Tính chất chống oxy hóa của bột tảo Spirulina toàn diện (Arthrospira platensis) trong dầu ô liu dưới điều kiện bảo quản tăng tốc

Springer Science and Business Media LLC - Tập 29 - Trang 2971-2978 - 2017
Nasireh Alavi1, Mohammad-Taghi Golmakani1
1Department of Food Science and Technology, School of Agriculture, Shiraz University, Shiraz, Iran

Tóm tắt

Hoạt động chống oxy hóa của bột tảo Spirulina toàn diện (Arthrospira platensis) đã được đánh giá trong dầu ô liu với các nồng độ khác nhau là 0.5, 1.0 và 1.5% trong quá trình bảo quản tăng tốc. Ngoài ra, hoạt động chống oxy hóa của Spirulina còn được so sánh với α-tocopherol và butylated hydroxytoluene (BHT). Các mẫu Spirulina thể hiện sản phẩm oxy hóa ban đầu, thứ cấp và tổng cộng thấp hơn so với mẫu đối chứng. So với mẫu đối chứng (16.94 ngày), thời gian cảm ứng của các nồng độ khác nhau của mẫu Spirulina dao động từ 19.09 đến 20.71 ngày, cho thấy rằng các nồng độ khác nhau của Spirulina có thể cải thiện tính ổn định oxy hóa của dầu ô liu. Hơn nữa, các nồng độ khác nhau của Spirulina cải thiện tính ổn định của dầu ô liu lên đến giữa 12.69 và 22.24%. Mẫu Spirulina có thể hiệu quả trong hoạt động chống oxy hóa nhờ vào những tác dụng bảo vệ của các thành phần hoạt tính sinh học được giải phóng dần từ tảo Spirulina vào dầu ô liu trong quá trình bảo quản. Trong số các chất chống oxy hóa được đánh giá trong nghiên cứu này, BHT cho thấy hoạt tính chống oxy hóa cao nhất, trong khi α-tocopherol có hiệu suất kém hơn so với Spirulina. Kết luận, Spirulina có tiềm năng chống oxy hóa đáng kể và do đó có thể được sử dụng trong dầu ô liu.

