inoculum levels of Meloidogyne incognita, Alternaria dauci and Rhizoctonia solani on the growth, chlorophyll and carotenoid and disease progression of carrot (Daucus carota L.). Acta Phytopathol Entomol Hung 54(2):211–220
Ahmad L, Siddiqui ZA, Abdallah EF (2019) Effects of interaction of Meloidogyne incognita, Alternaria dauci and Rhizoctonia solani on the growth, chlorophyll, carotenoid and proline contents of carrot in three types of soil. Acta Agric Scand B 69(4):324–331
Akkopru A, Demir S (2005) Biocontrol of Fusarium wilt in tomato caused by Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici by AMF Glomus intraradices and some rhizobacteria. J Phytopathol 153:544–550
Bagyaraj DJ, Manjunath A, Reddy DDR (1979) Interaction of vesicular arbuscular mycorrhizas with root knot nematodes in tomato. Plant Soil 51:397–403
Berova M, Stoeva N, Zlatev Z, Stoilova T, Chavdarov P (2007) Physiological changes in bean (Phaseolus vulgaris L.) leaves, infected by the most important bean disease. J Cent Eur Agric 8:57–62
Bødker L, Kjøller R, Rosendahl S (1998) Effect of phosphorus and the arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices on disease severity of root rot of peas (Pisum sativum) caused by Aphanomyces euteiches. Mycorrhiza 8:169–174
Chen M, Arato M, Borghi L, Nouri E, Reinhardt D (2018) Beneficial services of arbuscular mycorrhizal fungi from ecology to application. Front Plant Sci. https://doi.org/10.3389/fpls.2018.01270
Cui M, Nobel PS (1992) Nutrient status, water uptake and gas exchange for three desert succulents infected with mycorrhizal fungi. New Phytol 122:643–649
Demir S, Akkopru A (2005) Use of arbuscular mycorrhizal fungi for biocontrol of soilborne fungal plant pathogens. In: Chincholkar SB, Mukerji KG (eds) Biological control of plant diseases. Howarth Press, New York, pp 17–37
Dreosti IE (1993) Vitamins A, C, E and beta-carotene as protective factors for some cancers. Asia Pac J Clin Nutr 2:5–21
Duponnois R (2006) Bacteria helping mycorrhiza development. In: Mukerji KG, Manoharachary C, Singh J (eds) Microbial activity in the rhizosphere. Springer, Berlin, pp 297–310
Fassuliotis G (1970) Resistance of Cucumis spp. to the root-knot nematode Meloidogyne incognita acrita. J Nematol 2:174–178
Frey-Klett P, Garbaye J, Tarkka M (2007) The mycorrhiza helper bacteria revisited. New Phytol 176:22–36. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2007.02191.x
Garbaye J (1994) Helper bacteria: a new dimension to the mycorrhizal symbiosis. New Phytol 128:197–210
Gerdemann JW, Nicholson TH (1963) Spore and mycorrhizal Endogone species extracted from soil by wet sieving and decanting. Trans Br Mycol Soc 46:235–244
Giovannetti M, Mosse B (1980) An evaluation of techniques for measuring vesicular-arbuscular mycorrhizal infection in roots. New Phytol 84:498–500
Grisham MP, Anderson NA (1983) Pathogenicity and host specificity of Rhizoctonia solani isolated from carrots. Phytopathology 73:1564–1569
Gugino BK, Abawi GS, Ludwig JW (2006) Damage and management of Meloidogyne hapla using oxamyl on carrot in New York. J Nematol 38:483–490
Hart MM, Forsythe JA (2012) Using arbuscular mycorrhizal fungi to improve the nutrient quality of crops; nutritional benefits in addition to phosphorus. Sci Hortic 148:206–214. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2012.09.018
