Sự khác biệt trong phản ứng màng phúc mạc sau khi tiếp xúc với dung dịch thẩm tách bicarbonate/lactate đệm có GDP thấp so với dung dịch thẩm tách thông thường trong mô hình chuột uremic

Springer Science and Business Media LLC - Tập 50 - Trang 1151-1161 - 2018
M. Vila Cuenca1,2, E. D. Keuning3, W. Talhout3, N. J. Paauw3, F. J. van Ittersum1, P. M. ter Wee1, R. H. J. Beelen3, M. G. Vervloet1,2, E. Ferrantelli3
1Department of Nephrology, VU University Medical Center, Amsterdam, The Netherlands
2Amsterdam Cardiovascular Sciences, Amsterdam, The Netherlands
3Department of Molecular Cell Biology and Immunology, VU University Medical Center, Amsterdam, The Netherlands

Tóm tắt

Sự tiếp xúc lâu dài với dung dịch thẩm tách phúc mạc (PD) thông thường liên quan đến những thay đổi cấu trúc màng và thất bại kỹ thuật. Trước đây, đã có nghiên cứu chứng minh rằng các tế bào CD4+ T tiết IL-17 xâm lấn và các tế bào đại thực bào M2 gây xơ hóa đóng vai trò quan trọng trong bệnh sinh do PD gây ra. Dù các dung dịch PD có tính tương hợp sinh học tốt hơn được công nhận là bảo vệ tốt hơn tính toàn vẹn màng phúc mạc, tác động của các dung dịch này lên thành phần của tế bào thâm nhập vào phúc mạc vẫn chưa được biết đến. Trong một mô hình chuột PD uremic, chúng tôi đã so sánh ảnh hưởng của việc cấy dung dịch lactate chuẩn (LS) hoặc dung dịch đệm bicarbonate/lactate (BLS) và các nhóm đối chứng tương ứng đối với xơ hóa phúc mạc, sự tạo mạch và viêm. Việc tiếp xúc hàng ngày với dung dịch LS trong thời gian 8 tuần đã dẫn đến sự gia tăng αSMA và collagen trong phúc mạc, kèm theo sự hình thành mạch mới so với nhóm BLS. Dịch từ chuột được điều trị bằng LS cho thấy phần trăm quần thể tế bào CD4+ IL-17+ cao hơn trong khi tiếp xúc với BLS làm gia tăng quần thể đại thực bào. Các cytokine viêm mạnh mẽ như TGFβ1, TNFα, INFγ, và MIP-1β đã được phát hiện trong dịch từ những con chuột tiếp xúc BLS khi so sánh với các nhóm khác. Thêm vào đó, hóa mô miễn dịch của các nhóm đại thực bào thâm nhập trong nhóm BLS xác nhận tỷ lệ đại thực bào M1 gây viêm cao hơn so với nhóm M2 gây xơ hóa so với LS. Sự phát triển của xơ hóa phúc mạc và sự tạo mạch đã được ngăn chặn trong những con chuột tiếp xúc BLS, điều này có thể là nguyên nhân dẫn đến tính tương hợp sinh học được cải thiện của nó. Việc tuyển mộ đại thực bào M1 vào phúc mạc và số lượng tế bào CD4+ IL-17+ thấp hơn có thể giải thích cho sự bảo tồn tính toàn vẹn phúc mạc được quan sát trong những con chuột tiếp xúc BLS.

Từ khóa

#thẩm tách phúc mạc #dung dịch thẩm tách #đại thực bào M1 #đại thực bào M2 #viêm #xơ hóa phúc mạc #mô hình chuột uremic

