Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Germination không lập thể của Vanda trang trí: sự nảy mầm và phát triển in vitro của ba giống lai
Tóm tắt
Phần lớn các loài lan nở hoa trồng trong chậu được bán tại Hoa Kỳ là các giống lai Phalaenopsis. Tuy nhiên, nhu cầu về các chi khác sẽ chắc chắn tăng lên khi người tiêu dùng quen với việc trồng lan trong nhà. Mục tiêu của nghiên cứu này là so sánh quá trình nảy mầm và phát triển của ba giống lai Vanda, một chi có tiềm năng thị trường lớn. Cụ thể, chúng tôi đã đánh giá xem các giống lai với các dòng dõi khác nhau có yêu cầu văn hóa khác nhau một cách đáng kể hay không. Sau 12 tuần nuôi cấy, đã phát hiện sự khác biệt trong quá trình nảy mầm và phát triển giữa ba giống lai được kiểm tra. Nói chung, hạt giống của Vanda Motes Primrose × Ascocenda Tavivat (giống lai S014) cho thấy tỷ lệ nảy mầm cao hơn (82,0–95,3%) so với hạt giống của V. Paki × (V. tessellata × V. cristata; giống lai S005) hoặc (V. Joan Warne × V. Paki) × V. Loke (giống lai S013) khi được nuôi cấy trên Knudson C, Murashige & Skoog nửa cường độ hoặc PhytoTechnology Orchid Seed Sowing Medium dưới ba chế độ chiếu sáng (8/16 h, 12/12 h, 16/12 h; sáng/tối). Protocorm của S005 và S013 không phát triển vượt quá Giai đoạn 3 (lá đầu tiên hiện có) dưới bất kỳ điều kiện nào được thử nghiệm, trong khi hạt giống S014 nuôi cấy trên PhytoTechnology Orchid Seed Sowing Medium đã phát triển đến Giai đoạn 4 (một lá và ≥1 rễ hiện có; 0,5–0,6%) và 5 (hai lá và ≥1 rễ hiện có; 2,7–5,6%) dưới tất cả các chế độ chiếu sáng thử nghiệm. Tất cả các giống lai đều có sự phát triển sớm tương tự (Giai đoạn 0–3). Sự phát triển hạn chế của các Giống lai S005 và S013 có thể do điều kiện nuôi cấy không đủ hoặc sức sống thấp của các giống lai này. Dữ liệu này cho thấy rằng sản xuất thương mại của một số giống lai Vanda có thể bị giới hạn bởi sự phát triển và tăng trưởng chậm. Cần tiến hành các nỗ lực để lai tạo các giống lai có khả năng nảy mầm và phát triển nhanh nhằm cải thiện tiềm năng thị trường đại trà của các giống lai Vanda.
Từ khóa
#Vanda #nảy mầm #lai tạo #phát triển in vitro #tiềm năng thị trườngTài liệu tham khảo
Anderson NO, Ascher PD, Widmer RE (1992) Inbreeding depression in garden and glasshouse chrysanthemums: germination and survivorship. Euphytica 62:155–169
Bhaskar J, Rajeevan PK (1996) Embryo culture of Vanda ‘John Club’. S Indian Hort 44:36–38
Blanchard MG, Runkle ES (2006) Temperature during the day, but not during the night, controls flowering of Phalaenopsis orchids. J Exp Bot 15:4043–4049
Curtis JT (1947) Studies on the nitrogen nutrition of orchid embryos I. Complex nitrogen sources. Am Orchid Soc Bull 16:654–660
Curtis JT, Spoerl E (1948) Studies on the nitrogen nutrition of orchid embryos II. Comparative utilization of nitrate and ammonium nitrogen. Am Orchid Soc Bull 17:111–114
Devi CG, Damayanti M, Sharma GJ (1998) Aseptic embryo culture of Vanda coerulea Griff. J Orchid Soc India 12:83–87
Jerardo A (2006) Floriculture and nursery crop outlook. USDA Document FLO-05
Kauth PJ, Vendrame WA, Kane ME (2006) In vitro seed culture and seedling development of Calopogon tuberosus. Plant Cell Tiss Org Cult 85:91–102
Kishor R, Sha Valli Khan PS, Sharma GJ (2006) Hybridization and in vitro culture of an orchid hybrid Ascocenda ‘Kangla’. Sci Hort 108:66–73
Knudson L (1946) A new nutrient solution for the germination of orchid seed. Am Orchid Soc Bull 15:214–217
Lakon G (1949) The topographical tetrazolium method for determining the germination capacity of seeds. Plant Phys 24:389–394
Lauzer D, St-Arnold M, Barabé D (1994) Tetrazolium staining and in vitro germination of mature seeds of Cypripedium acaule (Orchidaceae). Lindleyana 9:197–204
Li GS, Duan J, Chen ZL, Zeng SJ, Jiang YM, Joyce DC (2006) KClO3 application affects Phalaenopsis orchid flowering. Sci Hort 110:362–365
Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15:473–497
Nash N (2003) Phalaenopsis primer: a beginner’s guide to growing moth orchids. Orchids 72:906–913
Pico FX, Mix C, ouborg NJ, Van Groenendael JM (2007) Multigenerational inbreeding in Succisa pratensis: effects on fitness components. Biol Plant 51:185–188
Raghavan V, Torrey JG (1964) Inorganic nitrogen nutrition of the seedlings of the orchid, Cattleya. Am J Bot 51:264–274
Ricardo ML Jr, Alvarez MR (1971) Ultrastructural changes associated with utilization of metabolite reserves and trichome differentiation in the protocorm of Vanda. Am J Bot 58:229–238
Roy J, Banerjee N (2002) Optimization of in vitro seed germination, protocorm growth and seedling proliferation of Vanda tessellata (Roxb.) Hook Ex G Don. Phytomorph 52:167–178
Sakai WS (1973) Simple methods for differential staining of paraffin embedded plant material using toluidine blue O. Stain Tech 48:247–249
Shoushtari B, Heydari R, Johnson G, Arditti J (1994) Germination and viability staining of orchid seeds following prolonged storage. Lindleyana 9:77–84
Stewart SL, Zettler LW (2002) Symbiotic germination of three semi-aquatic rein orchids (Habenaria repens, H. quinquiseta, H. macroceratitis) from Florida. Aquat Bot 72:25–35
Su WR, Chen WS, Koshioka M, Mander LN, Hung LS, Chen WH, Fu YM, Huang KL (2001) Changes in gibberellin levels in the flowering shoot of Phalaenopsis hybrida under high temperature conditions when flower development is blocked. Plant Physiol Biochem 39:45–50
Swamy BGL (1942) Morphological studies in three species of Vanda. Curr Sci 11:285–286
Vacin EF, Went FW (1949) Some pH changes in nutrient solutions. Bot Gaz 110:605–613
Vujanovic V, St-Arnold M, Barabé D, Thibeault G (2000) Viability testing of orchid seed and the promotion of colouration and germination. Ann Bot 86:79–86
Wang T, Hagqvist R, Tigerstedt MA (1999) Inbreeding depression in three generations of selfed families of silver birch (Betula pendula). Can J For Tes 29:662–668
Wang WY, Chen WS, Chen WH, Hung LS, Chang PS (2002) Influence of abscisic acid on flowering in Phalaenopsis hybrida. Plant Physiol Biochem 40:97–100