Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Ảnh hưởng của hệ thống làm mát bằng sương và lăn bụng đến năng suất sữa, các chỉ số huyết học và sinh lý trong điều kiện chịu nhiệt của trâu mẹ Murrah
Tóm tắt
Căng thẳng nhiệt ảnh hưởng tiêu cực đến trạng thái sinh lý và trao đổi chất cũng như hiệu suất sản xuất của trâu. Nghiên cứu này được thực hiện để làm rõ ảnh hưởng của các chiến lược làm mát bằng sương và lăn bụng trong điều kiện căng thẳng nhiệt ở trâu mẹ cho sữa. Nghiên cứu được thực hiện trong ba tháng (từ tháng 5 đến tháng 7) trong đó hai tháng đầu nóng và khô, tháng cuối nóng và ẩm. Mười tám con trâu mẹ cho sữa, được cho ăn cùng một chế độ ăn cơ bản, được phân loại theo thời gian cho sữa, sản lượng sữa và số lần sinh sản, và sau đó được phân bổ ngẫu nhiên vào ba nhóm điều trị: nhóm đối chứng âm tính (không có làm mát), nhóm làm mát bằng sương, và nhóm làm mát bằng lăn bụng. Kết quả cho thấy sản lượng sữa cao hơn (P < 0.05) ở nhóm trâu dùng sương và lăn bụng so với nhóm đối chứng trong suốt thời gian thí nghiệm, tuy nhiên lăn bụng có hiệu quả hơn (P < 0.05) trong tháng 7 (thời kỳ nóng ẩm). Cả hai phương pháp điều trị đều dẫn đến giảm có ý nghĩa (P < 0.05) nhiệt độ trực tràng (RT) và tần số hô hấp (RR) so với các động vật đối chứng trong thời gian nghiên cứu, trong khi lăn bụng chỉ có hiệu quả đối với tần số mạch (PR) trong tháng 7. Cả hai phương pháp điều trị làm giảm có ý nghĩa (P < 0.05) tình trạng giảm thể tích tế bào máu (PCV), giảm bạch cầu lympho và tăng bạch cầu trung tính do căng thẳng nhiệt, trong khi mức giảm của tổng số tế bào hồng cầu (TEC) và bạch cầu đơn nhân chỉ được cải thiện bởi lăn bụng. Biến động do tải nhiệt gây ra về nồng độ creatinine và natri trong huyết thanh đã được cải thiện đáng kể (P < 0.05) bởi cả sương và lăn bụng, trong khi hoạt tính của aspartate aminotransferase, alkaline phosphatase và superoxide dismutase, cũng như nồng độ especies oxy phản ứng không được khôi phục bởi cả sương và lăn bụng. Sự gia tăng đáng kể (P < 0.05) về nồng độ cortisol và prolactin trong huyết thanh quan sát được trong tháng 6 và 7 ở các động vật đối chứng đã được ngăn chặn một cách đáng kể (P < 0.05) bởi sương và lăn bụng. Có thể kết luận rằng sương và lăn bụng đều có hiệu quả như nhau trong tháng 5 và tháng 6 (thời kỳ nóng khô) trong việc ngăn ngừa sự suy giảm sản xuất sữa và duy trì trạng thái sinh lý, trao đổi chất, nội tiết và cân bằng redox.
Từ khóa
#căng thẳng nhiệt #trâu mẹ #năng suất sữa #lăn bụng #làm mát bằng sương #sinh lý họcTài liệu tham khảo
Javaid SB, Gadahi JA, Khaskeli M, Bhutto MB, Kumbher S, Panhwar AH. Physical and chemical quality of market milk sold at Tandojam, Pakistan. Pak Vet J. 2009;29:27–31.
FAOSTAT. http://faostat.fao.org/. 2007. Accessed on 12th September 2015.
Marai IFM, Haeeb AAM. Buffalo's biological functions as affected by heat stress—A review. Livest Sci. 2010;127(2):89–109.
Shafie MM. Physiology responses and adaptation of water buffalo. In: Yousef MK, editor. Stress Physiology in Livestock Vol II, Ungulates’. Boca Raton: CRC Press, Inc; 1985. p. 67–80.
Shafie MM, El-Khair MA. Activity of the sebaceous glands of bovines in hot climates. United Arab Republic J Anim Prod. 1970;10(1):81–8.
Das SK, Upadhyay RC, Madan ML. Heat stress in Murrah buffalo calves. Livest Prod Sci. 1999;61(1):71–8.
Das KS, Singh J, Singh G, Upadhyay R, Malik R, Oberoi P. Heat stress alleviation in lactating buffaloes: Effect on physiological response, metabolic hormone, milk production and composition. Indian J Anim Sci. 2014;84(3):275–80.
