Chu trình sinh địa hóa của lưu huỳnh và sắt trong trầm tích của rừng ngập mặn Đông Nam Á, Đảo Phuket, Thái Lan

Springer Science and Business Media LLC - Tập 26 - Trang 145-161 - 1994
Marianne Holmer1, Erik Kristensen1, Gary Banta1, Kim Hansen1, Mikael Hjort Jensen1, Nipuvan Bussawarit2
1Institute of Biology, Odense University , Odense M, Denmark
2Phuket Marine Biological Center, Phuket, Thailand

Tóm tắt

Việc giảm sulfate dưới đáy và các bể trầm tích chứa lưu huỳnh và sắt đã được khảo sát vào tháng 1 năm 1992 tại 3 trạm ở rừng ngập mặn Ao Nam Bor, Phuket, Thái Lan. Các mẫu hình của tỷ lệ giảm sulfate (0-53 cm) phản ánh sự khác biệt trong điều kiện vật lý và sinh học của 3 trạm, và tỷ lệ cao nhất được tìm thấy tại khu vực có cây xanh trong rừng ngập mặn (Rhizophora apiculata). Do sự oxy hóa kéo dài của trầm tích ngập mặn, một phần lớn của nhãn 35S thêm vào đã được phục hồi trong các bể trầm tích có khả năng giảm chromium (FeS2 và S0) (41-91% của lưu huỳnh đã giảm). Pyrit là thành phần lưu huỳnh vô cơ quan trọng nhất, đạt kích thước bể gấp 50-100 lần so với các bể dễ bay hơi acid (FeS). Các bể sắt có thể chiết xuất bằng HCl (0.5 M HCl), bao gồm Fe(II)HCl và Fe(III)HCl, thường ở mức thấp và Fe(III)HCl chỉ có mặt ở các lớp bề mặt trên cùng (0-5 cm). Nồng độ tối đa của Fe2+ hòa tan (35-285 μM) xảy ra ngay tại độ sâu nơi mà ΣH2S hòa tan tích lũy. Hơn nữa, Fe2+ và ΣH2S chỉ coexisted ở nơi mà nồng độ của cả hai đều thấp. Có sự tích lũy của lưu huỳnh hữu cơ trong trầm tích sâu ở 2 trạm trong phần bên trong của rừng ngập mặn. Sự tái oxy hóa của sulfide đã giảm diễn ra nhanh chóng, và việc lưu trữ lưu huỳnh là rất nhỏ trong các lớp trầm tích trên, nơi mà các yếu tố như sự xáo trộn sinh học, sự hiện diện của rễ cây, hoặc sự pha trộn thủy triều làm tăng cường các quá trình oxy hóa.

