Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Hoạt động chống HSV-1 của Cistus laurifolius và Phát triển Son Dưỡng Thảo Dược Chống Virus
Revista Brasileira de Farmacognosia - Trang 1-12 - 2024
Tóm tắt
Cistus laurifolius L., Cistaceae, từ lâu đã được sử dụng trong các phương pháp điều trị truyền thống chống lại nhiều bệnh da liễu ở Thổ Nhĩ Kỳ. Nghiên cứu này được thiết kế để quan sát hiệu ứng chống virus và chống hoạt động HSV-1, đồng thời phát triển một loại son dưỡng thảo dược có hoạt tính chống virus. Các hoạt tính độc tế bào của các chiết xuất từ C. laurifolius và khả năng ức chế hiệu ứng tế bào được đánh giá bằng phương pháp thử nghiệm màu sắc XTT trên tế bào Vero. Trong các thí nghiệm ban đầu, các chiết xuất thô không cho thấy hoạt tính chống virus do độ độc cao. Các phương pháp chiết xuất pha rắn, tinh chế và làm giàu polyphenol đã được áp dụng cho các chiết xuất EtOH, MeOH và H2O để giảm độc tính của các chiết xuất và qua đó, thu được kết quả chống virus cao. Các phân đoạn làm giàu polyphenol của MeOH (SI 431.17) và H2O (SI > 455.37), được tinh chế bằng chiết xuất pha rắn, đã thể hiện tác động chống virus mạnh mẽ đối với HSV-1. Trong môi trường in vitro, độ độc tế bào của các chiết xuất làm giàu polyphenol từ EtOH, MeOH và H2O của C. laurifolius đã được nghiên cứu trên các tế bào nguyên bào sợi da người để phát triển các công thức son dưỡng thảo dược. Tất cả các phân đoạn đều không gây độc tế bào cho các tế bào nguyên bào sợi da người. Các công thức son dưỡng thảo dược cũng đã được phát triển và các thử nghiệm đánh giá đã được thực hiện trên son dưỡng thảo dược trong nghiên cứu này. Hai mươi một loại hợp chất phenolic khác nhau trong các chiết xuất đã được xác định bằng phương pháp HPLC–DAD. Hyperoside (49.37 ± 0.53 mg/g chiết xuất), isoquercitrin (48.05 ± 0.74 mg/g chiết xuất), rutin (45.84 ± 1.02 mg/g chiết xuất), epicatechin (14.83 ± 1.00 mg/g chiết xuất), quercetin-3-O-glucopyranoside (13.35 ± 0.16 mg/g chiết xuất), catechin (12.80 ± 0.1 mg/g chiết xuất), axit caffeic (3.15 ± 0.18 mg/g chiết xuất), và apigenin (6.30 ± 0.10 mg/g chiết xuất) được xác định là các thành phần chính có mặt trong các phân đoạn làm giàu polyphenol của chiết xuất H2O từ C. laurifolius. Kết quả cho thấy các phân đoạn làm giàu polyphenol từ các chiết xuất của C. laurifolius có hoạt tính chống virus Herpes simplex type-1 tốt và công thức thảo dược có hoạt tính chống virus là một lựa chọn tốt hơn với ít tác dụng phụ tối thiểu.
Từ khóa
#Cistus laurifolius #HSV-1 #hoạt tính chống virus #son dưỡng thảo dược #polyphenol #phương pháp chiết xuất pha rắn.Tài liệu tham khảo
Ahmed S, Jubair A, Hossain MA, Hossain MM, Azam MS, Biswas M (2021) Free radical-scavenging capacity and HPLC-DAD screening of phenolic compounds from pulp and seed of Syzygiumclaviflorum fruit. J Agr Food Res 6:100203. https://doi.org/10.1016/j.jafr.2021.100203
Amale SS, Kamble RR, Wamane VB, Rode AR (2023) A research on herbal lip balm. Tıjer Int Res J 10:142–160
Ark M, Ustun O, Yesilada E (2004) Analgesic activity of Cistus laurifolius in mice. Pharm Biol 42:176–178. https://doi.org/10.1080/13880200490512250
Barrajon-Catalan E, Fernandez-Arroyo S, Roldan C, Guillen E, Saura D, Segura-Carretero A, Micol V (2011) A systematic study of the polyphenolic composition of aqueous extracts deriving from several Cistus genus species. Evolutionary Relationship Phytochem Anal 22:303–312. https://doi.org/10.1002/pca.1281
Barros L, Dueñas M, Aloes CT, Silvac S, Henriques M, Santos-Buelga C, Ferreiraa CFRI (2013) Antifungal activity and detailed chemical characterization of Cistus ladanifer phenolic extracts. Ind Crops Prod 41:41–45. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2012.03.038
