Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Các dấu ấn tế bào và phân tử của tổ chức trước-sau (anteroposterior) và đối xứng lưng-bụng (dorsoventral) trong các nang trứng của Sarcophaga bullata trưởng thành (Diptera) và sự định hướng lưng-bụng của các nang trong buồng trứng
Tóm tắt
Tổ chức phân cực trong các nang trứng của Sarcophaga bullata trưởng thành được phản ánh qua trục tế bào điều dưỡng – noãn bào và định hướng của hai cặp tế bào phân cực trong biểu mô nang. Tổ chức nội bộ của buồng tế bào điều dưỡng góp phần vào tính phân cực nhưng không góp phần vào tính không đối xứng lưng-bụng. Tính không đối xứng lưng-bụng có liên quan đến vị trí lệch tâm của túi germinal và định hướng của các cặp tế bào phân cực; không thấy đặc điểm chuyên biệt khác trong các tế bào nang. Trong một buồng trứng, các nang trứng thường được định hướng với mặt lưng hướng về trung tâm của buồng trứng. Các protein của hệ thống tế bào và một số protein trong huyết thanh là các dấu ấn phân tử của tính phân cực. Do đó, trong các giai đoạn trước sinh lý trứng, tính phản ứng miễn dịch của tubulin cao hơn ở noãn bào so với các tế bào điều dưỡng, tính phản ứng miễn dịch của actin là tương tự ở các tế bào kén và protein huyết thanh ấu trùng được giới hạn ở các cực. Trong quá trình sinh lý trứng, cả actin và tubulin trở nên tập trung hơn trong các tế bào điều dưỡng và protein huyết thanh ấu trùng 1 tích tụ trong các tế bào phân cực trong quá trình di cư của các tế bào biên khi các polypeptide trứng cũng tích tụ trong noãn bào. Vào cuối quá trình sinh lý trứng, một lipophorin được hấp thu bởi noãn bào. Không có dấu ấn phân tử nào của tính không đối xứng lưng-bụng được xác định.
Từ khóa
#Sarcophaga bullata #nang trứng #tổ chức phân cực #đối xứng lưng-bụng #tế bào điều dưỡng #sinh lý trứngTài liệu tham khảo
Brower DL, Smith RJ, Wilcox M (1981) Differentiation within the gonads of Drosophila revealed by immunofluorescence. J Embryol Exp Morphol 63:233–242
Cardoen J, Schoofs L, Broekaert D, Van Mellaert H, Verachtert B, De Loof A (1986) Polyploidization and localisation of poly (A+)RNA in the different cell types of the vitellogenic meroistic ovary of the fleshfly, Sarcophaga bullata. Histochemistry 85:305–312
Chan L, Gehring W (1971) Determination of blastoderm cells in Drosophila melanogaster. Proc Natl Acad Sci USA 68:2217–2221
Frey A, Sander K, Gutzeit H (1984) The spatial arrangement of germ line cells in ovarian follicles of the mutant dicephalic in Drosophila melanogaster. Roux's Arch Dev Biol 193:388–393
Geysen J (1988) Desorption of antibodies for re-use of blots. In: Bjerrum OJ, Heegaart NN (eds) Handbook of immunoblotting. CRC Press (in press)
Geysen J, De Loof A (1983a) Translucent cyanoacrylate glues allow very quick and permanent mounting of semithin sections. Mikroskopie 40:138–139
Geysen J, De Loof A (1983b) Immunocytochemical study of vitellogenic proteins in the ovaries of the blowfly Sarcophaga bullata. In: Engels W (ed) Advances in invertebrate reproduction 3. Elsevier, Amsterdam, p 581
Geysen J, De Loof A (1986) Polar distribution of actin and tubulin in the ovary of Sarcophaga bullata (Diptera): an immunocytochemical and electronmicroscopical study. In: Porchet M, Andries J-C, Dhainaut A (eds) Advances in invertebrate reproduction 4. Elsevier, Amsterdam, p 513
Geysen J, Vandesande F, De Loof A (1984) How to perform subsequent or ‘double’ immunostaining of two different antigens on a single nitrocellulose blot within one day with an immunoperoxidase technique. Electrophoresis 5:129–131
