Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Hoạt động chống oxy hóa và xác định đồng thời bốn polyphenol trong các bộ phận khác nhau của Carica papaya L. bằng phương pháp sắc ký lớp mỏng hiệu suất cao đã được xác nhận
Tóm tắt
Một phương pháp sắc ký lớp mỏng hiệu suất cao (HPTLC) để xác định định lượng đồng thời và xác thực axit syringic, axit gallic, p-coumarin và axit caffeic trong chiết xuất methanol của các bộ phận khác nhau của Carica papaya L. đã được phát triển lần đầu tiên. Để đạt được sự tách biệt tốt, pha động được sử dụng là toluene–ethyl acetate–axit acetic băng (8.5:1.5:0.1, V/V). Việc xác định densitometric được thực hiện ở bước sóng đã chỉ định cho các hợp chất chuẩn khác nhau, ở chế độ phản xạ/ hấp thụ. Các đường chuẩn được xác định là tuyến tính trong khoảng từ 100‒600 ng mỗi điểm. Trong quá trình phân tích, chiết xuất methanol của các bộ phận khác nhau của C. papaya thể hiện sự hiện diện của axit syringic 0.91% trong hạt giống và p-coumarin 0.81% trong rễ. Phương pháp đề xuất là đơn giản, chính xác, cụ thể và đáng tin cậy. Dữ liệu thu được có thể được sử dụng cho phân tích định kỳ các biomarker được báo cáo trong thuốc thô và chiết xuất. Bài viết này đề cập đến sự so sánh hoạt động chống oxy hóa của các chiết xuất methanol từ các bộ phận khác nhau của C. papaya. Việc đánh giá tổng lượng phenolic (TPC) cho thấy tiềm năng chống oxy hóa cao của lá và trái cây. Tiềm năng quét gốc tự do của các chiết xuất methanol cho thấy hạt giống có hoạt động quét 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) tốt hơn so với rễ. Việc xác định và xác thực đồng thời các biomarker này chưa được báo cáo cho C. papaya và có thể được sử dụng để tiêu chuẩn hóa chính xác cây.
Từ khóa
#Carica papaya #axit syringic #axit gallic #p-coumarin #axit caffeic #sắc ký lớp mỏng hiệu suất cao #hoạt động chống oxy hóa #chiết xuất methanol #phenolic.Tài liệu tham khảo
Canini A, Alesiani D, Arcangelo GD, Tagliatesta P (2007) Gas chromatography-mass spectrometry analysis of phenolic compounds from Carica papaya L. leaf. J Food Compos Anal 20:584–590
Kothari V, Seshadri S (2010) Antioxidant activity of seed extracts of Annona squamosa and Carica papaya. Nutr Food Sci 40:403–408
Meir S, Kanner J, Akiri B, Philosoph-Hadas S (1995) Determination and involvement of aqueous reducing compounds in oxidative defense systems of various senescing leaves. J Agric Food Chem 43:1813–1819
Paiva GS, Taft CA, Carvalho MC, de Souza IA, da Silva EC, Cavalcanti KP et al (2013) A comparative study of the effects of vitamins C and E in the development of sarcoma 180 in mice. J Cancer 4:724–726
Sadek KM (2012) Antioxidant and immunostimulant effect of Carica papaya Linn. aqueous extract in acrylamide intoxicated rats. Acta Inform Med 20:180–185
Punithavathi VR, Prince PS, Kumar R, Selvakumari J (2011) Antihyperglycaemic, antilipid peroxidative and antioxidant effects of gallic acid on streptozotocin-induced diabetic Wistar rats. Eur J Pharmacol 650(1):465–471
Kroes BV, Van den Berg AJ, Van Ufford HQ, Van Dijk H, Labadie RP (1992) Anti-inflammatory activity of gallic acid. Planta Med 58(06):499–504
Subramanian AP, John AA, Vellayappan MV, Balaji A, Jaganathan SK, Supriyanto E, Yusof M (2015) Gallic acid: prospects and molecular mechanisms of its anticancer activity. RSC Adv 5(45):35608–35621
Daglia M, Di Lorenzo A, Nabavi S, Talas Z, Nabavi S (2014) Polyphenols: well beyond the antioxidant capacity: gallic acid and related compounds as neuroprotective agents: you are what you eat! Curr Pharm Biotechnol 15(4):362–372
Xi GL, Liu ZQ (2015) Coumarin-fused coumarin: antioxidant story from N, N-dimethylamino and hydroxyl groups. J Agric Food Chem 63(13):3516–3523
Muke S, Kaikini A, Peshattiwar V, Bagle S, Dighe V, Sathaye S (2018) Neuroprotective effect of coumarin nasal formulation: kindling model assessment of epilepsy. Front Pharmacol 9:992