Benali T, Bouyahya A, Habbadi K, Zengin G, Khabbach A, Achbani H, Hammani K (2020) Chemical composition and antibacterial activity of the essential oil and extracts of Cistus ladaniferus subsp. ladanifer and Menthasuaveolens against phytopathogenic bacteria and their ecofriendly management of phytopathogenic bacteria. Biocatal Agric Biotechnol 28:101696. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2020.101696
Čanadanović-Brunet JM, Djilas SM, Ćetković GS, Tumbas VT, Mandić AI, Čanadanović VM (2006) Antioxidant activities of different Teucriummontanum L. extracts. Int J Food Sci Technol 41:667–673. https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.2006.01133.x
Chattopadhyay D, Chawla-Sarkar M, Chatterjee T, Dey RS, Bag P, Chakraborti S, Khan MTH (2009) Recent advancements for the evaluation of antiviral activities of natural products. N Biotechnol 25:347–368. https://doi.org/10.1016/j.nbt.2009.03.007
Comandini O, Contu M, Rinaldi AC (2006) An overview of Cistus ectomycorrhizal fungi. Mycorrhiza 16:381–395. https://doi.org/10.1007/s00572-006-0047-8
Cruz-Filho IJC, Barros BRS, Aguiar LMS, Navarro CDC, Lorena PVMB, Rocha GJM, Vercesi AE, Maior AMS (2019) Lignins isolated from prickly pear cladodes of the species Opuntiafícus-indica (Linnaeus) Miller and Opuntiacochenillifera (Linnaeus) Miller induces mice splenocytes activation, proliferation and cytokines production. Int J Biol Macromol 123:1331–1339. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2018.09.120
Demetzos D, Dimas K, Hatziantoniou S, Anastasaki T, Angelopoulou D (2001) Cytotoxic and anti-inflammatory activity of labdane and cis-clerodane type diterpenes. Planta Med 67:614–618. https://doi.org/10.1055/s-2001-17362
Demirci T, Haskoylu ME, Eroğlu MS, Hemberger J, ToksoyOner E (2020) Levan-based hydrogels for controlled release of amphotericin b for dermal local antifungal therapy of candidiasis. Eur J Pharm Sci 145:105–255. https://doi.org/10.1016/j.ejps.2020.105255
Dimas K, Demetzos C, Angelopoulou D, Kolokouris A, Mavromoustakos T (2000) Biological activity of myricetin and its derivatives against human leukemic cell lines in vitro. Pharmacol Res 42:475–478. https://doi.org/10.1006/phrs.2000.0716
Dinda M, Dasgupta U, Singh N, Bhattacharyya D (2015) Pı3k-mediated proliferation of fibroblasts by Calendula officinalis tincture: ımplication in wound healing. PTR 29:607–616. https://doi.org/10.1002/ptr.5293
Dolar N, Serdaroglu S, Yilmaz G, Ergin S (2006) Seroprevalence of herpes simplex virus type 1 and type 2 in Turkey. JEADV 20:1232–1236. https://doi.org/10.1111/j.1468-3083.2006.01766.x
Duman R, Dogan HH, Karakıs H (2019) Antiviral activity of Spartiumjunceum against Herpes simplex virus type-1: an in vitro study. Int J Pharm Sci 10:3274–3282. https://doi.org/10.13040/IJPSR.0975-8232.10(7).3274-82
Ehrhardt C, Hrincius ER, Korte V, Mazur I, Droebner K, Poetter A, Dreschers S, Schmolke M, Planz O, Ludwig S (2007) A polyphenol-rich plant extract, CYSTUS052, exerts anti-influenza virus activity in cell culture without toxic side effects or the tendency to induce viral resistance. Antivir Res 76:38–47. https://doi.org/10.1016/j.antiviral.2007.05.002
Fatahzadeh M, Schwartz RA (2007) Human herpes simplex virus infections: epidemiology, pathogenesis, symptomatology, diagnosis, and management. J Am Acad Dermatol 57:737–763. https://doi.org/10.1016/j.jaad.2007.06.027
Ghildiyal R, Prakash V, Chaudhary VK, Gupta V, Gabrani R (2020) Phytochemicals as antiviral agents: recent updates. Nature 12:279–295. https://doi.org/10.1007/978-981-15-1761-7_12
Hayati F, Chabib L (2016) Formulation and evaluation of herbal lipsticks from carrot (Daucuscarota L.) extract. Int J Pharm 8:403–405
İğde FA, Yazıcı Z, İğde M (2011) Seroepidemiological study of herpes simplex virus type 1 in the black sea region of Turkey Balkan. Med J 28:37–42. https://doi.org/10.5174/tutfd.2009.02681.2
Kadu M, Vishwasrao S, Singh S (2015) Review on natural lip balm. Int J Cosmet Sci 5:1–7
