Tác động của sự thiếu hụt kẽm và bổ sung kẽm đến sự peroxy hóa lipid trong mô thận của chuột cắt buồng trứng

Biological Trace Element Research - Tập 101 - Trang 231-239 - 2004
Abdulkerim Kasim Baltaci1, Fusun Sunar1, Rasim Mogulkoc1, Esma Oztekin2
1Department of Physiology, Meram Medical School, Selcuk University, Konya, Turkey
2Department of Biochemistry, Meram Medical School, Selcuk University, Konya, Turkey

Tóm tắt

Mục đích của nghiên cứu này là điều tra cách thức thiếu hụt kẽm và bổ sung kẽm ảnh hưởng đến sự peroxy hóa lipid trong mô thận của chuột cắt buồng trứng. Bốn nhóm nghiên cứu đã được hình thành, mỗi nhóm có 10 con chuột Sprague-Dawley. Hai nhóm là các nhóm chứng bình thường và chuột cắt buồng trứng; hai nhóm còn lại là chuột cắt buồng trứng bị thiếu kẽm và chuột cắt buồng trứng được bổ sung kẽm, tương ứng. Những con chuột cắt buồng trứng thiếu kẽm cho thấy sự peroxy hóa lipid thận và huyết tương lớn hơn, được chỉ ra bởi mức malondialdehyde cao hơn so với tất cả các nhóm khác (p<0.05). Các giá trị này cao hơn ở nhóm chứng cắt buồng trứng so với nhóm chứng bình thường và nhóm cắt buồng trứng được bổ sung kẽm (p<0.05), trong khi đó, nhóm cắt buồng trứng bổ sung kẽm không cho thấy sự khác biệt đáng kể nào về mức malondialdehyde thận và huyết tương của họ. Mức glutathione trong thận và hồng cầu ở những con chuột được bổ sung kẽm cao hơn so với tất cả các nhóm khác (p<0.05). Nhóm thiếu kẽm có mức glutathione thận và hồng cầu thấp nhất (p<0.05). Mức kẽm trong mô thận của chuột cắt buồng trứng cao hơn so với các động vật thiếu kẽm, nhưng thấp hơn so với nhóm chứng bình thường và chuột được bổ sung kẽm (p<0.05). Những động vật được bổ sung kẽm có mức kẽm mô thận cao nhất (p<0.05). Kết quả của nghiên cứu này gợi ý rằng sự thiếu hụt kẽm làm tăng tổn thương mô thận ở chuột cắt buồng trứng và việc bổ sung kẽm có thể được sử dụng để ngăn ngừa tình trạng này.

Từ khóa

#kẽm #thiếu hụt kẽm #bổ sung kẽm #peroxy hóa lipid #mô thận #chuột cắt buồng trứng

