Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tác động của mật độ nuôi và tỷ lệ trao đổi nước đến hiệu suất và khả năng chịu stress ở độ mặn thấp và cao của giống tôm Litopenaeus vannamei nuôi với hệ thống biofloc trong giai đoạn ươm giống
Tóm tắt
Tác động của mật độ nuôi và tỷ lệ trao đổi nước đã được đánh giá đối với hiệu suất tăng trưởng của giống tôm Litopenaeus vannamei (PL), được nuôi trong hệ thống dựa trên biofloc ở cấp độ ươm giống và bị tiếp xúc ngắn hạn với stress do độ mặn thấp-cao. Một thí nghiệm sinh học đã được thực hiện với bốn nghiệm thức, mỗi nghiệm thức được lặp lại ba lần: T1 = 8500 PL/m3 không có trao đổi nước, T2 = 16500 PL/m3 không có trao đổi nước, T3 = 8500 PL/m3 với 50% tỷ lệ trao đổi nước mỗi tuần, và T4 = 16500 PL/m3 với 50% tỷ lệ trao đổi nước mỗi tuần. Tại các thời điểm 0 (PL′22), 15 (PL′37), 30 (PL′52), và 45 (PL′67) ngày nuôi, một nhóm tôm từ mỗi nghiệm thức đã bị tiếp xúc với stress cấp tính bởi độ mặn thấp (27 đến 2‰) và cao (27 đến 60‰). Sau 45 ngày, tỷ lệ trao đổi nước và tương tác giữa tỷ lệ trao đổi nước × mật độ nuôi đã ảnh hưởng đến tỷ lệ sống sót của tôm, nhưng tăng trưởng của tôm chỉ bị ảnh hưởng bởi mật độ nuôi. Trọng lượng trung bình của tôm ở các nghiệm thức có mật độ nuôi thấp hơn cao hơn so với nghiệm thức có mật độ nuôi cao nhất, bất kể tỷ lệ trao đổi nước. Trong các thử nghiệm về stress do độ mặn, tỷ lệ sống sót của tôm bị ảnh hưởng bởi sự tương tác giữa các thử nghiệm stress độ mặn và các nghiệm thức. Nhìn chung, tôm cho thấy khả năng chịu đựng tốt hơn khi phải chịu đựng độ mặn thấp (27 đến 2‰). Trong nuôi trồng với biofloc ở cấp độ ươm giống, đã xác nhận rằng tôm L. vannamei cải thiện khả năng chịu đựng của chúng đối với mức độ mặn thấp đột ngột; một mối quan hệ tỷ lệ thuận trực tiếp giữa tỷ lệ sống sót với sự phát triển trong giai đoạn sinh lý dưới độ mặn thấp và cao đã được xác định.
Từ khóa
#Tôm vannamei #mật độ nuôi #tỷ lệ trao đổi nước #stress độ mặn #hệ thống biofloc #ươm giốngTài liệu tham khảo
Álvarez AL, Racotta IS, Arjona O, Palacios E (2004) Salinity stress test as a predictor of survival during growout in Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquaculture 237:237–249
APHA (American Public Health Association) (1998) Standard methods for the examination of water and wastewater, 20th edn. American Water Works Association, Washington, DC
Avnimelech Y (1999) Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture 176:227–235
Bray WA, Lawrence AL, Leung-Trujillo JR (1994) The effect of salinity on growth and survival of Penaeus vannamei, with observations on interaction of IHHN virus and salinity. Aquaculture 122:133–146
Brock JA, Main KL (1994) A guide to the common problems and diseases of cultured Penaeus vannamei. The Oceanic Institute Makapuu Point, Honolulu, p 242
Browdy CL, Bratvold D, Stokes AD, McIntosh RP (2001) Perspective on the application of closed shrimp culture systems. In C.L. Browdy and D.E. Jory (eds). The new wave, proceedings of the special session on shrimp culture: 20–34. Aquaculture 2001. WAS, Baton Rouge
Burbano-Gallardo E, Imués-Figueroa MA, Gonzalez-Legarda EA, Otavio-Brito L, Olivera-Galvez A, Vinatea-Arana LA (2015) Supervivencia de postlarvas de Litopenaeus vannamei sometidas a la prueba de estrés osmótico y su relación con el estado de muda. Rev Biol Mar Oceanogr 50:323–329
Castille FL, Lawrence AL (1981) The effect of salinity on the osmotic, sodium and chloride concentrations in the hemolymph of euryhaline shrimp of the genus Penaeus. Comp Biochem Physiol 68A:75–80
Castille FL, Samocha TM, Lawrence AL, He H, Frelier P, Jaenike F (1993) Variability in growth and survival of early postlarval shrimp (Penaeus vannamei Boone 1931). Aquaculture 113:65–81
Cohen JM, Samocha TM, Fox JM, Gandy RL, Addison LL (2005) Characterization of water quality factors during intensive raceways production of juvenile Litopenaeus vannamei using limited discharge and biosecure management tools. Aquac Eng 32:425–442
