Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Hoạt tính sinh học của các hợp chất flavonoid từ Poncirus trifoliata L. (Họ: Rutaceae) đối với véc-tơ sốt xuất huyết, Aedes aegypti L. (Diptera: Culicidae)
Tóm tắt
Hoạt tính sinh học của bốn hợp chất flavonoid, gồm poncirin, rhoifolin, naringin và marmesin, từ Poncirus trifoliata đã được nghiên cứu đối với Aedes aegypti. Các thử nghiệm diệt larva đã được tiến hành để đánh giá giá trị LC50 và LC90 sau 24 giờ của các hợp chất flavonoid. Giá trị nồng độ gây chết (LC50 và LC90) dao động từ 0.082 đến 0.122 mg/l và 0.152 đến 0.223 mg/l, tương ứng. Kết quả của thử nghiệm diệt trứng cho thấy hoạt tính diệt trứng của các hợp chất flavonoid bị ảnh hưởng bởi nồng độ của chúng và độ tuổi của trứng. Kết quả của thử nghiệm đẻ trứng cho thấy bốn hợp chất flavonoid đã thể hiện hoạt tính ngăn cản đẻ trứng đối với muỗi cái mang thai. Số lượng trứng giảm khi nồng độ các hợp chất flavonoid tăng. Một thử nghiệm trong phòng thí nghiệm đã được tiến hành để đánh giá thời gian bảo vệ và tỷ lệ kháng cự của bốn hợp chất được pha loãng trong ethanol (10 mg/l). Hợp chất rhoifolin cung cấp mức bảo vệ tối đa là 365.0 ± 12.0 phút và cũng có tỷ lệ kháng cự 100.0% ± 0.0 chống lại vết cắn của muỗi, tiếp theo là poncirin, marmesin và naringin. Không có tình nguyện viên nào trong số 25 người của cả hai giới, khi tiếp xúc với 10% (w/v) các hợp chất flavonoid (thử nghiệm đắp 4 giờ), cho thấy phản ứng kích ứng da dương tính. Tất cả các hợp chất đã thử nghiệm đều chứng tỏ có hoạt tính khác nhau đối với các giai đoạn sống khác nhau của A. aegypti. Do đó, các hợp chất flavonoid từ P. trifoliata có thể là ứng viên tiềm năng để sử dụng trong việc phát triển các sản phẩm diệt muỗi thương mại, có thể thay thế cho các hóa chất tổng hợp thông thường, đặc biệt trong các ứng dụng kiểm soát côn trùng tích hợp.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Amer A, Mehlhorn H (2006) Repellency effect of forty-one essential oils against Aedes, Anopheles and Culex mosquitoes. Parasitol Res 99:478–490
Basketter DA, Chamberlain M, Griffiths HA, Rowson M, Whittle E, York M (1997) The classification of skin irritants by human patch test. Food Chem Toxicol 35:845–852
Cheng SS, Liu JY, Tsai KH, Chen WJ, Chang ST (2004) Chemical composition and mosquito larvicidal activity of essential oils from leaves of different Cinnamomum osmophloeum provenances. J Agric Food Chem 52:4395–4400
Curtis CF, Lines JD, Baolin L, Renz A (1989) Natural and synthetic repellents. In: Curtis CF (ed) Appropriate technology in vector control. CRC, New York, pp 75–92
Davis EE, Bowen FM (1994) Sensory physiological basis for attraction in mosquitoes. J Am Mosq Control Assoc 10:316–325
Finney DJ (1971) Probit analysis: a statistical treatment of the sigmoid response curves, 3rd edn. Cambridge University Press, London, p 333
Fradin MS, Day JF (2002) Comparative efficacy of insect repellents against mosquito bites. N Engl J Med 347:13–18
Govindarajan M, Jebanesan A, Pushpanathan T (2008) Larvicidal and ovicidal activity of Cassia fistula Linn. leaf extract against filarial and malarial vector mosquitoes. Parasitol Res 102:289–292
Murugan K, Murugan P, Noortheen A (2007) Larvicidal and repellent potential of Albizzia amara Boivin and Ocimum basilicum Linn against dengue vector, Aedes aegypti (Insecta : Diptera : Culicidae). Biores Technol 98:198–201
Rajkumar S, Jebanesan A (2004a) Mosquitocidal activities of octacosane from Moschosma polystachyum Linn (lamiaceae). J Ethnopharmacol 90:87–89
Rajkumar S, Jebanesan A (2004b) Ovicidal activity of Solanum trilobatum Linn (Solanaceae) leaf extract against Culex quinquefasciatus Say and Culex tritaeniorhynchus Gile (Diptera:Culicidae). Inter J Tropi Insec Sci 24(4):340–342
Rajkumar S, Jebanesan A (2008) Bioactivity of Chenopodium ambrosioides (Family: Chenopodiaceae) against the filariasis vector Culex quinquefasciatus Say (Diptera: Culicidae). Can J Pure Appl Sci 2(1):129–132
Rastogi RP, Mehrotra BN (1995) Compendium of Indian medicinal plants. Drug Research Perspectives, A CDRI Series
Scott TW, Chow E, Strickman D, Kittayapong P, Writz RA, Lorenz LH, Edman JD (1993) Blood feeding pattern of Aedes aegypti (Diptera : Culicidae) collect in a rural Thai village. J Med Entomol 30:922–927
Shaalan EAS, Canyon D, Younes MWF, What HA, Mansour AH (2005) A review of botanical phytochemicals with mosquitocidal potential. J Env Int 31:1149–1166
Su T, Mulla MR (1999) Oviposition bioassay responses of Culex tarsalis and Culex quinquefasciatus to neem products containing azadirachtin. Entomol Exp Appl 91:337–345
Su T, Mulla MS (1998) Ovicidal activity of neem products (Azadirachtin) against Culex tarsalis and Culex quinquefasciatus (Diptera: Culicidae). J Am Mosq Control Assoc 14(2):204–209
Tawatsin A, Wratten SD, Scott RR, Thavara V, Techadamrongsin Y (2001) Repellency of volatile oils from plants against three mosquito vectors. J Vector Ecol 26:77–82
Usta J, Kreydiyyeh S, Bakajian K, Nakkash-Chmaisse H (2002) In vitro effect of eugenol and cinnamaldehyde on membrane potential and respiratory complexes in isolated rat liver mitochondria. Food Chem Toxicol 40:935–940
Wandscheer CB, Duque JE, Silva MAN, Fukuyama Y, Wohlke JL, Adelmann J, Fontana JD (2004) Larvicidal action of ethanolic extracts from fruit endocarps of Melia azedarach and Azadirachta indica against the dengue mosquito Aedes aegypti. Toxicon 44:829–835
WHO (2005) Guidelines for laboratory and field testing of mosquito larvicides. WHO/CDS/WHOPES/GCDPP/2005.13
Xue RD, Barnard DR, Ali A (2001) Laboratory and field evaluation of insect repellents as oviposition deterrents against the mosquito Aedes albopictus. Med Vet Entomol 15:126–131