Đánh giá tác động của các nồng độ khác nhau của axit etylenediaminetetraacetic (EDTA) lên các chỉ số hồng cầu của bò White Fulani và dê lùn Tây Phi ở Nigeria

Tropical Animal Health and Production - Tập 43 - Trang 1015-1018 - 2011
Ademola A. Oyagbemi1, Odunayo I. Azeez1, Kehinde O. Soetan1, Adewale T. Ajala1, Funsho O. Olayemi1, Mathew O. Oyeyemi2
1Department of Veterinary Physiology, Biochemistry and Pharmacology, Faculty of Veterinary Medicine, University of Ibadan, Ibadan, Nigeria
2Department of Veterinary Surgery and Reproduction, Faculty of Veterinary Medicine, University of Ibadan, Ibadan, Nigeria

Tóm tắt

Mục tiêu của nghiên cứu là đánh giá ảnh hưởng của các nồng độ khác nhau của axit etylenediaminetetraacetic (EDTA) trên mẫu máu từ giống bò White Fulani và dê lùn Tây Phi ở Nigeria. Kích thước mẫu là 20 con cho cả hai loài. Nhiều nồng độ EDTA (2, 4, 8 và 16 mg/ml) đã được sử dụng. Thể tích tế bào đóng gói (PCV), số lượng hồng cầu (RBC) và nồng độ hemoglobin (Hb) của mẫu máu được thu thập từ giống bò White Fulani và dê lùn Tây Phi vào các bình chứa 16 mg/ml EDTA thấp hơn đáng kể (P < 0.05) so với các mẫu thu thập từ cùng một động vật trong bình chứa 2 mg/ml (đối chứng). Tương tự, các giá trị PCV, RBC và Hb của dê lùn Tây Phi trong các bình chứa 8 mg/ml EDTA cũng thấp hơn đáng kể so với các mẫu trong nhóm đối chứng (2 mg/ml). Nghiên cứu này cho thấy nồng độ EDTA cao như một chất chống đông có thể dẫn đến chỉ số hồng cầu giả, đặc biệt là PCV. Do đó, trong việc thu thập mẫu máu để đánh giá các tham số huyết học, tỷ lệ thể tích máu/chất chống đông cần phải được tuân thủ nghiêm ngặt để tránh sai số trong các tham số được đánh giá ở bò và dê. Tổng hợp lại, có xu hướng xảy ra thiếu máu huyết tán trong mẫu máu được lấy ở nồng độ cao của các chất chống đông ở dê lùn Tây Phi nhiều hơn so với giống bò White Fulani.

Từ khóa

#EDTA #bovine #caprine #hematological parameters #anticoagulant #erythrocytic indices #Nigeria