Từ khóa

#rừng ngập mặn #lưu huỳnh #sắt #trầm tích #oxy hóa #sinh học biển

Tài liệu tham khảo

Alongi DM (1989) The role of soft-bottom benthic communities in tropical mangrove and coral reef ecosystems. Rev. Aquat. Sci. 1: 243–280 Altschuler ZS, Schnepfe MM, Silber CC & Simon FO (1983) Sulfur diagenesis in everglades peat and origin of pyrite in coal. Science 221(4607): 221–227 Andersen FØ & Kristensen E (1988) Oxygen microgradients in the rhizosphere of the mangroveAvicennia marina. Mar. Ecol. Prog. Ser. 44: 201–204 Canfield DE (1989) Reactive iron in marine sediments. Geochim. Cosmochim. Acta 53: 619–632 Canfield DE, Raiswell R & Bottrell S (1992) The reactivity of sedimentary iron minerals toward sulfide. Am. J. Sci. 292: 659–683 Carlson PR, Yarbro LA, Zimmermann CF & Montgomery JR (1983) Pore water chemistry of an overwash mangrove island. Florida Sci. 46(3/4): 233–238 Casagrande DJ, Siefert K, Berschinski C & Sutton N (1977) Sulfur in peat-forming systems of the Okefenokee Swamp and Florida Everglades: origins of sulfur in coal. Geochim. Cosmochim. Acta 41: 161–167 Cline JD (1969) Spectrophotometric determination of hydrogen-sulfide in natural waters. Limnol. Oceanogr. 14: 454–458 Ferdelman TG, Church TM & Luther III GW (1991) Sulfur enrichment of humic substances in a Delaware salt marsh sediment core. Geochim. Cosmochim. Acta 55: 979–988 Fossing H & Jørgensen BB (1989) Measurement of bacterial sulfate reduction in sediments: evaluation of a single-step chromium reduction method. Biogeochem. 8: 205–222 Fossing H, Thamdrup B & Jørgensen BB (1992) Havbundens svovl-, jern- og mangankredsløb i . Danish Environmental Protection Agency. Publication No. 15. Copenhagen Francois R (1987) The influence of humic substances on the geochemistry of iodine in nearshore and hemipelagic marine sediments. Geochim. Cosmochim. Acta 51: 2417–2427 Gardner LR (1990) Similation of the diagenesis of carbon, sulfur, and dissolved oxygen in salt marsh sediments. Ecological Monographs 60: 91–111 Giblin A (1988) Pyrite formation in marshes during early diagenesis. Geomicrobiol. J. 6: 77–97 Giblin AE & Howarth RW (1984) Porewater evidence for a dynamic sedimentary iron cycle in salt marshes. Limnol. Oceanogr. 29(1): 47–63 Hart MGR (1959) Sulphur oxidation in tidal mangrove soils of Sierra Leone. Plant and Soil 11(3): 215–236 Higashi T & Shinagawa A (1985) Soils of a mangrove forest composed ofRhizophora mucronata andBruguiera gymnorrhiza from Ishigaki Island, Japan. Soil Sci. Plant Nutr. 31(3): 427–435 Hines ME, Knolmeyer SL & Tugel JB (1989) Sulfate reduction and other sedimentary biogeochemistry in a northern New England salt marsh. Limnol. Oceanogr. 34(3): 578–590 Hines ME, Bazylinski DA, Tugel JB & Lyons WB (1991) Anaerobic microbial biogeochemistry in sediments from two basins in the Gulf of Maine: evidence for iron and manganese reduction. Estuar. Coast. Shelf. Sci. 32: 313–324 Howarth RW (1984) The ecological significance of sulfur in the energy dynamics of salt marsh and coastal marine sediments. Biogeochem. 1: 5–27 Howarth RW & Giblin A (1983) Sulfate reduction in the salt marshes at Sapelo Island, Georgia. Limnol. Oceanogr. 28(1): 70–82 Howarth RW, Giblin A, Gale J, Peterson BJ & Luther III GW (1983) Reduced sulfur compounds in the pore waters of a New England salt marsh. Environ. Biogeochem. Ecol. Bull. 35: 135–152 Howarth RW & Jørgensen BB (1984) Formation of35S-labelled elemental sulfur and pyrite in coastal marine sediments (Limfjorden and Kysing Fjord, Denmark) during short-term35SO4 2− reduction measurements. Geochim. Cosmochim. Acta 48: 1807–1818 Howarth RW & Merkel S (1984) Pyrite formation and the measurement of sulfate reduction in salt marsh sediments. Limnol. Oceanogr. 29(3): 598–608 Huettel M & Gust G (1992) Impact of bioroughness on interfacial solute exchange in permeable sediments. Mar. Ecol. Prog. Ser. 89: 253–267 Jørgensen BB (1978) A comparison of methods for the quantification of bacterial sulfate reduction in coastal marine sediments. I. Measurements with radiotracer techniques. Geomicrobiol. J. 1: 11–27 Jørgensen BB (1982) Mineralization of organic matter in the sea bed — the role of sulfate reduction. Nature 296: 643–645 Jørgensen BB, Bang M & Blackburn TH (1990) Anaerobic mineralization in marine sediments from the Baltic Sea-North Sea transition. Mar. Ecol. Prog. Ser. 59: 39–54 King GM (1988) Patterns of sulfate reduction and the sulfur cycle in a South Carolina salt marsh. Limnol. Oceanogr. 