Đặc điểm các khuẩn Leishmania từ bệnh nhân Nepal mắc bệnh leishmaniasis nội tạng

Parasitology Research - Tập 100 - Trang 1361-1369 - 2007
Kishor Pandey1, Testuo Yanagi1, Basu Dev Pandey2, Arun Kumar Mallik3, Jeevan Bahadur Sherchand4, Hiroji Kanbara1
1Department of Protozoology, Institute of Tropical Medicine, Nagasaki University, Nagasaki, Japan
2Sukraraj Tropical and Infectious Diseases Hospital, Kathmandu, Nepal
3Janakpur Zonal Hospital, Janakpur, Nepal
4Department of Microbiology–Parasitology, Infectious and Tropical Disease Center, Tribhuvan University Teaching Hospital, Kathmandu, Nepal

Tóm tắt

Tại Nepal, bệnh leishmaniasis nội tạng (VL) là bệnh nội sinh ở 13 quận thuộc vùng trung và đông. Tổng cộng có 166 mẫu chọc hút tủy xương được lấy từ các bệnh nhân nghi ngờ mắc VL. Trong số đó, 97 mẫu được xác định là dương tính bằng phương pháp kính hiển vi và 29 mẫu được nuôi cấy thành công. Chúng tôi đã đặc trưng các chủng này bằng phân tích phân tử và khả năng gây nhiễm trùng cho chuột. Phân tích PCR-polymorphism chiều dài đoạn cắt mảnh của mini-exon và gen cysteine proteinase b cho thấy tất cả các chủng đều là Leishmania donovani, và mẫu cắt mảnh của các chủng ở Nepal tương ứng với chủng tiêu chuẩn Ấn Độ của L. donovani nhưng khác biệt so với chủng ở Kenya. Phân tích biến thể hình dạng chuỗi đơn của không gian nội bộ ribosomal đã cho thấy không có sự đa dạng gen trong các chủng ở Nepal. Tiêm trực tiếp vào bụng với thể promastigote của tất cả các chủng đã dẫn đến sự phát triển của amastigote trong lách của 20 con chuột nude, trong đó mười chủng có khả năng gây nhiễm cao, và mười chủng có khả năng gây nhiễm vừa phải, bao gồm một con chuột BALB/c. Trong số 20 amastigote được lấy từ lách của chuột nude, chỉ có mười chủng gây nhiễm cao đã gây nhiễm cho chuột BALB/c, trong đó, hai chủng được coi là có khả năng gây nhiễm thấp, ba chủng được coi là có khả năng gây nhiễm vừa phải, và năm chủng được coi là có khả năng gây nhiễm cao.

Từ khóa

#leishmaniasis nội tạng #Leishmania donovani #phân tích phân tử #kháng thể #khả năng gây nhiễm