Từ khóa

#Spirulina #chống oxy hóa #dầu ô liu #Arthrospira platensis #BHT #α-tocopherol

Tài liệu tham khảo

Antolovich M, Prenzler PD, Patsalides E, McDonald S, Robards K (2002) Methods for testing antioxidant activity. Analyst 127:183–198 AOAC (1997) Official methods of analysis of AOAC International. Association of Official Analytical Chemists, Washington DC AOCS (1998) Official methods and recommended practices of the American Oil Chemists’ Society. AOCS Press, Illinois Apak R, Güçlü K, Özyürek M, Karademir SE (2004) Novel total antioxidant capacity index for dietary polyphenols and vitamins C and E, using their cupric ion reducing capability in the presence of neocuproine: CUPRAC method. J Agric Food Chem 52:7970–7981 Athukorala Y, Lee K-W, Shahidi F, Heu MS, Kim H-T, Lee J-S, Jeon Y-J (2003) Antioxidant efficacy of extracts of an edible red alga (Grateloupia filicina) in linoleic acid and fish oil. J Food Lipids 10:313–327 Barjol J-L (2013) Introduction. In: Aparicio R, Harwood J (eds) Handbook of olive oil: analysis and properties. Springer, NY, pp 1–17 Chen J, Wang Y, Benemann JR, Zhang X, Hu H, Qin S (2016) Microalgal industry in China: challenges and prospects. J Appl Phycol 28:715–725 Criado M-N, Romero M-P, Casanovas M, Motilva M-J (2008) Pigment profile and colour of monovarietal virgin olive oils from Arbequina cultivar obtained during two consecutive crop seasons. Food Chem 110:873–880 Dere S, Güneş T, Sivaci R (1998) Spectrophotometric determination of chlorophyll-a, b and total carotenoid contents of some algae species using different solvents. Turk J Bot 22:13–18 Frankel EN (2010) Chemistry of extra virgin olive oil: adulteration, oxidative stability, and antioxidants. J Agric Food Chem 58:5991–6006 Golmakani M-T, Rezaei K, Mazidi S, Razavi SH (2012a) γ-Linolenic acid production by Arthrospira platensis using different carbon sources. Eur J Lipid Sci Technol 114:306–314 Golmakani M-T, Rezaei K, Mazidi S, Razavi SH (2012b) Effect of alternative C2 carbon sources on the growth, lipid, and γ-linolenic acid production of Spirulina (Arthrospira platensis). Food Sci Biotech 21:355–363 Habibi M, Golmakani M-T, Farahnaky A, Mesbahi G, Majzoobi M (2016) NaOH-free debittering of table olives using power ultrasound. Food Chem 192:775–781 Ismaiel MMS, El-Ayouty YM, Piercey-Normore MD (2014) Antioxidants characterization in selected cyanobacteria. Ann Microbiol 64:1223–1230 Kim E-K, Choi G-G, Kim H-S, Ahn C-Y, Oh H-M (2012) Increasing γ-linolenic acid content in Spirulina platensis using fatty acid supplement and light–dark illumination. J Appl Phycol 24:743–750 Kindleysides S, Quek S-Y, Miller MR (2012) Inhibition of fish oil oxidation and the radical scavenging activity of New Zealand seaweed extracts. Food Chem 133:1624–1631 Kumar J, Parihar P, Singh R, Singh VP, Prasad SM (2015) UV-B induces biomass production and nonenzymatic antioxidant compounds in three cyanobacteria. J Appl Phycol 28:131–140 Lima Araújo KG, Domingues JR, Sabaa Srur AUO, da Silva AJR (2006) Production of antioxidants by Anabaena PCC 7119 and evaluation of their protecting activity against oxidation of soybean oil. Food Biotechnol 20:65–77 Limón P, Malheiro R, Casal S, Acién-Fernández FG, Fernández-Sevilla JM, Rodrigues N, Cruz R, Bermejo R, Pereira JA (2015) Improvement of stability and carotenoids fraction of virgin olive oils by addition of microalgae Scenedesmus almeriensis extracts. Food Chem 175:203–211 Mendiola JA, Jaime L, Santoyo S, Reglero G, Cifuentes A, Ibañez E, Señoráns FJ (2007) Screening of functional compounds in supercritical fluid extracts from Spirulina platensis. Food Chem 102:1357–1367 Minguez-Mosquera MI, Rejano-Navarro L, Gandul-Rojas B, SanchezGomez AH, Garrido-Fernandez J (1991) Color-pigment correlation in virgin olive oil. J Am Oil Chem Soc 68:332–336 Polavarapu S, Oliver CM, Ajlouni S, Augustin MA (2011) Physicochemical characterisation and oxidative stability of fish oil and fish oil–extra virgin olive oil microencapsulated by sugar beet pectin. Food Chem 127:1694–1705 Raheem A, Wan Azlina WAKG, Taufiq Yap YH, Danquah MK, Harun R (2015) Thermochemical conversion of microalgal biomass for biofuel production. Renew Sust Energy Rev 49:990–999 Rodríguez De Marco E, Steffolani ME, Martínez CS, León AE (2014) Effects of Spirulina biomass on the technological and nutritional quality of bread wheat pasta. LWT-Food Sci Technol 58:102–108 Santoyo S, Herrero M, Señorans FJ, Cifuentes A, Ibáñez E, Jaime L (2006) Functional characterization of pressurized liquid extracts of Spirulina platensis. Eur Food Res Technol 224:75–81 Shalaby EA, Shanab SM (2013) Comparison of DPPH and ABTS assays for determining antioxidant potential of water and methanol extracts of Spirulina platensis. Indian J Geo-Mar Sci 42:556–564 Spoalore P, Joannis-Cassan C, Duran E, Isambert A (2006) Commercial application of microalgae. J Biosci Bioeng 101:87–96 Wang L, Pan B, Sheng J, Xu J, Hu Q (2007) Antioxidant activity of Spirulina platensis extracts by supercritical carbon dioxide extraction. Food Chem 105:36–41 Xiaojun Y, Li X, Zhou C, Fan X (1996) Prevention of fish oil rancidity by phlorotannins from Sargassum kjellmanianum. J Appl Phycol 8:201–203