Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Phát hiện và phân biệt giữa các chủng sinh ra ochratoxin và không sinh ra ochratoxin của Penicillium nordicum trên môi trường dựa vào thịt nguội sử dụng mũi điện tử
Tóm tắt
Mục tiêu của nghiên cứu này là đánh giá tiềm năng sử dụng các mô hình bay hơi định tính do Penicillium nordicum sản xuất để phân biệt các chủng sinh ra ochratoxin A (OTA) và không sinh ra trên môi trường dựa vào thịt nguội. Các thí nghiệm được thực hiện trên môi trường thịt nguội 3% ở hai hoạt độ nước (aw; 0.995, 0.95) được cấy bằng bào tử P. nordicum và ủ ở 25°C trong thời gian lên đến 14 ngày. Các khu колoni đang phát triển được thu mẫu sau 1, 2, 3, 7 và 14 ngày, được đựng trong lọ 30ml, được niêm phong và không gian đầu được phân tích bằng thiết bị mũi điện tử cảm biến hybrid. Tác động của các điều kiện môi trường đối với sự phát triển và sản xuất OTA được đánh giá dựa trên phản ứng định tính. Tuy nhiên, sau 7 ngày, có thể phân biệt được giữa các chủng được phát triển ở 0.995 aw, và sau 14 ngày, các chủng sinh ra OTA và không sinh ra OTA cùng với các mẫu đối chứng có thể được phân biệt tại cả hai mức aw. Nghiên cứu này gợi ý rằng các mô hình bay hơi do các chủng P. nordicum sản xuất có thể khác nhau và được sử dụng để dự đoán sự hiện diện của các chất ô nhiễm độc tố trong thịt nguội. Cách tiếp cận này có thể được áp dụng trong sản xuất thịt nguội như một phần của hệ thống đảm bảo chất lượng để ngăn chặn ô nhiễm OTA.
Từ khóa
#ochratoxin A #Penicillium nordicum #mũi điện tử #thịt nguội #chất ô nhiễm độc tốTài liệu tham khảo
Asefa DT, Gjerde RO, Sidhu MS, Langsrud S, Kure CF, Nesbakken T, Skaar I (2009) Moulds contaminants on Norwegian dry-cured meat products. Int J Food Microbiol 128:435–439
Battilani P, Pietri A, Giorni P, Formenti S, Bertuzzi T, Toscani T, Virgili R, Kozakiewicz Z (2006) Penicillium populations in dry-cured ham manufacturing plants. J Food Prot 70:975–980
Bianchi F, Cereri M, Mangia A, Mattarozzi M, Musci M, Concina I, Falasconi M, Gobbi E, Pardo M, Sberveglieri G (2009) Differentiation of the volatile profile of microbiologically contaminated canned tomatoes by dynamic headspace extraction followed by gas chromatography-mass spectrometry analysis. Talanta 77:962–970
Bogs C, Battilani P, Geisen R (2006) Development of a molecular detection and differentiation system for ochratoxin A producing Penicillium species and its application to analyse the occurrence of Penicillium nordicum in cured meats. Int J Food Microbiol 107:39–47
Cabañes FJ, Sahgal N, Bragulat MR, Magan N (2009) Early discrimination of fungal species responsible of ochratoxin A contamination of wine and other grape products using an electronic nose. Mycotoxin Res 25:187–192
Dall’Asta C, Galaverna G, De Dea LJ, Virgili R, Neviani E, Dossena A (2007) A new validated HPLC-FLD method for detecting ochratoxin A in dry-cured meat and in blue cheese. Mycotoxin Res 23:132–137
Dallyn H, Fox A (1980) Spoilage of material of reduced water activity by xerophilic fungi. In: G.H. Gould and J.E.L. Corry (eds) Society of Applied Bacteriology, Technical Series No. 15:129–139
EFSA (European Food Safety Authority) (2006) Opinion of The Scientific Panel on contaminants in the Food Chain of the EFSA on a request from the Commission related to ochratoxin A in food, EFSA J 365, 1-56. http://www.efsa.europa.eu. Accessed 15 May 2008
Gareis M (1996) Fate of ochratoxin A on processing of meat products. Food Addit Contam 13(suppl):35–37
Govaris A, Solomakos N, Pexara N (2007) Ochratoxin A in foods of animal origin. J Hell Vet Med Soc 58:313–320
Iacumin L, Chiesa L, Boscolo D, Manzano M, Cantoni C, Orlic S (2008) Moulds and ochratoxin A on surfaces of artisanal and industrial dry sausages. Food Microbiol 26:65–70
Karlshoj K, Nielsen Per V, Larsen T (2007) Prediction of Penicillium expansum spoilage and patulin used for apple juice production by electronic nose analysis. J Agric Food Chem 55:4289–4298
Keshri G, Magan N (2000) Detection and differentiation between mycotoxigenic and non-mycotoxigenic strains of Fusarium spp. using volatile production profiles and hydrolytic enzymes. J Appl Microbiol 89:825–833
Leistner L (1986) Mould-ripened foods. Fleischwirtschaft 66:1385–1388
Magan N, Sahgal N (2007) Electronic nose for quality and safety control. In: Nollet L, Toldra F (eds) Chapter 6, advances in food diagnostics. Blackwell, Iowa, USA, pp 119–129
Needham R, Magan N (2003) Detection and differentiation of toxigenic Penicillium verrrucosum strains on bakery products using an electronic nose. Aspects Appl Biol 68:217–222
Olsson J (2000) Modern methods in cereal grain mycology. PhD dissertation, Acta Univ Agric Sueciae – Agraria
Sahgal N, Needham R, Cabanes FJ, Magan N (2007) Potential for detection and discrimination between mycotoxigenic and non-toxigenic moulds using volatile production patterns: a review. Food Addit Contam 24:1164–1168
Smedsgaard J (1997) Analytical Abstracts Micro-scale extraction procedure for standardized screening of fungal metabolite production in cultures. J Chromatogr 760:264–270
Spotti E, Busolli C, Palmia F (1999) Sviluppo di colture fungine di importanza rilevante nell’industria dei prodotti carnei. Ind Conserve 74:23–34
Spotti E, Chiavaro E, Lepiani A, Colla F (2001) Contaminazione da muffe e da Ocratossina A in prosciutti stagionati e in fase di stagionatura. Ind Conserve 77:3–13
Tognon G, Campagnoli A, Pinotti L, Dell’Orto V, Cheli F (2005) Implementation of the electronic nose for the identification of mycotoxins in durum wheat (Triticum durum). Vet Res Commun 29:391–393