Hepper CM, Mosse B (1980) Vesicular-arbuscular mycorrhiza in root organ cultures. In: Ingram DS, Helgeson JP (eds) Tissue culture methods for plant pathologists. Blackwell Scientific Publications, Oxford, pp 161–171
Hildebrandt U, Regvar M, Bothe H (2007) Arbuscular mycorrhiza and heavy metal tolerance. Phytochemistry 68:139–146. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2006.09.023
Johansson JF, Paul LR, Finlay RD (2004) Microbial interactions in the mycorrhizosphere and their significance for sustainable agriculture. FEMS Microbiol Ecol 48:1–13
Khan MR, Siddiqui ZA (2019) Potential of Pseudomonas putida, Bacillus subtilis, and their mixture on the management of Meloidogyne incognita, Pectobacterium betavasculorum, and Rhizoctonia solani disease complex of beetroot (Beta vulgaris L.). Egypt J Biol Pest Control 29:1–14. https://doi.org/10.1186/s41938-019-0174-0
Khan AG, Kuek C, Chaudhry TM, Khoo CS, Hayes WJ (2000) Role of plants, mycorrhizae and phytochelators in heavy metal contaminated land remediation. Chemosphere 41:197–207. https://doi.org/10.1016/S0045-6535(99)00412-9
Koske R, Tessier B (1983) A convenient, permanent slide mounting medium. Mycol Soc Am Newsl 34:59
Linderman RG (1994) Role of VAM fungi in biocontrol. In: Bethelenfalvay GJ, Linderman RG (eds) Mycorrhizae and plant health. APS Press, St Paul, pp 1–26
Mackinney G (1941) Absorption of light by chlorophyll solutions. J Biol Chem 140:315–322
Maclachlan S, Zalik S (1963) Plastid structure, chlorophyll concentration, and free amino acid composition of a chlorophyll mutant of barley. Can J Bot 41(7):1053–1062
Manasfi Y, Cannesan MA, Riah W, Bressan M, Laval K, Driouich A, Vicré M, Gattin IT (2018) Potential of combined biological control agents to cope with Phytophthora parasitica, a major pathogen of Choisya ternata. Eur J Plant Pathol 152:1011–1025
Mehnaz S, Lazarovits G (2006) Inoculation effects of Pseudomonas putida, Gluconacetobacter azotocaptans, and Azospirillum lipoferum on corn plant growth under greenhouse conditions. Microb Ecol 51(3):326–335
Nesha R, Siddiqui ZA (2013) Interactions of Pectobacterium carotovorum pv. carotovorum, Xanthomonas campestris pv. carotae and Meloidogyne javanica on the disease complex of carrot. Int J Veg Sci 19:403–411
Oliver C, Hernández I, Caminal M, Lara JM, Fernàndez C (2019) Pseudomonas putida strain B2017 produced as technical grade active ingredient controls fungal and bacterial crop diseases. Biocontrol Sci Technol 29(11):1053–1068
Pagano MC (2016) Recent advances on mycorrhizal fungi. Springer, Cham. https://doi.org/10.1007/978-3-319-24355-9_1
Pivato B, Offre P, Marchelli S, Barbonaglia B, Mougel C, Lemanceau P (2009) Bacterial effects on arbuscular mycorrhizal fungi and mycorrhiza development as influenced by the bacteria, fungi, and host plant. Mycorrhiza 19:81–90
Porter WM (1979) “The most probable number” method of enumerating infective propagules of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Trans Br Mycol Soc 55:158–161
Pryor BM, Strandberg JO (2001) Alternaria leaf blight of carrot. In: Davis RM, Raid RN (eds) Compendium of umbelliferous crop diseases. APS Press, St. Paul
Reddy PP (1974) Studies on the action of amino acids on the root-knot nematode Meloidogyne incognita. Ph.D. Thesis, University of Agriculture Sciences Banglore, India.
