Ảnh hưởng của việc chuyển giao đối với cấu trúc di truyền trong quần thể nai đỏ (Cervus elaphus) tại Ba Lan

Russian Journal of Genetics - Tập 55 - Trang 1506-1513 - 2020
K. Tajchman1, W. Sawicka-Zugaj2, M. Greguła-Kania2, L. Drozd1, P. Czyżowski1
1Department of Ethology and Animal Welfare, Sub-Department of Game Management, University of Life Sciences in Lublin, Lublin, Poland
2Institute of Animal Breeding and Biodiversity Conservation, University of Life Sciences in Lublin, Lublin, Poland

Tóm tắt

Nai đỏ (Cervus elaphus) đã được chuyển giao khắp châu Âu, bao gồm cả Ba Lan, nhằm cải thiện chất lượng quần thể địa phương của loài động vật này. Mục tiêu của nghiên cứu là đánh giá kết quả của các hoạt động chuyển giao thông qua phân tích DNA microsatellite để xác định sự khác biệt phát sinh giữa các quần thể nai đỏ từ bảy vùng của Ba Lan, cụ thể là các tỉnh Lubelskie, Warmińsko-Mazurskie, Pomorskie, Zachodniopomorskie, Opolskie, Śląskie và Wielkopolskie. Các locust BMC1009, IDVGA55, INRA121, NVHRT48, CSSM41 và BM757 đã được phân tích. Tất cả các phân tích được thực hiện với sự đồng ý của Ủy ban Đạo đức địa phương 0071, Nghị quyết số 13/2014. Giá trị trung bình của Ho trong các quần thể nai đỏ đạt mức 0.457, He 0.613, và giá trị PIC trong tất cả các nhóm nai đỏ cao hơn 5.000, điều này chỉ ra sự đa dạng di truyền lớn trong loài này tại Ba Lan. Giá trị của hệ số FST (0,17) tương tự với giá trị trung bình ghi nhận ở Cervus elaphus tại châu Âu (0,166). Tuy nhiên, các hệ số FIS và FIT tương đối cao (0,259 và 0,334, tương ứng), điều này có thể ngụ ý sự tồn tại của cấu trúc nội bộ trong các tiểu quần thể riêng lẻ. Thêm vào đó, hiệu ứng nút thắt không thể bị loại trừ do các giá trị FIS và FIT âm tính ở locus BMC1009 (–0.260 và –0.071, tương ứng) và sự thừa He so với Heq.