Tài liệu tham khảo

Banfi, D., Salvage, G.l. and Lippi, G., 2007. The role of ethylenediamine tetracetic acid (EDTA) as in vitro anticoagulant for diagnostic purposes, Clinical Chemistry and Laboratory Medicine, 45, 565–576 Burns, E.R. and Yoshikawa, N., 2002. Hemolysis in serum samples drawn by emergency department personnel versus laboratory phlebotomists, Laboratory Medicine, 33, 378–380 Christopher, S., Hanley, S.J., Hernandez-Divers, S.J., Shay, B.M.T. and Kenneth, S. L., 2004. Comparison of the effect of dipotassium ethylenediaminetetraacetic acid and lithium heparin on hematologic values in the green iguana (Iguana iguana), Journal of Zoology and Wildlife Medicine, 35, 328–332 Daramola, J.O., Adeloye, A.A., Fatoba, T.A. and Soladoye, A.O., 2005. Haematological and biochemical parameters of West African Dwarf goats, African Journal of Biomedical Research, 3, 13–19 Dugan, L., Leech, L., Speroni, K.G. and Corriher, J., 2005. Factors affecting hemolysis rates in blood samples drawn from newly placed IV sites in the emergency department, Journal of Emergency Nursing, 31, 338–345 Egbe-Nwiyi, T.N., Nwaosu, S.C. and Salami, H.A., 2000. Haematological values of apparently healthy sheep and goats as influenced by age and sex in arid zone of Nigeria, African Journal of Biomedical Research, 3, 109–115 Goldenfarb, P.B., Bowyer, F.P., Hall, T. and Brosious, E., 1971. Reproducibility in the hematology laboratory: the microhematocrit determination, American Journal of Clinical Pathology, 52, 35–36 Grant, M.S., 2003. The effect of blood drawing techniques and equipment on the hemolysis of laboratory blood samples, Journal of Emergency Nursing, 29, 116–21 JAIN, N.C., 1986. Schalm Veterinary Haematology (4th edition) Lea and Febiger, Philadelphia, U.S.A, pp 1221 Joshi, S., Vaitkute, R., Jeffery, J. and Ayling, R.M., 2007. Haemolysis in neonatal blood samples: a survey of practice, Annals of Clinical Biochemistry, 44, 178–181 Katopodis, K.P., Koliousi, E., Gouva, C., Balafa, O., Bairaktari, E., Ikonomou, M., Elisaf, M.S. and Siamopoulos, K.C., 2007. Acute effect of heparin on lipid parameters in patients on renal replacement therapy, American Society for Artificial Internal Organs (ASAIO) Journal, 53, 46–46 Keeling, D., Davidson, S. and Watson, H., 2006. Haemostasis and Thrombosis. Task Force of the British Committee for Standards in Haematology: The management of heparin-induced thrombocytopenia, British Journal of Haematology, 135, 269 Koplitz, S.L., Scott, M.A. and Cohn, L.A., 2001. Effects of platelet clumping on platelet concentrations measured by use of impedance or buffy coat analysis in dogs, Journal of American Veterinary Medical Association, 219, 1552–1556 Ledford-Kraemer, M.R., 2008. Laboratory testing for lupus anticoagulants: pre-examination variables, mixing studies, and diagnostic criteria, Seminars in Thrombosis and Hemostasis, 34, 380–388 Menajovsky, L.B., 2005. Heparin-induced thrombocytopenia: clinical manifestations and management strategies, American Journal of Medicine, 118, 21S-30S Mohri, M., Shakeri, H. and Lotfollah Zadeh, S., 2007. Effects of common anticoagulants (heparin, citrate and EDTA) on routine plasma biochemistry of cattle, Comparative Clinical Pathology, 16, 207–209 Mohri, A. and Rezapoor, H., 2009. Effects of heparin, citrate, and EDTA on plasma Biochemistry of sheep: Comparison with serum, Research in Veterinary Science, 86, 111–114 Norman, E.J., Barron, R.C.J., Nash, A.S. and Clampitt, R.B., 2001. Prevalence of low automated platelet counts in cats: comparison with prevalence of thrombocytopenia based on blood smear estimation, Veterinary Clinical Pathology, 30, 137–140 Olsen, A.K., Bladbjerg, E.M., Jensen, A.I. and Hansen, A.K., 2001. Effect of pre-analytical handling on haematological variables in mini-pigs, Laboratory Animal, 35, 147–52 Public Health Service 1996. Public health service policy on humane care and the use of laboratory animals. US Department of Health and Humane services, Washington, DC. Human Health Research Act, pp 99–158 Puyo, C.A., 2001. Thrombocytopenia, International Anesthesiology Clinics, 39, 17–34 Shimasaki, A.K., Fujita, K., Fujio, S. and Sakurabayashi, I., 2000. Pseudoleukocytosis without pseudothrombocytopenia induced by interaction of EDTA and IgG2- M protein, Clinica Chimica Acta, 299, 119–128 Spiess, B.D., 2004. Coagulation monitoring in the perioperative period, International Anesthesiology Clinics, 42, 55–71 Spinler, S.A. and Dager, W., 2003. Overview of heparin-induced thrombocytopenia, American Journal of Health System Pharmacology, 60, S5-11 Warkentin, T.E., Roberts, R.S., Hirsh, J. and Kelton, J.G., 2004. An improved definition of immune heparin-induced thrombocytopenia in postoperative orthopedic patients, Archives of International Medicine, 163, 2518–2524 Wilkerson, M.J. and Shuman, W., 2001. Alteration in normal canine platelets during storage in EDTA anticoagulated blood, Veterinary Clinical Pathology, 30, 107–113