Tài liệu tham khảo

Devuyst O, Margetts PJ, Topley N (2010) The pathophysiology of the peritoneal membrane. J Am Soc Nephrol 21(7):1077–1085. https://doi.org/10.1681/ASN.2009070694 Schilte MN, Celie JW, Wee PM, Beelen RH, van den Born J (2009) Factors contributing to peritoneal tissue remodeling in peritoneal dialysis. Perit Dial Int 29(6):605–617 Pecoits-Filho R, Mujais S, Lindholm B (2002) Future of icodextrin as an osmotic agent in peritoneal dialysis. Kidney Int Suppl 62(81):S80–S87. https://doi.org/10.1046/j.1523-1755.62.s81.11.x Hekking LH, Zareie M, Driesprong BA, Faict D, Welten AG, de Greeuw I, Schadee-Eestermans IL, Havenith CE, van den Born J, ter Wee PM, Beelen RH (2001) Better preservation of peritoneal morphologic features and defense in rats after long-term exposure to a bicarbonate/lactate-buffered solution. J Am Soc Nephrol 12(12):2775–2786 MacKenzie RK, Holmes CJ, Moseley A, Jenkins JP, Williams JD, Coles GA, Faict D, Topley N (1998) Bicarbonate/lactate- and bicarbonate-buffered peritoneal dialysis fluids improve ex vivo peritoneal macrophage TNFalpha secretion. J Am Soc Nephrol 9(8):1499–1506 Williams JD, Topley N, Craig KJ, Mackenzie RK, Pischetsrieder M, Lage C, Passlick-Deetjen J, Group EBT (2004) The Euro-Balance Trial: the effect of a new biocompatible peritoneal dialysis fluid (balance) on the peritoneal membrane. Kidney Int 66(1):408–418. https://doi.org/10.1111/j.1523-1755.2004.00747.x Johnson DW, Brown FG, Clarke M, Boudville N, Elias TJ, Foo MW, Jones B, Kulkarni H, Langham R, Ranganathan D, Schollum J, Suranyi MG, Tan SH, Voss D, bal ANZTI (2012) The effect of low glucose degradation product, neutral pH versus standard peritoneal dialysis solutions on peritoneal membrane function: the balANZ trial. Nephrol Dial Transplant 27(12):4445–4453. https://doi.org/10.1093/ndt/gfs314 Szeto CC, Chow KM, Lam CW, Leung CB, Kwan BC, Chung KY, Law MC, Li PK (2007) Clinical biocompatibility of a neutral peritoneal dialysis solution with minimal glucose-degradation products-a 1-year randomized control trial. Nephrol Dial Transplant 22(2):552–559. https://doi.org/10.1093/ndt/gfl559 Lam D, Bargman JM (2013) Peritonitis in the patient on peritoneal dialysis: does the composition of the dialysis fluid make a difference? Clin J Am Soc Nephrol 8(9):1471–1473. https://doi.org/10.2215/CJN.07830713 Farhat K, Douma CE, Ferrantelli E, Ter Wee PM, Beelen RHJ, van Ittersum FJ (2017) Effects of conversion to a bicarbonate/lactate-buffered, neutral-pH, low-GDP PD regimen in prevalent PD: a 2-year randomized clinical trial. Perit Dial Int 37(3):273–282. https://doi.org/10.3747/pdi.2015.00031 Rodrigues-Díez R, Aroeira LS, Orejudo M, Bajo MA, Heffernan JJ, Rodrigues-Díez RR, Rayego-Mateos S, Ortiz A, Gonzalez-Mateo G, López-Cabrera M, Selgas R, Egido J, Ruiz-Ortega M (2014) IL-17A is a novel player in dialysis-induced peritoneal damage. Kidney Int 86(2):303–315. https://doi.org/10.1038/ki.2014.33 Habib SM, Abrahams AC, Korte MR, Zietse R, de Vogel LL, Boer WH, Dendooven A, Clahsen-van Groningen MC, Betjes MG (2015) CD4-positive T cells and M2 macrophages dominate the peritoneal infiltrate of patients with encapsulating peritoneal sclerosis. PLoS ONE 10(4):e0120174. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0120174 Hu W, Jiang Z, Zhang Y, Liu Q, Fan J, Luo N, Dong X, Yu X (2012) Characterization of infiltrating macrophages in high glucose-induced peritoneal fibrosis in rats. Mol Med Rep 6(1):93–99. https://doi.org/10.3892/mmr.2012.890 Ferrantelli E, Liappas G, Keuning ED, Vila Cuenca M, González-Mateo G, Verkaik M, López-Cabrera M, Beelen RH (2015) A novel mouse model of peritoneal dialysis: combination of uraemia and long-term exposure to PD fluid. Biomed Res Int 2015:106902. https://doi.org/10.1155/2015/106902 Ferrantelli E, Liappas G, Vila Cuenca M, Keuning ED, Foster TL, Vervloet MG, Lopéz-Cabrera M, Beelen RH (2016) The dipeptide alanyl-glutamine ameliorates peritoneal fibrosis and attenuates IL-17 dependent pathways during peritoneal dialysis. Kidney Int 89(3):625–635. https://doi.org/10.1016/j.kint.2015.12.005 Glim JE, Beelen RH, Niessen FB, Everts V, Ulrich MM (2015) The number of immune cells is lower in healthy oral mucosa compared to skin and does not increase after scarring. Arch Oral Biol 60(2):272–281. https://doi.org/10.1016/j.archoralbio.2014.10.008 Ghosn EE, Cassado AA, Govoni GR, Fukuhara T, Yang