Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tác động của liệu pháp quang động (PDT) đến sự biểu hiện của Nav1.7 trong các nơ-ron hạch tủy sống
Tóm tắt
Mục tiêu của nghiên cứu này là kiểm tra tác động của liệu pháp quang động (PDT) đến sự biểu hiện của Nav1.7 trong các nơ-ron hạch tủy sống (DRG). Các nơ-ron DRG sơ cấp từ chuột con SD đã được nuôi cấy. Các tế bào được xác định bằng nhuộm huỳnh quang với enolase đặc hiệu cho nơ-ron. Các nơ-ron DRG được chia thành bốn nhóm: nhóm đối chứng, nhóm chất nhạy sáng, nhóm laser và nhóm PDT. Sự sống sót của tế bào được phát hiện bằng bộ dụng cụ đếm tế bào-8 (CCK8). qRT-PCR và phương pháp Western blot được sử dụng để xác định mức độ biểu hiện mRNA và protein của Nav1.7 trong các nơ-ron DRG. Độ tinh khiết của các nơ-ron DRG sơ cấp được nuôi cấy lớn hơn 90%. So với nhóm đối chứng, không phát hiện sự thay đổi đáng kể nào trong sự sống sót của tế bào trong nhóm chất nhạy sáng, trong khi sự sống sót trong nhóm laser và nhóm PDT giảm đi đáng kể. Mức độ biểu hiện mRNA và protein của Nav1.7 ở nhóm laser và nhóm PDT cao hơn đáng kể so với nhóm đối chứng. Đồng thời, mức độ biểu hiện mRNA và protein của Nav1.7 cao hơn ở nhóm laser so với nhóm PDT. Cả liệu pháp laser và PDT đều có thể tăng cường sự biểu hiện của Nav1.7 trong các nơ-ron DRG, và hiệu ứng thúc đẩy này có thể liên quan đến cơn đau do điều trị lâm sàng gây ra. Nghiên cứu này cung cấp cơ sở nghiên cứu cho việc sử dụng laser và PDT để điều trị cơn đau. Hiểu rõ hơn về mối quan hệ giữa Nav1.7 và PDT có thể giúp các bác sĩ lâm sàng quản lý tốt hơn cơn đau liên quan đến PDT.
Từ khóa
#liệu pháp quang động #Nav1.7 #tế bào DRG #sự sống sót của tế bào #biểu hiện mRNA và proteinTài liệu tham khảo
Tanese K. Diagnosis and Management of Basal Cell Carcinoma. Curr Treat Options Oncol, 2019,20(2):13
Steeb T, Schlager JG, Kohl C, et al. Laser-assisted photodynamic therapy for actinic keratosis: A systematic review and meta-analysis. J Am Acad Dermatol, 2019,80(4):947–956
Han Y, Ying H, Zhang X, et al. Retrospective study of photodynamic therapy for pulsed dye laser-resistant port-wine stains. J Dermatol, 2020,47(4):348–355
Yin G, Zhang Y, Geng M, et al. Cure of condyloma acuminata covering the glans penis using aminolevulinic acid/photodynamic therapy. Photodiagnosis Photodyn Ther, 2020,30:101658
Wang B, Shi L, Zhang YF, et al. Gain with no pain? Pain management in dermatological photodynamic therapy. Br J Dermatol, 2017,177(3):656–665
Klein A, Karrer S, Horner C, et al. Comparing cold-air analgesia, systemically administered analgesia and scalp nerve blocks for pain management during photodynamic therapy for actinic keratosis of the scalp presenting as field cancerization: a randomized controlled trial. Br J Dermatol, 2015,173(1):192–200
Paquier-Valette C, Wierzbicka-Hainaut E, Cante V, et al. Evaluation of hypnosis in pain management during photodynamic therapy: a pilot study. Ann Dermatol Venereol (French), 2014,141(3):181–185
Hameed S. Na(v)1.7 and Na(v)1.8: Role in the pathophysiology of pain. Mol Pain, 2019,15:17448069–19858801.