Kaerber G (1964) Diagnostic procedures for virus and ricketsial disease. J Am Public Health Assoc 3:48–50
Kasparaviciene G, Savickas A, Kalveniene Z, Velziene S, Kubiliene L, Bernatoniene J (2016) Evaluation of beeswax influence on physical properties of lip balm using instrumental and sensory methods. Evid Based Compl Altern Med 2016:3816460. https://doi.org/10.1155/2016/3816460
Kumar P, Nagarajan A, Pradeep DU (2018) Analysis of cell viability by the MTT assay. Cold Spring Harb Perspect Biol. https://doi.org/10.1101/pdb.prot095505
KupeliAkkol E, Erdogan OI, Yesilada E (2012) Anticholinesterase and antioxidant effects of the ethanol extract, ethanol fractions and isolated flavonoids from Cistus laurifolius L. leaves. Food Chem 131:626–631. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2011.09.041
Kupeli E, Yesilada E (2007) Flavonoids with anti-inflammatory and antinociceptive activity from Cistus laurifolius L. leaves through bioassay-guided procedures. J Ethnopharmacol 112:524–530. https://doi.org/10.15584/ejcem.2018.2.8
Latiff NA, Ong PY, Abd Rashid SNA, Abdullah LC, Mohd Amin NA, Fauzi NAM (2021) Enhancing recovery of bioactive compounds from Cosmos caudatus leaves via ultrasonic extraction. Sci Rep 11:17297. https://doi.org/10.1038/s41598-021-96623-x
Liu L, Jiang X, Wenhui Y (2019) Dracohodin perochlorate stimulates fibroblast proliferation via EGFR activation and downstream ERK/CREB and PI3K/Akt/ mTOR pathways in vitro. Evid Based Compl Altern Med 2019:6027186. https://doi.org/10.1155/2019/6027186
Lyu SY, Rhim JY, Park WB (2005) Antiherpetic activities of flavonoids against herpes simplex virus type 1 (HSV-1) and type 2 (HSV-2) in vitro. Arch Pharm Res 28:1293–1301. https://doi.org/10.1007/BF02978215
Madavaraju K, Koganti R, Volety I, Yadavalli T, Shukla D (2021) Herpes simplex virus cell entry mechanisms: an update. Front Cell Infect Microbiol 10:617578. https://doi.org/10.3389/fcimb.2020.617578
Magalhães PJ, Vieira JS, Gonçalves LM, Pacheco JG, Guido LF, Barros AA (2010) Isolation of phenolic compounds from hop extracts using polyvinylpolypyrrolidone: characterization by high-performance liquid chromatography–diode array detection–electrospray tandem mass spectrometry. J Chromatogr A 1217:3258–3268. https://doi.org/10.1016/j.chroma.2009.10.068
Rebensburg S, Helfer M, Schneider M, Koppensteiner H, Eberle J, Schindler M, Koppensteiner H, Eberle J, Schindler M, Gurtler L, Brack Werner R (2016) Potent in vitro antiviral activity of Cistus incanus extract against HIV and Filoviruses targets viral envelope proteins. Sci Rep 6:20394. https://doi.org/10.1038/srep20394
Sayah K, Chemlal L, Marmouzi M, El-Jemli Y, Abbes CME, F, (2017) In vivo anti-inflammatory and analgesic activities of Cistus salviifolius L. and Cistus monspeliensis L. aqueous extracts. S Afr J Bot 113:160–163. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2017.08.015
Skendi A, Irakli M, Chatzopoulou P (2017) Analysis of phenolic compounds in Greek plants of Lamiaceae family by HPLC. J Appl Res Med Arom Plant 6:62–69. https://doi.org/10.1016/j.jarmap.2017.02.001
Stepien A, Aebisher D, BartusikAebisher D (2018) Biological properties of Cistus species. Eur J Clin Exp Med 16:127–132. https://doi.org/10.15584/ejcem.2018.2.8
Ustun O, Ozçelik B, Baykal T (2016) Bioactivities of ethanolic extract and its fractions of Cistus laurifolius L. (Cistaceae) and Salvia wiedemannii Boiss. (Lamiaceae) species. Pharmacogn Mag 12:S82–S85. https://doi.org/10.4103/0973-1296.176125
Xiang YF, Pei Y, Wang YF (2008) Current status of natural products from plants as anti-herpes simplex virus-1 agents. Virol Sin 23:305–314. https://doi.org/10.1007/s12250-008-2962-7
Yadav A, Karmokar K, Gop R, Mudartha D, Maheshwari V (2020) Formulation and evaluation of herbal lip balm from amaranth leaf colour pigment. Int J Appl Sci 8:653–662. https://doi.org/10.22214/ijraset.2020.6107