Tài liệu tham khảo

B. L. Vallee and K. H. Falchuk, The biochemical basis of zinc physiology, Physiol. Rev. 73, 79–118 (1993). Z. J. Ma and M. Yamaguchi, Alternation in bone components with increasing age of newborn rats:role of zinc in bone growth, J. Bone Miner. Metab., 18, 264–270 (2000). Z. J. Ma and M. Yamaguchi, Role of endogenous zinc in the enhancement of bone protein synthesis associated with bone growth of newborn rats, J. Bone Miner. Metab. 19, 38–44 (2001). M. Yamaguchi, Y. H. Gao, and Z. J. Ma, Synergistic effect of genistein and zinc on bone components in the femoral-metaphyseal tissues of femala rats, J. Bone Miner. Metab. 18, 77–83 (2000). F. Contreres, N. Simonovis, C. Fouillioux et al., Zincuria and zincemia in post-menopausal osteoporosis, Int. Congr. Series 1237, 219–229 (2002). A. Igarashi and M. Yamaguchi, Increase in bone protein components with healing rat fractures: enhancement by zinc treatment, Int. J. Mol. Med. 4, 615–620 (1999). N. M. Lowe, N. M. Lovw, W. D. Fraser, and M. J. Jackson, Is there a potential therapeutic value of copper and zinc for osteoporosis? Proc. Nutr. Soc. 61, 181–185 (2002). M. A. Gomez-Zubeldia, J. J. Arbues, G. Hinchado, A. G. Nogales, and J. C. Millan, Influence of estrogen replacement therapy on plasma lipid peroxidation, Menopause 8, 274–280 (2001). M. A. Gomez-Zubeldia, R. Hernandez, J. Viguera, J. J. Arbues, A. Aparicio, and J. C. Millan, Effect of bilateral ovariotomy and ovarian steroid hormones on the antioxidant systems and plasma malondialdehyde levels in Wistar rats, J. Endocr. Res. 26, 97–107 (2000). N. Stupka and P. M. Tiidus, Effects of ovariotomy and estrogen on ischemia-reperfusion injury in hindlimbs of femala rats, J. Appl. Physiol. 91, 1828–1835 (2001). M. Yamaguchi and S. Kishi, Prolonged administration of beta-alanyl-l-histidino zinc prevents bone loss in ovariectomized rats, Jpn. J. Pharmacol. 63, 203–207 (1993). M. Herzberg, A. Lusky, J. Blonder, and Y. Frenkel, The effect of estrogen replacement therapy on zinc in serum and urine, Obstet. Gynacol., 87, 1035–1040 (1996). M. Szatmahari, K. Steczek, J. Szucs, and I. Hollo, Zinc excretion in osteoporotic women, Orv. Hetil. 134, 911–914 (1993). S. R. Powell, The antioxidant properties of zinc, J. Nutr. 130, 1447–1454 (2000). A. Ozturk, A. K. Baltaci, R. Mogulkoc, et al., Effects of zinc deficiency and supplementation on malondialdehyde and glutathione levels in blood and tissue of rats performing swimming exercise, Biol. Trace Element Res. 94, 157–166 (2003). A. Ozturk, A. K. Baltaci, R. Mogulkoc and E. Oztekin, Zinc prevention of electromagnetically-induced damage to rat testicle and kidney tissues, Biol. Trace Element Res. 96, 247–254 (2003). A. K. Baltaci, K. Ozyurek, R. Mogulkoc, E. Kurtoglu, E. Oztekin, and A. Kul, Effects of zinc deficiency and supplementation on some hematologic parameters of rats performing acute swimming exercise, Acta Physiol. Hung. 90, 125–132 (2003). H. B. Waynfort and P. A. Flecknel, Ovariotomy in Experimental and Surgical Technique in the Rat, 2nd ed., Academic, San Diego, CA, pp. 276–278 (1994). H. H. Draper and M. Hadley, Milondialdehyde determination as index of lipid peroxidation, Methods Enzymol. 186, 421–430 (1990). M. Uchiyama and M. Mihara Determination of malondyaldehyde precurser in tissues by thiobarbituric acid test, Anal. Biochem. 86, 271–278 (1997). F. Atroshi and M. Sandholm, Red blood cell glutathione as a marker of milk production in Finn sheep, Res. Vet. Sci. 33, 256–258 (1981). G. L. Ellmann, Tissue sulflydryl groups, Arch. Biochem. Biophys. 82, 70–77 (1959). M. Krachler, H. Scharfetter, and G. H. Wirnsberger, Kinetics of metal cations magnesium, calcium, copper, zinc, stronsium, barium and lead in chronic hemodialysis patients, Clin. Nephrol 54, 35–44 (2000). P. Montilla, I. Tunez, M. C. Munoz, M. J. Delgado, and M. Salcedo, Hyperlipidemic nephropathy induced by adriamycin in ovariectomized rats: role of free radicals and effect of 17-beta-estradiol administration, Nephron 85, 65–70 (2000). P. L. Oteiza, K. L. Olin, C. G. Fraga, and C. L. Keen, Oxidant defense systems in testes from zinc-deficient rats, Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 213, 85–91 (1996). A. A. Shaheen and A. A. El-Fattah, Effect of dietary zinc on lipid peroxidation, glutathione, protein thiols levels and superoxide dismutase activity in rat tissues, Int. J. Biochem. Cell. Biol. 27, 89–95 (1995). R. Gossrau, T. Gunther, H. J. Merker, and R. Graf, Enhancement of maternal and fetal nephrotoxicity of salicylate by zinc deficiency, morphological, enzyme histochemical and immunohistochemical studies, Histochemistry 89, 81–90 (1988). C. Nakao, T. Ookawara, T. Kizaki, et al., Effects of swimming training on three superoxide dismutase is oenzymes in mouse tissues, J. Appl. Physiol. 88, 649–654 (2000). T. Ogawa and Y. Mimura, Antioxidant effect of zinc on acute renal failure induced by ischemia-reperfusion injury in rats, Am. J. Nephrol. 19, 609–614 (1999). C. L. Yang, X. H. Du, J. H. Zhao, W. Chen and Y. X. Han, Zinc-induced metallothionein synthesis could protect from gentamicin nephrotoxicity in suspended proximal tubules of rats, Renal Fail. 16, 61–69 (1994). T. M. Bray and W. J. Bettger, The physiological role of zinc as an antioxidant, Free Radical Biol. Med. 8, 281–291 (1990). A. W. Girotti, J. P. Thomas, and J. E. Jordan Inhibitory effect of zinc(II) on free radical lipid peroxidation in erythrocyte membranes, J. Free Radical Biol. Med. 1, 395–401 (1985). V. Medici, A. Santon, G. C. Sturniolo, et al., Metallothionein and antioxidant enzymes in Long-Evans Cinnamon rats treated with zinc, Arch. Toxicol. 76, 509–516 (2002). M. Sato and I. Bremner, Oxygen free radicals and metallotahionein Free Radical Biol. Med. 14, 325–337 (1993).