Riker AJ, Riker RS (1936) Introduction to research on plant diseases. John’s Swift Co., New York
Sasser JN, Carter CC (1985) An advanced treatise on Meloidogyne, vol 1. North Carolina State University Graphics, Raleigh
Sharma PD (2001) Microbiology. Rastogi and Company, Meerut
Shi J, Liu A, Li X, Chen W (2013) Control of Phytophthora nicotianae disease, induction of defense responses and genes expression of papaya fruits treated with Pseudomonas putida MGP1. J Sci Food Agric 93(3):568–574
Siddiqui ZA, Akhtar MS (2008) Effects of fertilizers, AM fungus and plant growth promoting rhizobacterium on the growth of tomato and on the reproduction of root-knot nematode Meloidogyne incognita. J Plant Interact 3:263–271
Siddiqui ZA, Futai K (2009) Biocontrol of Meloidogyne incognita on tomato using antagonistic fungi, plant-growth-promoting rhizobacteria and cattle manure. Pest Manag Sci 65:943–948
Siddiqui ZA, Mahmood I (1995a) Role of plant symbionts in nematode management, a review. Bioresour Technol 54:217–226
Siddiqui ZA, Mahmood I (1995b) Some observations on the management of the wilt disease complex of pigeonpea by treatment with vesicular-arbuscular fungus and biocontrol agents for nematodes. Bioresour Technol 54:227–230
Siddiqui ZA, Pichtel J (2008) Mycorrhizae: an overview. In: Siddiqui ZA, Akhtar MS, Futai K (eds) Mycorrhizae: sustainable agriculture and forestry. Springer, Dordrecht, pp 1–35
Smith SE, Read DJ (2008) Mycorrhizal symbiosis, 3rd edn. Academic Press, New York
Smith SE, Jakobsen I, Grønlund M, Smith FA (2011) Roles of arbuscular mycorrhizas in plant phosphorus nutrition: interactions between pathways of phosphorus uptake in arbuscular mycorrhizal roots have important implications for understanding and manipulating plant phosphorus acquisition. Plant Physiol 156(3):1050–1057. https://doi.org/10.1104/pp.111.174581
Sneath PH, Sokal RR (1973) Numerical taxonomy. The principles and practice of numerical classification. W. H. Freeman and Company, San Francisco, p 573
Souza T (2015) Handbook of arbuscular mycorrhizal fungi. Springer, Berlin. https://doi.org/10.1007/978-3-319-24850-9
Speizer FE, Colditz GA, Hunter DJ, Rosner B, Hennekens C (1999) Prospective study of smoking, antioxidant intake and lung cancer in middle aged women. Cancer Causes Control 10:475–482
Suresh CK (1980) Interaction between vesicular arbuscular mycorrhizae and root-knot nematodes in tomato. M.Sc. (Agric.) Thesis, University of Agriculture Sciences, Banglore, India.
Takács T, Cseresnyés I, Kovács R, Parádi I, Kelemen B, Szili-Kovács T, Füzy A (2018) Symbiotic effectivity of dual and tripartite associations on soybean (Glycine max L. Merr.) cultivars inoculated with Bradyrhizobium japonicum and AM Fungi. Front Plant Sci 9:1–14
Tariq M, Yasmin S, Hafeez FY (2010) Biological control of potato black scurf by rhizosphere associated bacteria. Braz J Microbiol 41(2):439–451
Tisserant E, Malbreil M, Kuo A, Kohler A, Symeonidi A, Balestrini R, Charron P, Duensing N, Frey NF, Gianinazzi-Pearson V, Gilbert LB, Handa Y, Herr JR, Hijri M, Koul R, Kawaguchi M, Krajinski F, Lammers PJ, Masclaux FG, Murat C, Morin E, Ndikumana S, Pagni M, Petitpierre D, Requena N, Rosikiewicz P, Riley R, Saito K, Clemente HS, Shapiro H, van Tuinen D, Becard G, Bonfante P, Paszkowski U, Shachar-Hill YY, Tuskan GA, Young JP, Sanders IR, Henrissat B, Rensing SA, Grigoriev IV, Corradi N, Roux C, Martin F (2013) Genome of an arbuscular mycorrhizal fungus provides insight into the oldest plant symbiosis. Proc Natl Acad Sci USA 110(50):20117–20122. https://doi.org/10.1073/pnas.1313452110
Turrini A, Avio L, Giovannetti M, Agnolucci M (2018) Functional complementarity of arbuscular mycorrhizal fungi and associated microbiota: the challenge of translational research. Front Plant Sci 9:10–13
Weller DM (1988) Biological control of soilborne plant pathogens in the rhizosphere with bacteria. Annu Rev Phytopathol 26:379–407
Weller DM (2007) Pseudomonas biocontrol agents of soilborne pathogens: looking back over 30 years. Phytopathology 97:250–256