Geysen J, Cardoen J, De Loof A (1987a) Distribution of yolk polypeptides in the follicle cells during the differentiation of the follicular epithelium in Sarcophaga bullata egg follicles. Development 101:33–43
Geysen J, Meulemans W, Berry S, De Loof A (1987b) Minute rings of F-actin dissociate from the four ring channels of the oocyte in Sarcophaga bullata. Cell Different [Suppl] 20:518
Gill KS (1964) Epigenetics of the promorphology of the egg in Drosophila melanogaster. J Exp Zool 155:91–104
Gutzeit HO (1986) The role of microtubules in the differentiation of ovarian follicles during vitellogenesis in Drosophila. Roux's Arch Dev Biol 195:173–181
Gutzeit HO, Huebner E (1986) Comparison of microfilament patterns in the nurse cells of different insects with polytrophic and telotrophic ovarioles. J Embryol Exp Morphol 93:291–301
Hegner HR (1917) The genesis of the organisation of the insect egg. Am Nat 51:641–661 and 705–718
Hinton HE (1981) Biology of insect eggs. Pergamon Press, Oxford
Huybrechts R, De Loof A (1977) Induction of vitellogenin synthesis in male Sarcophaga bullata by ecdysterone. J Insect Physiol 23:1359–1362
Jarnot BM, Berry SJ (1986) Actin-like protein associated with cortical cytoskeleton of moth oocytes (Hyalophora cecropia, Manduca sexta). Progr Dev Biol B: 99–101
Kleine-Schonnefeld H, Engels W (1981) Symmetrical pattern of follicle arrangement in the ovary of Musca domestica (Insecta, Diptera). Zoomorphology 98:185–190
Laemmli UK (1970) Cleavage of structural proteins during assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 227:680–695
Loyd JE, Raff EC, Raff RA (1981) Site and timing of tubulin and other proteins during oogenesis in Drosophila melanogaster. Dev Biol 86:272–284
Mahowald AP (1972) Oogenesis. In: Counce SJ, Waddington CH (eds) Developmental systems: insects. Academic Press, London, New York, pp 1–74
Mahowald AP, Allis CD, Karrer KM, Underwood EM, Waring GL (1979) Germ plasm and pole cells of Drosophila. In: Subtelny S, Königsberg IR (eds) Determinants of spatial organisation. Academic Press, London, pp 127–146
Mulnard J (1954) Etude morphologique et cytochimique chez Acanthoscelides obtectus Say (Bruchidae-Coléoptère). Arch Biol 65:262–314 and plates V–VII
Netzel H (1966) Die schwerkraft-induzierte Lage des Nukleolus in den Oocytenkernen von Gryllus domesticus L.. Naturwissenschaften 53:389–390
Overall R, Jaffe LF (1985) Patterns of ionic currents through Drosophila follicles and eggs. Dev Biol 108:102–119
Richards OW, Davies RG (1977) Imms' general textbook of entomology. Tenth edition, vol 1. Chapman and Hall, London, pp 972–974
Raven CP (1961) Oogenesis. The storage of developmental information. Pergamon Press, New York
Schenkel H, Scheller K (1986) Stage- and tissue specific expression of the genes encoding calliphorin, the major larval serum protein of Calliphora vicina. Roux's Arch Dev Biol 195:290–295
Stuhlmann (1886) Die Reifung des Arthropodeneies nach Beobachtungen an Insekten, Spinnen, Myriapoden und Peripatus. Berichte der Naturforschenden Gesellschaft zu Freiburg i.B. 1:1–128
Vandesande F (1983) Immunohistochemical double staining techniques. In: Cuello E (ed) Neuroimmunohistochemistry. John Wiley & Sons, New York, pp 257–272
Verachtert B, De Loof A (1986) Electrical fields around the polytrophic ovarian follicles of Sarcophaga bullata and the panoistic follicles of Locusta migratoria. In: Nuccitelli R (ed) Ionic currents in development. AR Liss, New York, pp 173–179
Warn RM, Gutzeit HO, Smith L, Warn A (1985) F-actin rings are associated with the ring canals of the Drosophila egg chamber. Exp Cell Res 157:355–363