Mihanfar A, Darband SG, Sadighparvar S, Kaviani M, Mirza-Aghazadeh-Attari M, Yousefi B, Majidinia M (2021) In vitro and in vivo anticancer effects of syringic acid on colorectal cancer: possible mechanistic view. Chem Biol Interact 337:109337
Srinivasulu C, Ramgopal M, Ramanjaneyulu G, Anuradha CM, Kumar CS (2018) Syringic acid (SA)—a review of its occurrence, biosynthesis, pharmacological and industrial importance. Biomed Pharmacother 108:547–557
Muthukumaran J, Srinivasan S, Venkatesan RS, Ramachandran V, Muruganathan U (2013) Syringic acid, a novel natural phenolic acid, normalizes hyperglycemia with special reference to glycoprotein components in experimental diabetic rats. J Acute Dis 2(4):304–309
Ozturk G, Ginis Z, Akyol S, Erden G, Gurel A, Akyol O (2012) The anticancer mechanism of caffeic acid phenethyl ester (CAPE): review of melanomas, lung and prostate cancers. Eur Rev Med Pharmacol Sci 16(15):2064–2068
Gülçin İ (2006) Antioxidant activity of caffeic acid (3,4-dihydroxycinnamic acid). Toxicology 217(2–3):213–220
Touaibia M, Jean-Francois J, Doiron J (2011) Caffeic acid, a versatile pharmacophore: an overview. Mini Rev Med Chem 11(8):695–713
Vidya Sala A (2005) Carica papaya. In: Ramankutty C (ed) Indian medicinal plants: a compendium of 500 species. Orient Longman Pvt Ltd., Hyderabad, pp 383–384
Bruneton J (1999) Carica papaya. In: Bruneton J (ed) Pharmacognosy, phytochemistry, medicinal plants, 2nd edn. Lavoisier, Paris, pp 221–223
Nadkami AK (1998) Indian materia medica. Popular Prakashan, Bombay
Singleton VL, Orthofer R, Lamuela-Raventos RM (1999) Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteau reagent. Methods Enzymol 299:152–178
Nazaruk J, Czechowska SK, Markiewicz R, Borawska MH (2008) Polyphenolic compounds and in vitro antimicrobial and antioxidant activity of aqueous extracts from leaves of some Cirsium species. Nat Prod Res 22(18):1583–1588
Ordonez AAL, Gomez JD, Vattuone MA, Isla MI (2006) Antioxidant activities of Sechium edule (Jacq.) Swartz extracts. Food Chem 97:452–458
Chandrashekhar HR, Venkatesh P, Ponnusankar S, Vijayan P (2009) Antioxidant activity of Hypericum hookerianum Wight and Arn. Nat Prod Res 23(13):1240–1251
Salah KBH, Mahjoub MA, Ammar S, Michel L, Millet-Clerc J, Chaumont JP, Mighri Z, Aouni M (2006) Antimicrobial and antioxidant activities of the methanolic extracts of three Salvia species from Tunisia. Nat Prod Res 20(12):1110–1120
Dwivedi J, Gupta A, Paliwal S, Rawat AK (2020) Validated simultaneous HPTLC analysis of scopoletin and gallic acid in the methanolic fraction of Jatropha glandulifera. J Planar Chromat Mod TLC 33(5):457–462
Dwivedi J, Gupta A, Verma S, Paliwal S, Rawat AK (2019) Validated simultaneous high-performance thin-layer chromatographic analysis of ursolic acid, β-sitosterol, lupeol and quercetin in the methanolic fraction of Ichnocarpus frutescens. J Planar Chromat Mod TLC 32(2):103–108
Dwivedi J, Gupta A, Verma S, Dwivedi M, Paliwal S, Rawat AK (2018) Validated high-performance thin-layer chromatographic analysis of ursolic acid and β-sitosterol in the methanolic fraction of Paederia foetida L. leaves. J Planar Chromatogr Mod TLC 31(5):377–381
International Conference on Harmonization (1994) ICH-Q2A Text on validation of analytical procedures. In: Harmonized tripartite guideline prepared within the international conference on harmonization of technical requirements for the registration of pharmaceuticals for human use, Geneva
International Conference on Harmonization (1996) ICH-Q2B Validation of analytical procedures: methodology. In: Harmonized tripartite guideline prepared within the international conference on harmonization of technical requirements for the registration of pharmaceuticals for human use, Geneva
Zunjar V, Mammen D, Trivedi BM (2015) Antioxidant activities and phenolics profiling of different parts of Carica papaya by LCMS–MS. Nat Prod Res 29(22):2097–2099