Correia ES, Wilkenfeld JS, Morris TC, Wei LW, Prangnell DI, Samocha TM (2014) Intensive nursery production of the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei using two commercial feeds with high and low protein content in a biofloc-dominated system. Aquac Eng 59:48–54
Criales MM, Zink IC, Browder JA, Jackson TL (2011) The effect of acclimation salinity and age on the salinity tolerance of pink shrimp postlarvae. J Exp Mar Biol Ecol 409:283–289
Dall W (1981) Osmoregulatory ability and juvenile habitat preference in some penaeid prawns. J Exp Mar Biol Ecol 54:55–64
Delgado-Gaytan MF, Rosas-Rodríguez JA, Yepiz-Plascencia G, Figueroa-Soto CG, Valenzuela-Soto EM (2017) Cloning and molecular characterization of the betaine aldehyde dehydrogenase involved in the biosynthesis of glycine betaine in white shrimp (Litopenaeus vannamei). Chem Biol Interact 276:65–74
Emerenciano M, Ballester ELC, Cavalli RO, Wasielesky W Jr (2011) Effect of biofloc technology (BFT) on the early postlarval stage of pink shrimp Farfantepenaeus paulensis: growth performance, floc composition and salinity stress tolerance. Aquac Int 19:891–901
Emerenciano M, Ballester E, Cavalli RO, Wasielesky W (2012) Biofloc technology application as a food source in a limited water exchange nursery system for pink shrimp Farfantepenaeus brasiliensis (Latreille, 1817). Aquac Res 43:447–457
Emmerson WD, Andrews B (1981) The effect of stocking density on the growth, development and survival of Penaeus indicus Milne Edward larvae. Aquaculture 23:45–57
Esparza-Leal HM, Cardozo AP, Wasielesky W Jr (2015) Performance of Litopenaeus vannamei postlarvae reared in indoor nursery tanks at high stocking density in clear-water versus biofloc system. Aquac Eng 68:28–34
Fóes GK, Fróes C, Krummenauer D, Poersch L, Wasielesky W Jr (2011) Nursery of pink shrimp Farfantepenaeus paulensis in biofloc technology culture system: survival and growth at different stocking densities. J Shellfish Res 30:1–7
Frías-Espericueta MG, Harfush-Meléndez M, Páez-Osuna F (2000) Effects of ammonia on mortality and feeding of postlarvae shrimp Litopenaeus vannamei. Bulletin Environm Cont Tox 65:98–103
Hurtado MA, Racotta IS, Arjona O, Hernández-Rodríguez M, Goytortúa E, Civera R, Palacios E (2006) Effect of hypo-and hyper-saline conditions on osmolarity and fatty acid composition of juvenile shrimp Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) fed low-and high-HUFA diets. Aquac Res 37:1316–1326
Jayasankar V, Jasmani S, Nomura T, Nohara S, Huong DTT, Wilder M (2009) Low salinities rearing of the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei: acclimation, survival and growth of postlarvae and juveniles. Jpn Agric Res Q 43(4):345–350
Jory DE, Cabrera TR, Dugger DM, Fegan D, Lee PG, Lawrence AL, Jackson CJ, McIntosh RP, Castañeda J (2001) A global review of shrimp feed management: status and perspectives. In: Browdy CL, Jory DE (eds) The new wave: proceedings of the special session on sustainable shrimp culture. World Aquaculture Society, Baton Rouge
Krummenauer D, Peixoto S, Cavalli RO, Poersch LH, Wasielesky W Jr (2011) Superintensive culture of white shrimp, Litopenaeus vannamei, in a biofloc technology system in southern Brazil at different stocking densities. J World Aquacult Soc 42:726–733
Legarda EC, Santos-Barcelos S, Cursino-Redig J, Bolívar-Ramírez NC, Martins-Guimarães A, Do Espírito Santo CM, Quadros-Seiffert W, Do Nascimento-Vieira F (2018) Effects of stocking density and artificial substrates on yield and water quality in a biofloc shrimp nursery culture. R Bras Zootec 47:e20170060
Lin YC, Chen JC (2001) Acute toxicity of ammonia in Litopenaeus vannamei Boone juveniles at different salinity levels. J Exp Mar Biol Ecol 259:109–119
Liu Y, Wang WN, Wang AL, Wang JM, Sun RY (2007) Effects of dietary vitamin E supplementation on antioxidant enzyme activities in Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) exposed to acute salinity changes. Aquaculture 265:351–358