Tài liệu tham khảo

Ashford RW, Desjeux P, Deraadt P (1992) Estimation of population at risk of infection and number of cases of Leishmaniasis. Parasitol Today 8:104–105 Blackwell J, Freeman J, Bradley D (1980) Influence of H−2 complex on acquired resistance to Leishmania donovani infection in mice 72. Nature 283:72–74 Berzunza-Cruz M, Cabrera N, Crippa-Rossi M, Sosa-Cabrera T, Perez-Montfort R, Becker I (2002) Polymorphism analysis of the internal transcribed spacer and small subunit of ribosomal RNA genes of Leishmania mexicana. Parasitol Res 88:918–925 Bulle B, Millon L, Bart JM, Gallego M, Gambarelli F, Portus M, Schnur L, Jaffe CL, Fernandez-Barredo S, Alunda JM, Piarroux R (2002) Practical approach for typing strains of Leishmania infantum by microsatellite analysis. J Clin Microbiol 40:3391–3397 Chance ML (1979) The identification of Leishmania. In: Taylor AER, Muller R (eds) Problems in the identification of parasites and their vectors. Blackwell, Oxford, pp 55–74 Cupolillo E, Grimaldi Junior G, Momen H, Beverley SM (1995) Intragenic region typing (IRT): a rapid molecular approach to the characterization and evolution of Lesihmania. Mol Biochem Parasitol 73:145–155 Cupolillo E, Brahim LR, Toaldo CB, Oliveira-Neto MP, Felinto de Brito ME, Falqueto A, Faris Naiff M, Grimaldi Jr G (2003) Genetic polymorphism and molecular epidemiology of Leishmania (Viannia) braziliensis from different hosts and geographic areas in Brazil. J Clin Microbiol 41:3126–3132 Desjeux P (2001) The increase in risk factors for leishmaniasis worldwide. Trans R Soc Trop Med Hyg 95:239–243 El Tai NO, Osman OF, El Fari M, Presber WH, Schonian G (2000) Genetic heterogeneity of ribosomal internal transcribed spacer (ITS) in clinical samples of Leishmania donovani spotted on filter paper as revealed by single strand conformation polymorphisms and sequencing. Trans R Soc Trop Med Hyg 94:575–579 El Tai NO, El Fari M, Mauricio I, Miles MA, Oskam L, El Safi SH, Presber WH, Schonian G (2001) Leishmania donovani: intraspecific polymorphisms of Sudanese isolates revealed by PCR-based analyses and DNA sequencing. Exp Parasitol 97:35–44 Fernandes O, Murthy VK, Kurath U, Degrave WM, Campbell DA (1994) Mini-exon gene variation in human pathogenic Leishmania species. Mol Biochem Parasitol 66:261–271 Gasser RB (1997) Mutation scanning methods for the analysis of parasites genes. Int J Parasitol 27:1449–1463 Giannini MS (1974) Effects of promastigote growth phase, frequency of subculture, and host age on promastigote-initiated infections with Leishmania donovani in the golden hamster. J Protozool 21:521–527 Hide M, Banuls AL, Tibayrenc M (2001) Genetic heterogeneity and phylogenetic status of Leishmania (Leishmania) infatum zymodeme MON-1: epidemiological implications. Parasitology 123:425–432 Jackson PR, Wohlhieter JA, Jackson JE, Sayles P, Diggs CL, Hockmeyer WT (1984) Restriction endonuclease analysis of Leishmania kinetoplast DNA characterizes parasites responsible for visceral and cutaneous diseases. Am J Trop Med Hyg 33:808–819 Mahnaz T, Katrin K, Amer AJ, Isabel M, Gabriele S, Safar F, Hossein AM (2006) Leishmania major: genetic heterogeneity of Iranian isolates by single-strand conformation polymorphism and sequence analysis of ribosomal DNA internal transcribed spacer. Acta Trop 98:52–58 Marfurt J, Nasereddin A, Niederwieser I, Jaffe CL, Beck HP, Felger I (2003a) Identification and differentiation of Leishmania species in clinical samples by PCR amplification of the mini-exon sequence and subsequent restriction fragment length polymorphism analysis. J Clin Microbiol 41:3147–3153 Marfurt J, Neiderwieser I, Makia ND, Beck HP, Felger I (2003b) Diagnostic genotyping of Old and New world Leishmania species by PCR-RFLP. Diagn Microbiol Infect Dis 46:115–124 Mauricio IL, Stothard JR, Miles MA (2004) Leishmania donovani complex: genotyping with ribosomal internal transcribed spacer and mini-exon. Parasitology 128:263–267 Melby PC, Yang YZ, Cheng J, Zhao W (1998) Regional differences in the cellular immune response to experimental cutaneous or visceral infection with Leishmania donovani. Infect Immun 66:18–27 Ministry of Health, Nepal (2004/2005) Annual report. Kala-azar control. His Majesty’s Government of Nepal, Ministry of Health, Directorate of Health Services, Epidemiology and Disease Control, Kathmandu, pp 26–27 Mundodi V, Somanna A, Farrell