Yadav B, Singh G, Verma AK, Dutta N, Sejian V. Impact of heat stress on rumen functions. Vet World. 2013;6(12):992–6.
Akyuz A, Boyaci S, Cayli A. Determination of critical period for dairy cows using temperature humidity index. J Anim Vet Adv. 2010;9(13):1824–7.
Broucek J, Novak P, Vokralova J, Soch M, Kisac P, Uhrinca M. Effect of high temperature on milk production of cows from free-stall housing with natural ventilation. Slovak J Anim Sci. 2009;42(4):167–73.
Kumar BVS, Singh G, Meur SK. Effects of addition of electrolyte and ascorbic acid in feed during heat stress in buffaloes. Asian Australas J Anim Sci. 2010;23(7):880–8.
Singh SP, Hooda OK, Kumar P. Effect of yeast supplementation on feed intake and thermal stress mitigation in buffaloes. Indian J Anim Sci. 2011;81(9):961–4.
Singh SP, Hooda OK, Kundu SS, Singh S. Biochemical changes in heat exposed buffalo heifers supplemented with yeast. Trop Anim Health Prod. 2012;44(7):1383–7.
Kumar M, Kaur H, Tyagi A, Mani V, Deka RS, Chandra G, et al. Assessment of chromium content of feedstuffs, their estimated requirement, and effects of dietary chromium supplementation on nutrient utilization, growth performance, and mineral balance in summer-exposed buffalo calves (Bubalus bubalis). Biol Trace Elem Res. 2013;155(1):29–37.
Aggarwal A, Singh M. Changes in skin and rectal temperature in lactating buffaloes provided with showers and wallowing during hot-dry season. Trop Anim Health Prod. 2008;40(3):223–8.
Aggarwal A, Singh M. Hormonal changes in heat-stressed Murrah buffaloes under two different cooling systems. Buffalo Bull. 2010;29(1):1–6.
Rahangdale PB, Ambulkar DR, Somnathe RD. Influence of summer managemental practices on physiological responses and temperament in murrah buffaloes. Buffalo Bull. 2011;30(2):139–47.
Vijayakumar P, Dutt T, Singh M, Pandey HN. Effect of heat ameliorative measures on the biochemical and hormonal responses of buffalo heifers. J Appl Anim Res. 2011;39(3):181–4.
Mader TL, Davis MS, Brown-Brandl T. Environmental factors influencing heat stress in feedlot cattle. J Anim Sci. 2006;84:712–9.
NRC. Nutrient Requirements of Dairy Cattle. Seventh Revisedth ed. Washington, DC: National Academies Press; 2001.
Pereira AMF, Baccari FJ, Titto EAL, Almeida JAA. Effect of thermal stress on physiological parameters, feed intake and plasma thyroid hormones concentration in Alentejana, Mertolenga. Frisian and Limousine Int J Biometeorol. 2008;52:199–208.
AOAC. Official methods of analysis. 16th ed. Arlington, Virginia, USA: Association of Official Analytical Chemists; 1995.
Van Soest PJ, Robertson JB, Lewis BA. Methods of dietary fiber, neutral detergent fiber and non starch polysaccharides in relation to animal nutrition. J Dairy Sci. 1991;74:3583–7.
Talapatra SK, Ray SC, Sen KC. The analysis of mineral constituents in biological materials. Indian J Vet Sci Anim Husb. 1940;10:143–258.
Fenton TW, Fenton M. An improved procedure for the determination of chromic oxide in feed and feces. Can J Anim Sci. 1979;59(3):631–4.
Benzamin MM. Outline of veterinary clinical pathology. 3rd ed. New Delhi: Kalyani Publisher; 1985.
Madesh M, Balasubramanian KA. Microtiter plate assay for superoxide dismutase using MTT reductlion by superoxide. Indian J Biochem Bio. 1998;35(3):184–8.
Brambilla G, Fiori M, Archetti LI. Evaluation of the oxidative stress in growing pigs by microplate assays. J Vet Med Sci. 2001;48(1):33–8.
Lacetera N, Bernabucci U, Ronchi B, Nardone A. Body condition score, metabolic status and milk production of early lactating dairy cows exposed to warm environment. Riv Agr Subtrop Trop. 1996;90:43–55.
Purwanto BP, Abo Y, Sakamoto R, Furumoto F, Yamamoto S. Diurnal patterns of heat production and heart rate under thermoneutral conditions in Holstein Friesian cows differing in milk production. J Agricult Sci (Camb). 1990;114:139–42.
Singh G, Kamboj ML, Patil NV. Effect of thermal protective measures during hot humid season on productive and reproductive performance of Nili-Ravi buffaloes. Indian Buffalo J. 2005;3:101–04.