Martínez-Antonio EM, Racotta IS, Ruvalcaba-Márquez JC, Magallón-Barajas F (2019) Modulation of stress response and productive performance of Litopenaeus vannamei through diet. Peer J 7:e6850
McGraw WJ, Davis DA, Teichert-Coddington D, Rouse DB (2002) Acclimation of Litopenaeus vannamei postlarvae to low salinity: influence of age, salinity endpoint and rate of salinity reduction. J World Aquacult Soc 33:78–84
Meritha WW, Suprayudi MA, Ekasari J (2018) The growth performance and resistance to salinity stress of striped catfish Pangasius sp. juvenile in biofloc system with different feeding rates. J Akuakultur Ind 17(2):113–119
Mishra JK, Samocha TM, Patnaik S, Speed M, Gandy RL, Ali A (2008) Performance of an intensive nursery system for the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei, under limited discharge condition. Aquac Eng 38:2–5
Palacios E, Racotta IS (2007) Salinity stress test and its relation to future performance and different physiological responses in shrimp postlarvae. Aquaculture 268:23–135
Palacios E, Bonilla A, Pérez A, Racotta IS, Civera R (2004) Influence of highly unsaturated fatty acids on the responses of white shrimp (Litopenaeus vannamei) postlarvae to low salinity. J Exp Mar Biol Ecol 299:201–215
Ponce-Palafox JT, Martínez-Palacios CA, Ross LG (1997) The effects of salinity and temperature on the growth and survival rates of juvenile white shrimp Penaeus vannamei Boone 1931. Aquaculture 157:107–115
Ray WM, Chien YW (1992) Effects of stocking density and aged sediment on tiger prawn Penaeus monodon, nursery system. Aquaculture 104:231–248
Ray AJ, Drury TH, Cecil A (2017) Comparing clear-water RAS and biofloc systems: shrimp (Litopenaeus vannamei) production, water quality, and biofloc nutritional contributions estimated using stable isotopes. Aquac Eng 77:9–14
Rees JF, Cure K, Piyatiratitivorakul S, Sorgeloos P, Menasveta P (1994) Highly unsaturated fatty acid requirements of Penaeus monodon postlarvae: an experimental approach based on Artemia enrichment. Aquaculture 122:193–207
Samocha TM, Guajardo H, Lawrence AL, Castille FL, Speed M, McKee DA, Page KI (1998) A simple stress test for Penaeus vannamei postlarvae. Aquaculture 165:233–242
Samocha TM, Blacher T, Cordova J, De Wind A (2000) Raceway nursery production increases shrimp survival and yields in Ecuador. Global Aquacult Adv 3(6):66–68
Samocha TM, Patnaik S, Speed M, Ali AM, Burger JW, Almeida RV, Ayub Z, Harisanto M, Horowitz A, Brock DL (2007) Use of molasses as carbon source in limited discharge nursery and grow-out systems for Litopenaeus vannamei. Aquac Eng 36:184–191
Sandifer PA, Stokes AD, Hopkins JS, Smiley RA (1991) Further intensification of pond shrimp culture in South Carolina. In: Sandifer PA (ed) Shrimp culture in North America and the Caribbean. World Aquaculture Society, Baton Rouge
Strickland JDH, Parsons TH (1972) A practical handbook of seawater analysis. Fish Research Board of Canada Bulletin, Ottawa, Canada
Suita SM, Cardozo AP, Romano LA, Abreu PC, Wasielesky W Jr (2015) Development of the hepatopancreas and quality analysis of post-larvae Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei produced in a BFT system. Aquac Int 23:449–463
Tsuzuki MY, Cavalli RO, Bianchini A (2000) The effects of temperature, age, and acclimation to salinity on the survival of Farfantepenaeus paulensis postlarvae. J World Aquacult Soc 31:459–468
Van Wyk P, Scarpa J (1999) Water quality requirements and management. In: Van Wyck P (ed) Farming marine shrimp in recirculating freshwater system. Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Tallahasee
Wasielesky W Jr, Fróes C, Foes G, Krummenauer D, Lara G, Poersch L (2013) Nursery of Litopenaeus vannamei reared in a biofloc system: the effect of stocking densities and compensatory growth. J Shellfish Res 32:799–806
Williams AS, Davis DA, Arnold CR (1996) Density-dependent growth and survival of Penaeus setiferus and Penaeus vannamei in a semi-closed recirculating system. J World Aquacult Soc 27:107–112
Zar JH (1996) Biostatistical analysis, 3rd edn. Prentice Hall, New Jersey