Labau JIR, Estacion M, Tanaka BS, et al. Differential effect of lacosamide on Nav1.7 variants from responsive and non-responsive patients with small fibre neuropathy. Brain, 2020,143(3):771–782
Li CL, Li KC, Wu D, et al. Somatosensory neuron types identified by high-coverage single-cell RNA-sequencing and functional heterogeneity. Cell Res, 2016,26(1):83–102
Lin YT, Chen JC. Dorsal Root Ganglia Isolation and Primary Culture to Study Neurotransmitter Release. J Vis Exp, 2018,140:57569
Mavlyutov TA, Duellman T, Kim HT, et al. Sigma-1 receptor expression in the dorsal root ganglion: Reexamination using a highly specific antibody. Neuroscience, 2016,331:148–157
Dong W, Zhang X, Lu Z. Effect of 532nm photodynamic therapy with hemoporfin on the expression of vascular endothelial growth factor in cultured human vascular endothelial cells. Photodiagnosis Photodyn Ther, 2020,30:101793
Huang G, Hu M, Lu D, et al. Protective effect and potential mechanism of Schwann cell-derived exosomes on mechanical damage of rat dorsal root ganglion cells. J Obstet Gynaecol Res, 2021,47(10):3691–3701
Tang S, Jing H, Huang Z, et al. Identification of key candidate genes in neuropathic pain by integrated bioinformatic analysis. J Cell Biochem, 2020,121(2):1635–1648
Zhou M, Hu M, He S, et al. Effects of RSC96 Schwann Cell-Derived Exosomes on Proliferation, Senescence, and Apoptosis of Dorsal Root Ganglion Cells In Vitro. Med Sci Monit, 2018,24:7841–7849
Wood JN, Iseppon F. Sodium channels. Brain Neurosci Adv, 2018,2:2398212818810684.
Chang W, Berta T, Kim YH, et al. Expression and Role of Voltage-Gated Sodium Channels in Human Dorsal Root Ganglion Neurons with Special Focus on Nav1.7, Species Differences, and Regulation by Paclitaxel. Neurosci Bull, 2018,34(1):4–12
Sheets PL, Jackson JO,2nd, Waxman SG, et al. A Nav1.7 channel mutation associated with hereditary erythromelalgia contributes to neuronal hyperexcitability and displays reduced lidocaine sensitivity. J Physiol, 2007,581(Pt 3):1019–1031
Stępień A, Salacińska D, Staszewski J, et al. Paroxysmal extreme pain disorder in family with c.3892G > T (p.Val1298Phe) in the SCN9A gene mutation — case report. BMC Neurol, 2020,20(1):182
Cintra VP, Dohrn MF, Tomaselli PJ, et al. Rare mutations in ATL3, SPTLC2 and SCN9A explaining hereditary sensory neuropathy and congenital insensitivity to pain in a Brazilian cohort. J Neurol Sci, 2021,427:117498
Rush AM, Cummins TR, Waxman SG. Multiple sodium channels and their roles in electrogenesis within dorsal root ganglion neurons. J Physiol, 2007,579(Pt 1):1–14
Kwiatkowski S, Knap B, Przystupski D, et al. Photodynamic therapy — mechanisms, photosensitizers and combinations. Biomed Pharmacother, 2018,106: 1098–1107
Ming L, Cheng K, Chen Y, et al. Enhancement of tumor lethality of ROS in photodynamic therapy. Cancer Med, 2021,10(1):257–268
Fink C, Enk A, Gholam P. Photodynamic therapy-aspects of pain management[J]. J Dtsch Dermatol Ges, 2015,13(1):15–22
Isgrò MA, Bottoni P, Scatena R. Neuron-Specific Enolase as a Biomarker: Biochemical and Clinical Aspects. Adv Exp Med Biol, 2015,867:125–143
Chazotte B. Labeling nuclear DNA using DAPI. Cold Spring Harb Protoc, 2011,2011(1):b.prot5556
Ang JM, Riaz IB, Kamal MU, et al. Photodynamic therapy and pain: A systematic review. Photodiagnosis Photodyn Ther, 2017,19:308–344
Jia Q, Dong W, Zhang L, et al. Activating Sirt1 by resveratrol suppresses Nav1.7 expression in DRG through miR-182 and alleviates neuropathic pain in rats. Channels (Austin), 2020,14(1):69–78
Li X, Liu J, Liang S, et al. Temporal modulation of sodium current kinetics in neuron cells by near-infrared laser. Cell Biochem Biophys, 2013,67(3):1409–1419
Li X, Liu J, Liang S, et al. 980-nm infrared laser modulation of sodium channel kinetics in a neuron cell linearly mediated by photothermal effect. J Biomed Opt, 2014,19(10):105002