Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Đánh giá so sánh căng thẳng phẫu thuật giữa phẫu thuật nội soi và phẫu thuật hở ở bệnh ung thư đại trực tràng
Tóm tắt
MỤC ĐÍCH: Để đánh giá khách quan lợi ích của các thủ thuật nội soi đối với ung thư đại trực tràng, một nghiên cứu triển vọng đã được thực hiện để đo lường phản ứng căng thẳng do phẫu thuật nội soi (n=15) so với phẫu thuật hở (n=12). Ngoài ra, để so sánh các tham số khác nhau liên quan đến căng thẳng phẫu thuật, nhóm phẫu thuật lớn (cắt thực quản qua lồng ngực cho ung thư thực quản, n=4; và lột bỏ ổ bụng trên bên trái cho ung thư dạ dày, n=3) đã được chỉ định. PHƯƠNG PHÁP: Mẫu máu ngoại vi đã được thu thập để đo nồng độ interleukin-6 huyết thanh, protein C-reactive, số lượng bạch cầu ngoại vi, và số lượng lympho. Đặc biệt, mức độ apoptosis của lympho đã được định lượng bằng sử dụng phương pháp phân tích dòng chảy. KẾT QUẢ: Nồng độ interleukin-6 và protein C-reactive đã cao hơn đáng kể ở nhóm phẫu thuật hở so với nhóm nội soi một ngày (P<0.05) và hai ngày (P<0.05) sau phẫu thuật, tương ứng. Ở nhóm nội soi, số lượng lympho cao hơn đáng kể so với nhóm hở hai ngày sau phẫu thuật. Không có sự khác biệt đáng kể về chỉ số apoptosis của lympho giữa nhóm nội soi và nhóm hở. Trong nhóm phẫu thuật lớn, chỉ số apoptosis cao hơn đáng kể so với cả nhóm nội soi hay nhóm hở trong giai đoạn hậu phẫu sớm. KẾT LUẬN: Những thay đổi trong các tham số khác nhau liên quan đến căng thẳng phẫu thuật được đánh giá trong nghiên cứu này cho thấy rằng phẫu thuật nội soi đối với ung thư đại trực tràng dẫn đến căng thẳng hậu phẫu ít hơn so với phẫu thuật hở truyền thống.
Từ khóa
#phẫu thuật nội soi #phẫu thuật hở #ung thư đại trực tràng #căng thẳng phẫu thuật #interleukin-6 #protein C-reactiveTài liệu tham khảo
Okuda J, Tanigawa N. Colon carcinomas may be adequately treated using laparoscopic methods. Semin Colon Rectal Surg 1998;9:241–6.
Ortega AE, Beart RW Jr, Steele GD Jr, Winchester DP, Greene FL. Laparoscopic bowel surgery registry: preliminary results. Dis Colon Rectum 1995;38:681–5.
Wexner SD, Cohen SM. Port site metastases after laparoscopic colorectal surgery for cure of malignancy. Br J Surg 1995;82:295–8.
Cirocco WC, Schwartzman A, Golub RW. Abdominal wall recurrence after laparoscopic colectomy for colon cancer. Surgery 1994;116:842–6.
Cioffi WG, Burleson DG, Pruitt BA Jr. Leukocyte responses to injury. Arch Surg 1993;128:1260–7.
Baigrie RJ, Lamont PM, Kwiatkowski D, Dallman MJ, Morris PJ. Systemic cytokine response after major surgery. Br J Surg 1992;79:757–60.
Oka M, Hirazawa K, Yamamoto K,et al. Induction of Fas-mediated apoptosis on circulating lymphocytes by surgical stress. Ann Surg 1996;223:434–40.
Milsom JW, Böhm B, Hammerhofer KA, Fazio V, Steiger E, Elson P. A prospective, randomized trial comparing laparoscopic versus conventional techniques in colorectal cancer surgery: a preliminary report. J Am Coll Surg 1998;187:46–54.
Baumann H, Gauldie J. Regulation of hepatic acute phase plasma protein genes by hepatocyte stimulating factors and other mediators of inflammation. Mol Biol Med 1990;7:147–59.
Perlmutter DH, Dinarello CA, Punsal PI, Colten HR. Cachectin/tumor necrosis factor regulates hepatic acute-phase gene expression. J Clin Invest 1986;78:1349–54.
Castell JV, Andus T, Kunz D, Heinrich PC. Interleukin-6: the major regulator of acute-phase protein synthesis in man and rat. Ann N Y Acad Sci 1989;557:87–99.
Cruickshank AM, Fraser WD, Burns HJ, Van Damme J, Shenkin A. Response of serum interleukin-6 in patients undergoing elective surgery of varying severity. Clin Sci 1990;79:161–5.
Ohzato H, Yoshizaki K, Nishimoto N,et al. Interleukin-6 as a new indicator of inflammatory status: Detection of serum levels of interleukin-6 and C-reactive protein after surgery. Surgery 1992;111:201–9.
Harmon GD, Senegore AJ, Kilbride MJ, Warzynski MJ. Interleukin-6 response to laparoscopic and open colectomy. Dis Colon Rectum 1994;37:754–9.
Hewitt PM, Ip SM, Kwok SP,et al. Laparoscopic-assisted vs. open surgery for colorectal cancer: Comparative study of immune effects. Dis Colon Rectum 1998;41:901–9.
Halevy A, Lin G, Gold-Deutsch R,et al. Comparison of serum C-reactive protein concentrations for laparoscopic versus open cholecystectomy. Surg Endosc 1995;9:280–2.
Redmond HP, Watson RW, Houghton T, Condron C, Watson RG, Bouchier-Hayes D. Immune function in patients undergoing open vs laparoscopic cholecystectomy. Arch Surg 1994;129:1240–6.
Riddle PR, Berenbaum MC. Postoperative depression of the lymphocyte response to phytohaemagglutinin. Lancet 1967;1:746–8.
Espanol T, Todd GB, Soothill JF. The effect of anaesthesia on the lymphocyte response to phytohaemagglutinin. Clin Exp Immunol 1974;18:73–9.
Koopman G, Reutelingsperger CP, Kuijten GA, Keehnen RM, Pals ST, van Oers MH. Annexin V for flow cytometric detection of phosphatidylserine expression on B cells undergoing apoptosis. Blood 1994;84:1415–20.
Ishaque A, Al-Rubeai M. Use of intracellular pH and annexin-V flow cytometric assays to monitor apoptosis and its suppression by bcl-2 over-expression in hybridoma cell culture. J Immunol Methods 1998;221:43–57.
McCloskey TW, Chavan S, Lakshmi Tamma SM, Pahwa S. Comparison of seven quantitative assays to assess lymphocyte cell death during HIV infection: measurement of induced apoptosis in anti-Fas-treated Jurkat cells and spontaneous apoptosis in peripheral blood mononuclear cells from children infected with HIV. AIDS Res Hum Retroviruses 1998;14:1413–22.
Walsh GM, Dewson G, Wardlaw AJ, Levi-Schaffer F, Moqbel R. A comparative study of different methods for the assessment of apoptosis and necrosis in human eosinophils. J Immunol Methods 1998;217:153–63.
Toft P, Svendsen P, Tonnesen E, Rasmussen JW, Christensen NJ. Redistribution of lymphocytes after major surgical stress. Acta Anaesthesiol Scand 1993;37:245–9.