PJ, Gedamu L (2002) Genomic organization and functional expression of differentially regulated cysteine protease genes of Leishmania donovani complex. Gene 282:257–265 Murray HW, Masur H, Keithly JS (1982) Cell-mediated immune response in experimental visceral leishmaniasis. I. Correlation between resistance to Leishmania donovani and lymphokine-generating capacity. J Immunol 129:344–350 Murray HW, Stern JJ, Welte K, Rubin BY, Carriero SM, Nathan CF (1987) Experimental visceral leishmaniasis: production of interleukin 2 and interferon-gamma, tissue immune reaction, and response to treatment with interleukin 2 and interferon-gamma. J Immunol 138:2290–2297 Nickol AD, Bonventre PF (1985) Visceral leishmaniasis in congenic mice of susceptible and resistant phenotypes: T-lymphocyte-mediated immunosuppression. Infect Immun 50:169–174 Nolan TJ, Herman R (1985) Effects of long-term in-vitro cultivation on Leishmania donovani promastigotes. J Protozool 32:70–75 Piarroux R, Azaiez R, Lossi AM, Reynier P, Muscatelli F, Gambarelli F, Fontes M, Dumon H, Quilici M (1993) Isolation and characterization of a repetitive DNA sequences from Leishmania infantum: development of a visceral leishmaniasis polymerase chain reaction. Am J Trop Med Hyg 49:364–369 Pollock KG, Mc Neil KS, Mottram JC, Lyons RE, Brewer JM, Scott P, Coombs GH, Alexander J (2003) The Leishmania mexicana cysteine protease, CPB2.8, induces potent Th2 responses. J Immunol 170:1746–1753 Quispe Tintaya KW, Ying X, Dedet JP, Rijal S, De Bolle X, Dujardin JC (2004) Antigen genes for molecular epidemiology of Leishmaniasis: polymorphism of cysteinase proteinase B and surface metalloprotease glycoprotein 63 in the Leishmania donovani complex. J Infect Dis 189:1035–1043 Ramirez JL, Guevara P (1987) The ribosomal gene spacer as a tool for the taxonomy of Leishmania. Mol Biochem Parasitol 22:177–183 Ramos A, Maslov DA, Fernandes O, Campbell DA, Simpson L (1996) Detection and identification of human pathogenic Leishmania and Trypanosoma species by hybridization of PCR-amplified mini-exon repeats. Exp Parasitol 82:242–250 Rioux JA, Lanotte G, Serres E, Pratlong F, Bastien P, Perieres J (1990) Taxonomy of Leishmania, use of isoenzymes. Suggestions for a new classification. Ann Parasitol Hum Comp 65:111–125 Sambrok J, Russel DW (2001) Molecular cloning: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY Schonian G, Akuffo H, Lewin S, Maasho K, Nylen S, Pratlong F, Eisenberger CL, Schnur LF, Presber W (2000) Genetic variability within the species Leishmania aethiopica does not correlate with clinical variations of cutaneous leishmaniasis. Mol Biochem Parasitol 106:239–248 Schonian G, Schnur L, El Fari M, Oskam L, Kolesnikov AA, Sokolowska-Kohler W, Presber W (2001a) Genetic heterogeneity in the species Leishmania tropica revealed by different PCR-based methods. Trans R Soc Trop Med Hyg 95:1–8 Schonian G, El Fari M, Lewin S, Schweynoch C, Presber W (2001b) Molecular epidemiology and population genetics in Leishmania. Med Microbiol Immunol 190:61–63 Schonian G, Nasereddin A, Dinse N, Schweynoch C, Schallig DFH, Presber W, Jaffe C L (2003) PCR diagnosis and characterization of Leishmania in local and imported clinical samples. Diagn Microbiol Infect Dig 47:349–358 Souza AE, Waugh S, Coombs GH, Mottram JC (1992) Characterization of a multi-copy gene for a major stage-specific cysteine proteinase of Leishmania mexicana. FEBS Lett 311:124–127 Sreenivas G, Singh R, Selvapandiyan A, Negi NS, Nakhashi HL, Salotra P (2004) Arbitrary-primed PCR for genomic fingerprinting and identification of differentially regulated genes in Indian isolates of Leishmania donovani. Exp Parasitol 106:110–118 Titus RG, Ribeuri JM (1998) Salivary gland lysates from the sand fly Lutzomyia longipalpis enhance Leishmania infectivity. Science 239:1306–1308 Toledo A, Martin-Sanchez J, Pesson B, Sanchiz-Martin C, Morillas-Marquez F (2002) Genetic variability within the species Leishmania infantum by RAPD. A lack of correlation with zymodeme structure. Mol Biochem Parasitol 119:257–264 WHO (1996) Manual on visceral leishmaniasis control. WHO/Leish/96-40, Geneva WHO (1998) Leishmania and HIV in gridlock. WHO/UNAIDS report, Geneva, pp 12–25 Wilson ME, Hardin KK, Donelson JE (1989) Expression of the major surface glycoprotein of Leishmania donovani chagasi in virulent and attenuated promastigotes. J Immunol 143:678–684