Chaiyabutr N, Boonsanit D, Chanpongsang S. Effects of cooling and exogenous bovine somatotropin on hematological and biochemical parameters at different stages of lactation of crossbred holstein friesian cow in the tropics. Asian-Australas J Anim Sci. 2011;24(2):230–8.
Upadhyay RC, Singh SV, Kumar A, Gupta SK, Ashutosh A. Impact of climate change on milk production of Murrah buffaloes. Ital J Anim Sci. 2010;6(2):1329–32.
Bouraoui R, Lahmar M, Majdoub A, Djemali M, Belyea R. The relationship of temperature-humidity index with milk production of dairy cows in a Mediterranean climate. Anim Res. 2002;51:479–91.
Nessim MG. Heat-induced biological changes as heat tolerance indices related to growth performance in buffaloes’. In: Ph. D. Thesis. Cairo, Egypt: Ain Shams University; 2004.
Habeeb AAM, Fatma FIT, Osman SF. Detection of heat adaptability using heat shock proteins and some hormones in Egyptian buffalo calves. Egyptian J Appl Sci. 2007;22(2A):28–53.
Chaiyabutr N. Buffalo physiological responses to high environmental temperature and consequences for DAP. In: Proceedings of Workshop held in conjunction with 6th Asian–Australasian Association of Animal Production Society Congress. Bangkok, Thiland: ACIAR Proceedings No. 46; 1993.
Gudev D, Popova-Ralcheva S, Moneva P, Aleksiev Y, Peeva TZ, Penchev P, et al. Physiological indices in buffaloes exposed to sun. Arch Zootech. 2007;10:127–33.
Khongdee T, Sripoon S, Vajrabukka C. The effects of high temperature and wallow on physiological responses of swamp buffaloes (Bubalus bubalis) during winter season in Thailand. J Therm Biol. 2011;36(7):417–21.
Al-Haidary AA. Physiological responses of Naimey Sheep to heat stress challenge under semi-arid environments. Int J Agriculture Biol. 2004;2:307–9.
Parmar MS, Madan AK, Rastogi SK, Huozha R. Comparative Study of Seasonal Variations on Hematological Profile in Sahiwal Cows (Bos Indicus) and Murrah Buffalo (Bubalus bubalis). J Anim Res. 2013;3(2):167–71.
Aengwanich W, Kongbuntad W, Boonsorn T. Effects of shade on physiological changes, oxidative stress, and total antioxidant power in Thai Brahman cattle. Int J Biometeorol. 2011;55(5):741–8.
Silva JA, Araújo RD, Júnior AAD, de Brito L, Santos NDFAD, Viana RB, et al. Hormonal changes in female buffaloes under shading in tropical climate of Eastern Amazon. Rev Bras Zootec. 2014;43(1):44–8.
Dhabhar FS. A hassle a day may keep the doctor away: stress and the augmentation of immune function. Integr Comp Biol. 2002;42:556–64.
Bishop CR, Athens JW, Boggs DR, Warner HR, Cartwrig GE, Wintrobe MM. Leukokinetic Studies: XIII. A non-steady-state kinetic evaluation of mechanism of cortisone induced granulocytosis. J Clin Invest. 1968;47:249–60.
Gangwar PC, Bahga CS, Srivastava RK, Dhingra DP. Effect of spray cooling and wallowing on potassium concentration of erythrocytes in buffaloes (Bos bubalis) during summer. J Agricult Sci. 1982;99(2):373–76.
Kumar A, Singh G, Kumar BV, Meur SK. Modulation of antioxidant status and lipid peroxidation in erythrocyte by dietary supplementation during heat stress in buffaloes. Livest Sci. 2011;138(1):299–303.
Yadav B, Singh G, Wankar A. Adaptive capability as indicated by redox status and endocrine responses in crossbred cattle exposed to different thermal stresses. J Anim Res. 2015;5(1):67–73.
Yadav B, Korde JP. Effect of hyperthermia on antioxidative status of a primary hepatocyte culture. J Adv Vet Res. 2011;1(2):69–73.
Rahal A, Kumar A, Singh V, Yadav B, Tiwari R, Chakraborty S, et al. Oxidative Stress, Prooxidants, and Antioxidants: The Interplay. Biomed Res Int. 2014. doi:10.1155/2014/761264.
Roy KS, Prakash B. Seasonal variation and circadian rhythmicity of the prolactin profile during the summer months in repeat-breeding Murrah buffalo heifers. Reprod Ferti Dev. 2007;19(4):569–75.
Wankar AK, Singh G, Yadav B. Thermoregulatory and adaptive responses of adult buffaloes (Bubalus bubalis) during hyperthermia: Physiological, behavioral, and metabolic approach. Vet World. 2014;7(10):825–30.