33(3): 376–390 Kohnen MEL, Sinninghe Damsté JS, Kock-Van Dalen AC, Ten Haven HL, Rullkötter J & De Leeuw JW (1990) Origin and diagenetic transformations of C25 and C30 highly branched isoprenoid sulphur compounds: further evidence for the formation of organically bound sulphur during early diagenesis. Goechim. Cosmochim. Acta 54: 3053–3063 Kristensen E & Andersen FØ (1987) Determination of organic carbon in marine sediments: a comparison of two CHN-analyzer methods. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 109: 15–23 Kristensen E, Holmer M, Bussarawit N (1991) Benthic metabolism and sulfate reduction in a southeast Asian mangrove swamp. Mar. Ecol. Prog. Ser 73: 93–103 Kristensen E, Devol AH, Ahmed SI & Saleem M (1992) Preliminary study of benthic metabolism and sulfate reduction in a mangrove swamp of the Indus Delta, Pakistan. Mar. Ecol. Prog. Ser. 90: 287–297 Kristensen E, King GM, Holmer M, Banta GT, Jensen MH & Hansen K (1994) Sulfate reduction, acetate turnover and carbon metabolism in sediments of the Ao Nam Bor Mangrove, Phuket, Thailand. Mar. Ecol. Prog. Ser. 109(2–3): 245–255 Lord III CJ & Church TM (1983) The geochemistry of salt marshes: sedimentary ion diffusion, sulfate reduction, and pyritisation. Geochim Cosmochim. Acta 47: 1381–1391 Lovley DR & Phillips EJP (1987) Rapid assay for microbially reducible ferric iron in aquatic sediments. Appl. Environ. Microbiol. 53: 2636–2641 Luther III GW, Giblin AE & Varsolona RV (1985) Polarographic analysis of sulfur species in marine porewaters. Limnol. Oceanogr. 30(4): 727–736 Luther III GW, Church TM, Scudlark JR & Cosman M (1986) Inorganic and organic sulfur cycling in salt-marsh pore waters. Science 232: 746–749 Luther III GW, Ferdelman TG, Kostka JE, Tsamakis EJ & Church TM (1991) Temporal and spatial variability of reduced sulfur species (FeS2, S2O3 2−) and porewater parameters in salt marxh sediments. Biogeochem. 14: 57–88 McKee KL, Mendelssohn IA & Hester MW (1988) Reexamination of pore water sulfide concentrations and redox potentials near the aerial roots ofRhizophora mangle andAvicennia germinans. Amer. J. Bot. 75(9): 1352–1359 Mongia AD & Ganeshamurthy AN (1989) Typical differences between the chemical characteristics ofRhizophora andAvicennia mangrove forest soils in South Andamans. Agrochimica. 33(6): 464–470 Moses CO & Herman JS (1991) Pyrite oxidation at circumneutral pH. Geochim. Cosmochim. Acta 55: 471–482 Oenema O (1990) Pyrite accumulation in salt marshes in the Eastern Scheldt, southwest Netherlands. Biogeochem. 9: 75–98 Rickard DT (1975) Kinetics and mechanism of pyrite formation at low temperatures. Am. J. Sci. 275: 636–652 Silva CAR, Lacerda LD & Rezende CE (1990) Metals reservoir in a red mangrove forest. Biotropica 22(4): 339–345 Skyring GW (1987) Sulfate reduction in coastal ecosystems. Geomicrobial. J. 5 (3/4): 295–374 Stookey LL (1970) Ferrozine — a new spectrophotometric reagent for iron. Analyt. Chem. 42: 779–781 Swider KT & Mackin JE (1989) Transformation of sulfur compounds in marsh-flat sediments. Geochim. Cosmochim. Acta 53: 2311–2323 Sørensen J (1982) Reduction of ferric iron in anaerobic, marine sediment and interaction with reduction of nitrate and sulfate. Appl. Environ. Microbiol. 43: 319–324 Thibodeau FR & Nickerson NH (1986) Differential oxidation of mangrove substrate byAvicennia germinans andRhizophora mangle. Amer. J. Bot. 73(4): 512–516 Thode-Andersen S & Jørgensen BB (1989) Sulfate reduction and the formation of35S-labeled FeS, FeS2, and S° in coastal marine sediments. Limnol. Oceanogr. 34(5): 793–806 Urban NR & Brezonik PL (1993) Transformation of sulfur in sediment microcosms. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 50: 1946–1960 Wallmann K, Hennies K, König I, Petersen W & Knauth H-D (1993) New procedure for determining reactive Fe(III) and Fe(II) minerals in sediments. Limnol. Oceanogr. 38(8): 1803–1812