Triển vọng Kiểm soát Sinh học của Pseudomonas fluorescens AS15 Đối với Bệnh Đốm Lá và Đế Lá Băng Dính trên Ngô Dưới Điều Kiện Thực địa trên Đất Thích Hợp

National Academy Science Letters - Tập 42 - Trang 425-428 - 2019
Anjul Rana1, Manvika Sahgal1, Pradeep Kumar2
1Department of Microbiology, College of Basic Sciences and Humanities, G. B. Pant University of Agriculture and Technology, Pantnagar, India
2Department of Plant Pathology, College of Agriculture, G. B. Pant University of Agriculture and Technology, Pantnagar, India

Tóm tắt

Bệnh đốm lá và đế lá băng dính (BL&SB) trên ngô do Rhizoctonia solani gây ra phổ biến ở vùng Terai ẩm ướt của Tây Himalaya và dẫn đến thiệt hại năng suất từ 11–40% trên cây ngô. Pseudomonas fluorescens AS15 là một đối kháng lý tưởng đối với tác nhân gây bệnh BL&SB. Mức độ bệnh giảm xuống khi mật độ của AS15 đạt ngưỡng 5.3 × 105 CFU g−1 trong đất sau 45 ngày kể từ khi tiêm vắc xin. Nó có khả năng chuyển hóa đa dạng và sử dụng nhiều loại carbohydrate và nguồn nitơ từ dịch tiết rễ của cây. Việc áp dụng P. fluorescens AS15 trong đất thuận lợi đã giảm tỷ lệ mắc bệnh và mức độ bệnh, đồng thời tăng năng suất hạt lên 33.4%, 46.8% và 8.4%, tương ứng, trong thử nghiệm ngoài đồng vào tháng 6 năm 2014. Sự giảm tỷ lệ mắc bệnh (18.1%) và mức độ bệnh (35.6%) cùng với việc tăng năng suất (8.1%) cũng được quan sát thấy trong thử nghiệm vào tháng 6 năm 2015 được tiến hành trên cùng một cánh đồng mà không cần áp dụng thêm vi khuẩn đối kháng. Kết quả rõ ràng cho thấy hiệu quả kiểm soát sinh học và sự thành công trong việc định cư của P. fluorescens AS15 trong điều kiện tự nhiên.

Từ khóa

#Pseudomonas fluorescens AS15 #BL&SB #điều kiện thực địa #kiểm soát sinh học #năng suất ngô

Tài liệu tham khảo

Haas D, Blumer C, Keel C (2000) Biocontrol ability of fluorescent pseudomonads genetically dissected: importance of positive feedback regulation. Curr Opin Biotechnol 11:290–297 Keel C, Defago G (1997) Interactions between beneficial soil bacteria and root pathogens: mechanisms and ecological impact. In: Gange AC, Brown VK (eds) multitrophic interactions in terrestrial system. Blackwell, Oxford, pp 27–47 Voisard C, Bull CT, Keel C, Laville J, Maurhofer M, Schnider U, Défago G, Haas D (1994) Biocontrol of root diseases by Pseudomonas fluorescens CHA0: current concepts and experimental approaches. In: O’Gara F, Dowling DN, Boesten B (eds) Molecular ecology of rhizosphere microorganisms. Wiley, Weinheim, pp 69–89 Kiely PD, Haynes JM, Higgins CH, Franks A, Mark GL, Morrissey JP, O’Gara F (2006) Exploiting new systems-based strategies to elucidate plant-bacterial interactions in the rhizosphere. Microb Ecol 51(257–111):266 Garland JL, Mills AL (1991) Classification and characterization of heterotrophic microbial communities on the basis of patterns of community-level sole-carbon-source utilization. Appl Environ Microbiol 57:2351–2359 Ahuja SC, Payak MM (1978) A field inoculation technique for evaluating maize germplasm to banded leaf & sheath blight. Indian Phytopath 31:517–520 Lal S, Butchaiah K (1978) A field inoculation technique for evaluating maize germplasm to Rhizoctonia solani. Indian Phytopathol 31:141–152 Thomashow LS, Weller DM (1996) Current concepts in the use of introduced bacteria for biological disease control: mechanisms and antifungal metabolites. In: Stacey G, Keen NT (eds) Plant-microbe interactions, vol 1. Chapman and Hall, New York, pp 187–235 Weller DM (1988) Biological control of soilborne plant pathogens in the rhizosphere with bacteria. Annu Rev Phytopathol 26:379–407 Goddard VJ, Bailey MJ, Darrah P, Lilley AK, Thompson IP (2001) Monitoring temporal and spatial variation in rhizosphere bacterial population diversity: a community approach for the improved selection of rhizosphere competent bacteria. Plant Soil 232:181–193 Lugtenberg BJJ, Bloemberg GV (2004) Life in rhizosphere. In: Ramos J-L (ed) Pseudomonas, vol 1. Kluwer Academic, New York, pp 403–430 Penrose DM, Glick BR (2003) Methods for isolating and characterizing ACC deaminase-containing plant growth-promoting rhizobacteria. Physiol Plant 118:10–15 Hass D, Defago G (2005) Biological control of soil borne pathogens by fluorescent Pseudomonads. Nat Rev Microbiol 3:307–319 Landa BB, Mavrodi DM, Thomashow LS, Weller DM (2003) Interactions between strains of 2,4-diacetylphloroglucinol-producing Pseudomonas fluorescens in the rhizosphere of wheat. Phytopathology 93:982–994 Vidyasekaran P, Muthamilan M (1995) Development of formulation of Pseudomonas fluorescens for control of chickpea wilt. Plant Dis 79:782–786 Dandurand LM, Menge JA (1994) Influence of Fusarium solani on chemotaxis of zoospores of Phytophthora parasitica and Phytophthora citrophthora and on distribution of 14C in citrus tissues and root exudates. Soil Biol Biochem 26:75–79 Saxena SC (2002) Bio-intensive integrated disease management of banded leaf and sheath blight of maize. In: Proceedings of 8th Asian regional workshop, Bangkok, Thailand, August 5–8, pp 392–401