Từ khóa

#Cervus elaphus #di truyền #quần thể #Ba Lan #chuyển giao #đa dạng di truyền

Tài liệu tham khảo

Hartl, B.G., Zachos, F., and Nadlinger, K., Genetic diversity in European red deer (Cervus elaphus L.) antropogenetic influences on natural populations, Biologies, 2003, vol. 326, pp. 37–42. Niedziałkowska, M., Jędrzejewska, B., Honnen, A.C., et al., Molecular biogeography of red deer Cervus elaphus from Eastern Europe: insights from mitochondrial DNA sequences, Acta Theriol., 2011, vol. 56, no. 1, pp. 1–12. Niedziałkowska, M., Jędrzejewska, B., Wójcik, J.M., and Goodman, S.J., Genetic structure of red deer population in Northeastern Poland in relation to the history of human interventions, J. Wildlife Manage., 2012a, vol. 76, pp. 1264–1276. Niedziałkowska, M., Fontaine, M.C., and Jędrzejewska, B., Factors shaping red deer gene flow in semi-natural landscapes of Central Europe, Can. J. Zool., 2012, vol. 90, no. 2, 150–162. Bobek, B., Morow, K., Perzanowski, K., and Kossobudzka, M., The Red Deer—Its Ecology and Managemen, Warsaw, Świat, 1992. Borowski, Z., Krysiuk, K., and Pudełko, M., Is the resettlement of animals reasonable in terms of population management? On the example of precious red deer (Cervus elaphus) and fallow deer (Dama dama), Stud. Mater.CEPL Rogów, 2013, vol. 36, no. 3, pp. 79–87. Dzięgielewski, S., Red Deer, Warsaw: PWRiL, 1970. Tajchman, K. and Drozd, L., Management of hunting animals population as breeding work: 2. Hunting and breeding work on red deer (Cervus elaphus) and elk (Alces alces) populations, Ann. Warsaw Univ. of Life Sci.—SGGW,Anim. Sci., 2018, vol. 57, no. 3, pp. 299—309. Drozd, L., Pięta, M., Karpiński, M., and Piwniuk, J., The quality of deer in the macroregion of central-eastern Poland, Sylwan, 2000, vol. 3, pp. 87–92. Panek, M. and Budny, M., The Situation of Game Animals in Poland with Particular Regard to Partridges (Based on Monitoring), Research Station of the PZŁ Czempiń, 2015. Zachos, F.E., Althoff, C., Steynitz, Yv., et al., Genetic analysis of an isolated red deer (Cervus elaphus) population showing signs of inbreeding depression, Eur. J. Wildlife Res., 2007, vol. 53, pp. 61–67. Crnokrak, P. and Roff, D.A., Inbreeding depression in the wild, Heredity, 1999, vol. 83, pp. 260–270. Bonnet, A., Thévenon, S., Maudet, F., and Maillard, J.C., Efficiency of semi-automated fluorescent multiplex PCRs with 11 microsatellite markers for genetic studies of deer population, International Society for Animal Genetics, Anim. Genet., 2002, vol. 33, pp. 343–350. Galan, M., Cosson, J.F., Aulagnier, S., et al., Cross-amplification tests of ungulate primers in roe deer (Capreolus capreolus) to develop a multiplex panel of 12 microsatellite loci, Mol. Ecol. Notes, 2003, vol. 3, pp. 142—146. Piry, S.G., Luikart, G., and Cornuet, J.M., Bottleneck: a computer program for detecting recent reductions in the effective population size using allele frequency data, J. Hered., 1999, vol. 90, pp. 502–503. Cornuet, J.M. and Luikart, G., Description and evaluation of two tests for detecting recent bottlenecks, Genetics, 1996, vol. 144, pp. 2001–2014. The Princeton Guide to Ecology, Levin, S.A., Ed., Princeton University Press, 2009. Borowski, Z.S., Świsłocka, M., Matosiuk, M., et al., Purifying selection, density blocking and unnoticed mitochondrial DNA diversity in the red deer (Cervus elaphus), PLoS One, 2016, vol. 11, no. 9, pp. 1–17. Thévenon, S., Thuy, L.T., Ly, L.V., et al., Microsatellite analysis of genetic diversity of the Vietnamese sika deer (Cervus nippon pseudaxis), J. Hered., 2004, vol. 95, no. 1, pp. 11–18. Zachos, F.E., Frantz, A.C., Kuehn, R., et al., Genetic structure and effective population size in European red deer (Cervus elaphus) at a continental scale: insights from microsatellite DNA, J. Hered., 2016, vol. 107, no. 4, pp. 318–326. Pakeman, R.J., Consistency of plant species and trait responses to grazing along a productivity gradient: a multi-site analysis, J. Ecol., 2004, vol. 92, pp. 893–905. Jarnemo, A., Seasonal migration of male red deer (Cervus elaphus) in southern Sweden and consequences for management, Eur. J. Wildlife Res., 2008, vol. 54, no. 2, pp. 327–333. Borowik, T., Cornulier, T., and Jędrzejewska, B., Environmental factors shaping ungulate abundances in Poland, Acta Theriol., 2013, vol. 58, pp. 403–413. Kuehn, R., Schroeder, W., Pirchner, F., and Rottmann, O., Genetic diversity, gene flow and drift in Bavarian red deer population (Cervus elaphus), Conserv. Genet., 2003, vol. 4, pp. 157–166. Feulner, P.G.D., Bielfeldt, W., Zachos, F.E., et al., Mitochondrial DNA and microsatellite analyses of the genetic status of the presumed subspecies Cervus elaphus montanus (Carpathian red deer), Heredity, 2004, vol. 93, pp. 299–306. Martínez, J.G., Carranza, J., Fernández-García, J.L., and Sánchez-Prieto, C.B., Genetic variation of red deer populations under hunting exploitation in southwestern Spain, J. Wildlife Manage., 2002, vol. 66, pp. 1273–1282. Lorenzini, R., Mattioli, S., and Fico, R., Allozyme variation in native red deer (Cervus elaphus) of Mesola Wood, northern Italy: implications for conservation, Acta Theriol., 1998, vol. 5, pp. 63–74. Hundertmark, K.J. and Van Daele, L.J., Founder effect and bottleneck signatures in an introduced, insular population of elk, Conserv. Genet, 2010, vol. 11, pp. 139–148. Höglund, J., Cortazar-Chinarro, M., Jarnemo, A., and Thulin, C.G., Genetic variation and structure in Scandinavian red deer (Cervus elaphus): influence of ancestry, past hunting and restoration management, Biol. J. Linn. Soc., 2013, vol. 109, pp. 43–53. Lavsund, S., Kronhjortens, Cervus elaphus L., utbredning i Sverige1900–1973, Stockholm: Skogshögskolan, 1975, no. 18, р. 49. Hedrick, P.W., Perspective: highly variable loci and their interpretation in evolution and conservation, Evolution, 1999, vol. 53, pp. 313–318. Hedrick, P.W., Conservation genetics: where are we now?, Trends Ecol. Evol., 2001, vol. 16, pp. 629–636. Janiszewski, P. and Szczepański, W., Characterization of masses of deer stags, deer does and deer fawns (Cervus elaphus L.) obtained during autumn and winter, Sylwan, 2004, vol. 1, pp. 33–38. Janiszewski, P. and Kolasa, S., Biometric characteristics of roebucks (Capreolus capreolus) from Tabórz Forests, Poland, Balt. For., 2007, vol.13, no. 2, pp. 215–220. Krupka, J., Dziedzic, R., and Drozd, L., Quality characteristics of red deer stags obtained in the macroregion of central eastern Poland, Ann. Univ.Mariae Curie-Skłodowska, 1986, vol. 4, pp. 7–14. Szczepański, W., Janiszewski, P., and Kolasa, S., Zoometric studies on deer fawns (Cervus elaphus L.) from the breeding area “Taborskie Forest,” Sylwan, 2006, vol. 5, pp. 16–23. Meredith, E.P., Rodzen, J.A., Banks, J.D., et al., Microsatellite analysis of three subspecies of elk (Cervus elaphus) in California, J. Mammal., 2007, vol. 88, no. 3, pp. 801–808. Linnell, J.D.C. and Zachos, F.E., Status and distribution patterns of European ungulates: genetics, population history and conservation, in Ungulate Management in Europe: Problems and Practices, Putman, R., Apollonio, M., and Andersen, R., Eds., Cambridge: Cambridge University Press, 2011, pp.12–53. Niethammer, G., Die Einbürgerung von Säugetieren und Vögeln in Europa, Hamburg: Paul Parey, 1963. Perzanowska, J., Makomaska-Juchiewicz, M., Cierlik, G., et al., Ecological Corridors in Małopolska, Institute of Environmental Sciences, Jagiellonian University, Institute of Nature Conservation PAN, 2005. Tajchman, K., Drozd, L., Karpiński, M., et al., Population genetic structure of wild boars in Poland, Russ. J. Genet., 2018, vol. 54, no. 5, pp. 548–553.