Y, Monack DM, Bortoluci KR, Almeida SR, Herzenberg LA (2010) Two physically, functionally, and developmentally distinct peritoneal macrophage subsets. Proc Natl Acad Sci USA 107(6):2568–2573. https://doi.org/10.1073/pnas.0915000107 Oh EJ, Ryu HM, Choi SY, Yook JM, Kim CD, Park SH, Chung HY, Kim IS, Yu MA, Kang DH, Kim YL (2010) Impact of low glucose degradation product bicarbonate/lactate-buffered dialysis solution on the epithelial-mesenchymal transition of peritoneum. Am J Nephrol 31(1):58–67. https://doi.org/10.1159/000256658 Mortier S, Faict D, Schalkwijk CG, Lameire NH, De Vriese AS (2004) Long-term exposure to new peritoneal dialysis solutions: effects on the peritoneal membrane. Kidney Int 66(3):1257–1265. https://doi.org/10.1111/j.1523-1755.2004.00879.x Stavenuiter AW, Schilte MN, Ter Wee PM, Beelen RH (2011) Angiogenesis in peritoneal dialysis. Kidney Blood Press Res 34(4):245–252. https://doi.org/10.1159/000326953 Frazier-Jessen MR, Kovacs EJ (1993) Abdominal wall thickness as a means of assessing peritoneal fibrosis in mice. J Immunol Methods 162(1):115–121 Williams JD, Craig KJ, Topley N, Von Ruhland C, Fallon M, Newman GR, Mackenzie RK, Williams GT, Group PBS (2002) Morphologic changes in the peritoneal membrane of patients with renal disease. J Am Soc Nephrol 13(2):470–479 Williams JD, Craig KJ, Topley N, Williams GT (2003) Peritoneal dialysis: changes to the structure of the peritoneal membrane and potential for biocompatible solutions. Kidney Int Suppl 63(84):S158–S161. https://doi.org/10.1046/j.1523-1755.63.s84.46.x Duman S, Ozbek SS, Gunay ES, Bozkurt D, Asci G, Sipahi S, Kirçelli F, Ertilav M, Ozkahya M, Ok E (2007) What does peritoneal thickness in peritoneal dialysis patients tell us? Adv Perit Dial 23:28–33 Mortier S, Faict D, Lameire NH, De Vriese AS (2005) Benefits of switching from a conventional to a low-GDP bicarbonate/lactate-buffered dialysis solution in a rat model. Kidney Int 67(4):1559–1565. https://doi.org/10.1111/j.1523-1755.2005.00237.x González-Mateo GT, Fernández-Míllara V, Bellón T, Liappas G, Ruiz-Ortega M, López-Cabrera M, Selgas R, Aroeira LS (2014) Paricalcitol reduces peritoneal fibrosis in mice through the activation of regulatory T cells and reduction in IL-17 production. PLoS ONE 9(10):e108477. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0108477 Lech M, Anders HJ (2013) Macrophages and fibrosis: How resident and infiltrating mononuclear phagocytes orchestrate all phases of tissue injury and repair. Biochim Biophys Acta 1832(7):989–997. https://doi.org/10.1016/j.bbadis.2012.12.001 Bellón T, Martínez V, Lucendo B, del Peso G, Castro MJ, Aroeira LS, Rodríguez-Sanz A, Ossorio M, Sánchez-Villanueva R, Selgas R, Bajo MA (2011) Alternative activation of macrophages in human peritoneum: implications for peritoneal fibrosis. Nephrol Dial Transplant 26(9):2995–3005. https://doi.org/10.1093/ndt/gfq771 Weiss L, Stegmayr B, Malmsten G, Tejde M, Hadimeri H, Siegert CE, Ahlmén J, Larsson R, Ingman B, Simonsen O, van Hamersvelt HW, Johansson AC, Hylander B, Mayr M, Nilsson PH, Andersson PO, De los Ríos T (2009) Biocompatibility and tolerability of a purely bicarbonate-buffered peritoneal dialysis solution. Perit Dial Int 29(6):647–655 Martikainen TA, Teppo AM, Grönhagen-Riska C, Ekstrand AV (2005) Glucose-free dialysis solutions: inductors of inflammation or preservers of peritoneal membrane? Perit Dial Int 25(5):453–460 Glim JE, Niessen FB, Everts V, van Egmond M, Beelen RH (2013) Platelet derived growth factor-CC secreted by M2 macrophages induces alpha-smooth muscle actin expression by dermal and gingival fibroblasts. Immunobiology 218(6):924–929. https://doi.org/10.1016/j.imbio.2012.10.004 Sakaguchi S (2004) Naturally arising CD4 + regulatory t cells for immunologic self-tolerance and negative control of immune responses. Annu Rev Immunol 22:531–562. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.21.120601.141122 Schilte MN, Loureiro J, Keuning ED, ter Wee PM, Celie JW, Beelen RH, van den Born J (2009) Long-term intervention with heparins in a rat model of peritoneal dialysis. Perit Dial Int 29(1):26–35 Stavenuiter AW, Farhat K, Vila Cuenca M, Schilte MN, Keuning ED, Paauw NJ, ter Wee PM, Beelen RH, Vervloet MG (2015) Protective effects of paricalcitol on peritoneal remodeling during peritoneal dialysis. Biomed Res Int 2015:468574. https://doi.org/10.1155/2015/468574