Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Kích thích hình thành mô sẹo trong các loài Phyllanthus và sự ức chế DNA polymerase virus và enzym sao chép ngược bởi chiết xuất mô sẹo
Tóm tắt
Các nghiên cứu về việc kích thích hình thành và phát triển mô sẹo trong Phyllanthus amarus Schum. & Thonn. (Euphorbiaceae) và một số loài liên quan được mô tả, cũng như sự ức chế enzym của virus viêm gan B và các virus liên quan bởi các chiết xuất từ mô sẹo. Mô sẹo được kích thích từ các mảnh thân hoặc cành của P. amarus được đặt trên một số tổ hợp môi trường khác nhau. Sự hình thành và phát triển mô sẹo bền và không phân hóa tối ưu xảy ra trên môi trường Murashige và Skoog bổ sung với 0,5 mg hoặc 1 mg BA/lít và 1 mg/lít của 2,4-D hoặc IBA, nhưng không phải IAA. Việc kích thích mô sẹo bằng các môi trường tương tự cũng đã được thử nghiệm với các loài Phyllanthus khác. Thành công tốt nhất là với P. abnormis. Các chiết xuất trong nước từ cây trồng trên đồng ruộng hoạt động mạnh hơn trong ống nghiệm đối với DNA polymerase virus và enzym sao chép ngược so với các chiết xuất từ mô sẹo.
Từ khóa
#Phyllanthus amarus #mô sẹo #viêm gan B #DNA polymerase virus #sao chép ngượcTài liệu tham khảo
Berk L, de Man RA, Schalm SW, Labadie RP, Heijtink, RA (1991) Beneficial effects of Phyllanthus amarus for chronic hepatitis B, not confirmed. J. Hepatol. 12:405–406.
Blumberg BS, Millman I, Venkateswaran PS, Thyagarajan SP (1989) Hepatitis B virus and hepatocellular carcinoma — treatment of HBV carriers with Phyllanthus amarus. Cancer Detect. Prevent. 1:195–201.
Conover WJ (1980) Practical nonparametric statistics. 2nd edn. John Wiley & Sons, New York, pp. 335–338.
Flores HE (1987) Use of plant cells and organ culture in the production of biological chemicals. In: LeBaron HM, Mumma RO, Honeycutt RC, Duesing JH, Phillips JF, Haas MJ (eds) Biotechnology in Agricultural Chemistry. American Chemical Society, Washington, D.C, pp. 66–86.
Gamborg OL, Miller RA, Ojima K (1968) Nutrient requirements of suspension culture of soybean root callus. Exp. Cell. Res. 50:151–158.
Haïcour R (1974) Comparaison chez Phyllanthus urinaria L. de l'activité antibactérienne des décoctions de diverses portions de la plante et de cultures de tissus qui en proviennent. C.R. Acad. Sci. Série D 278:3323–3325.
Hantz, O, Ooka, T, Vitvitski, L, Pichoud C, Trepo C (1984) Comparison of properties of woodchuck hepatitis virus and human hepatitis B virus endogenous DNA polymerases. Antimicrob. Agents. Ch. 25:242–246.
Holm-Nielsen LB (1979) Comments on the distribution and evolution of the genus Phyllanthus (Euphorbiaceae). In: Larsen K, Holm-Nielsen LB (eds) Tropical Botany. Academic Press, New York, pp. 277–290.
Khanna P, Staba EJ (1968) Antimicrobials from plant tissue cultures. Lloydia 31:180–189.
Leelarasamee A, Trakulsomboon S, Maunwongyathi P, Somanabandhu A, Pidetcha P, Matrakool B, Lebnak T, Ridthima W, Chandanayingyon GD (1990) Failure of Phyllanthus amarus to eradicate hepatitis B surface antigen from symptomless carriers. Lancet 1990-i:1600–1601.
Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant 15:473–479.
Niu, J, Wang, Y, Qiao, M, Gowans, E, Edwards, P, Thyagarajan, SP, Gust, I, Locarnini, S. (1990) Effect of Phyllanthus amarus on duck hepatitis B virus replication in vivo. J. Med. Virology 32:212–218.
Paskind MP, Weinberg RA, Baltimore D (1975) Dependence of Moloney murine leukemia viras production on cell growth. Virology 67:242–248.
Shead A, Vickery K, Medhurst R, Freiman J, Cossart Y (1990) Neutralisation but not cure of duck hepatitis B by Australian Phyllanthus extracts. Abstract 602 In: Scientific program and abstracts volume, the 1990 International Symposium on viral hepatitis and liver disease, April 4–8, 1990, Houston, Texas. (Abstr.).
Snedecor GW, Cochran, WG (1967) Statistical methods. 6th edn. Iowa State University Press, Ames, Iowa, pp. 296–298.
Thyagarajan SP, Subramanian S, Thirunalasundari T, Venkateswaran PS, Blumberg BS (1988) Preliminary study: the effect of Phyllanthus amarus on chronic carriers of hepatitis B virus. Lancet 1988-ii:764–766.
Unander DW, Venkateswaran PS, Millman I, Bryan HH, Blumberg BS (1990) Phyllanthus amarus: a possible source of new antiviral compounds. In: Janick J, Simon JE (eds) Advances in New Crops. Timber Press, Portland, Oregon, pp. 518–521.
Unander DW, Blumberg BS (1991) In vitro activity of Phyllanthus (Euphorbiaceae) species against the DNA polymerase of hepatitis viruses: Effects of growing environment and inter- and intra-specific differences. Econ. Botany. 45:225–242.
Unander DW, Webster GL, Blumberg BS (1991) A survey of ethnobotanical uses and biological assay results in Phyllanthus (Euphorbiaceae). II. The subgenus Phyllanthus. J. Ethnopharmacology 34:(in press).
Unander DW, Bryan, HH, Lance, CJ, McMillan, RT, Jr. (n.d.) Cultivation of Phyllanthus amarus and evaluation of variables potentially affecting yield and the inhibition of viral DNA polymerase. In press for Econ. Botany.
Venkateswaran PS, Millman I, Blumberg BS (1987) Effects of an extract from Phyllanthus niruri on hepatitis B and woodchuck hepatitis viruses: In vivo and in vitro studies. Proc. Nacl. Acad. Sci. U.S.A. 84:274–278.
Webster, GL (1956) A monographic study of the West Indian species of Phyllanthus. J. Arnold Arbor. 37:91–122; 340–359.
Webster GL (1957) A monographic study of the West Indian species of Phyllanthus (continued). J. Arnold Arb. 38:51–80; 170–198; 295–373.
Webster GL (1958) A monographic study of the West Indian species of Phyllanthus (continued). J. Arnold Arb. 39:49–100; 111–212.
Yanagi M, Unoura M, Kobayashi K, Hattori N, Murakami S (1989) Inhibitory effect of an extract from Phyllanthus niruri on reaction of endogenous HBV-DNA polymerase and other DNA synthetases. In: Abstracts of papers presented at the 1989 meeting on hepatitis B viruses, Sept. 25–28, 1989. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY. (Abstr.), p. 77.