Ứng dụng kết hợp các tham số lý hóa của dịch não tủy trong việc phát hiện nhiễm trùng nội sọ ở bệnh nhân phẫu thuật thần kinh

BMC Neurology - Tập 20 - Trang 1-7 - 2020
Tiantian Zhai1,2, Zhong lian Fu3, Yan bing Qiu2, Qiang Chen1, Dong Luo1, Kaisen Chen1
1Clinical Laboratory, the First Affiliated Hospital of Nanchang University, Nanchang, China
2School of Public health of Nanchang University, Nanchang, China
3Department of Preschool education and special education, Yuzhang Normal College, Nanchang, China

Tóm tắt

Kiểm tra định kỳ dịch não tủy (CSF), chẳng hạn như nồng độ glucose, ion clorua, protein và bạch cầu, cũng như màu sắc, độ đục và cục đông, là những chỉ số quan trọng cho nhiễm trùng nội sọ. Tuy nhiên, hiện chưa có mô hình nào để dự đoán nhiễm trùng nội sọ với các tham số này. Chúng tôi đã thu thập dữ liệu từ 221 ca có cấy dịch não tủy dương tính và 50 ca có cấy dịch não tủy âm tính từ ngày 1 tháng 1 năm 2016 đến ngày 31 tháng 12 năm 2018 tại Bệnh viện Địa Trung Hải thuộc Đại học Nanchang, Trung Quốc. Phần mềm SPSS17.0 đã được sử dụng để thiết lập mô hình bằng cách áp dụng bảy chỉ số đã mô tả, và P < 0.05 được coi là có ý nghĩa thống kê. Trong khi đó, 40 ca có cấy dương tính và 10 ca có cấy âm tính đã được chọn để xác minh độ nhạy và độ đặc hiệu của mô hình. Kết quả cho thấy mỗi tham số đều có ý nghĩa trong việc thiết lập mô hình (P < 0.05). Để trích xuất bảy tham số trên, mô hình giải thích C đã được thiết lập, và C = 0.952–0.183 × giá trị glucose (mmol/L) - 0.024 × giá trị ion clorua (mmol/L)- 0.000122 × giá trị protein (mg/L) - 0.0000859 × số lượng bạch cầu mỗi microlit (× 106/L) + 1.354 × mã số màu + 0.236 × mã số độ đục + 0.691 × mã số cục đông. Thêm vào đó, độ nhạy và độ đặc hiệu chẩn đoán của mô hình lần lượt đạt 85.0 và 100%. Việc kết hợp ứng dụng của bảy tham số lý hóa của dịch não tủy có thể có giá trị lớn trong chẩn đoán nhiễm trùng nội sọ cho bệnh nhân trưởng thành.

Từ khóa

#dịch não tủy #nhiễm trùng nội sọ #chỉ số hóa học #độ nhạy #độ đặc hiệu

Tài liệu tham khảo

Shi ZH, Xu M, Wang YZ, et al. Post-craniotomy intracranial infection in patients with brain tumors: a retrospective analysis of 5723 consecutive patients. Br J Nurosurg. 2017;31(1):5–9. Yao J, Liu D. Logistic regression analysis of risk factors for intracranial infection after multiple traumatic craniotomy and preventive measures. J Craniofac Surg. 2019;30(7):1946–8. Maskin LP, Capparelli F, Mora A, et al. Cerebrospinal fluid lactate in post-neurosurgical bacterial meningitis diagnosis. Clin Neurol Neurosurg. 2013;115(9):1820–5. Yu Y, Li HJ. Diagnostic and prognostic value of procalcitonin for early intracranial infection after craniotomy. Braz J Med Biol Res. 2017;50(5):e6021. Gautam-Goyal P, Malhotra P, Epstein M, et al. Can Procalcitonin be used as a reliable marker for infectious fever in patients with intracranial hemorrhage? World Neurosurg. 2018;116:e968–74. Montes K, Jenkinson H, Habib OB, et al. Corrected white blood cell count, cell index, and validation of a clinical model for the diagnosis of health care-associated ventriculitis and meningitis in adults with intracranial hemorrhage. Clin Neurol Neurosurg. 2019;178:36–41. Clinical and Laboratory Standards Institute, 2016. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. CLSI document M100-S26. Wayne, PA, pp. 52–59. Owusu M, Nguah SB, Boaitey YA, et al. Aetiological agents of cerebrospinal meningitis: a retrospective study from a teaching hospital in Ghana. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2012;11:28. Chang JB, Wu H, Wang H, et al. Prevalence and antibiotic resistance of bacteria isolated from the cerebrospinal fluid of neurosurgical patients at Peking union medical college hospital. Antimicrob Resist Infect Control. 2018;7:41. Seng R, Leungtongkam U, Thummeepak R, et al. High prevalence of methicillin-resistant coagulase-negative staphylococci isolated from a university environment in Thailand. Int Microbiol. 2017;20(2):65–73. Al-Bakri AG, Al-Hadithi H, Kasabri V, et al. The epidemiology and molecular characterization of methicillin-resistant staphylococci sampled from a healthy Jordanian population. Epidemiol Infect. 2013;141(11):2384–91. Busl KM. Nosocomial infections in the Neurointensive care unit. Neurosurg Clin N Am. 2018;29(2):299–314. Yıldırmak T, Gedik H, Simşek F, et al. Community-acquired intracranial suppurative infections: a 15-year report. Surg Neurol Int. 2014;5:142. Lees JA, Kremer PHC, Manso AS, et al. Large scale genomic analysis shows no evidence for pathogen adaptation between the blood and cerebrospinal fluid niches during bacterial meningitis. Microb Genom. 2017;3(1):e000103. Meng Y, Voisin MR, Suppah S, et al. Risk factors for surgical site infection after intractrnial electroencephalography monitoring for epilepsy in the pediatric population. J Neurosurg Pediatr. 2018;22(1):31–6. Wallin A, Kapaki E, Boban M, et al. Biochemical markers in vascular cognitive impairment associated with subcortical small vessel disease - a consensus report. BMC Neurol. 2017;17(1):102. Chen H, Sun J, Wang JC. Clinical outcomes of digital three-dimensional hydroxyapatite in repairing Calvarial defects. J Craniofac Surg. 2018;29(3):618–21. Gotlib T. Endoscopic surgery of the frontoethmoidal osteomas. Braz J Otorhinolaryngol. 2018;84(2):260–1. Zhu H, Liu X, Wang Z. Infection rate in 1033 elective neurosurgical procedures at a university hospital in South China. J Neurol Surg A Cent Eur Neurosurg. 2017;78(5):467–71.