Phân tích biểu hiện gen liên quan đến gia tăng allelopathy ở lúa (Oryza sativa L.) do axít salicylic ngoại sinh kích thích

Plant Growth Regulation - Tập 57 - Trang 163-172 - 2008
Chang-Xun Fang1,2, Jun Xiong1,2, Long Qiu1,2, Hai-Bin Wang1,2, Bi-Qing Song1,2, Hai-Bin He1,2, Rui-Yu Lin1,2, Wen-Xiong Lin1,2
1Key Laboratory of Biopesticide and Chemical Biology, Ministry of Education, Fuzhou, People’s Republic of China
2School of Life Sciences, Fujian Agriculture and Forestry University, Fuzhou, People’s Republic of China

Tóm tắt

Các đặc tính phòng thủ của giống lúa allelopathic PI312777 và giống đối chứng Lemont được kích thích bởi axít salicylic ngoại sinh (SA) để ức chế cỏ dại barnyardgrass (BYG) đã được nghiên cứu bằng các phương pháp lai ghép phân giải (SSH) và PCR định lượng huỳnh quang thời gian thực (qRT-PCR). Kết quả cho thấy rằng SA ngoại sinh có thể kích thích hiệu ứng allelopathic của lúa lên BYG và sự phòng thủ này phụ thuộc vào liều lượng SA và thời gian điều trị. PI312777 thể hiện hiệu quả ức chế cao hơn so với Lemont trên BYG sau khi được điều trị với các nồng độ SA khác nhau. Hoạt động của các enzyme bảo vệ tế bào bao gồm SOD, POD và CAT trong các cây BYG đồng nuôi cấy với PI312777 được điều trị bằng SA bị suy giảm đáng kể so với nhóm đối chứng (đồng nuôi cấy với lúa không qua điều trị SA). Một sự suy giảm tương tự nhưng thấp hơn trên các enzyme này, ngoại trừ CAT, cũng được quan sát thấy ở các cây BYG khi đồng nuôi cấy với Lemont được điều trị bằng SA. Do đó, được đề xuất rằng lúa allelopathic nên nhạy cảm hơn so với lúa không có allelopathy đối với SA ngoại sinh. Mười bảy gen được kích thích bởi SA đã được thu thập từ PI312777 thông qua phân tích SSH. Các gen này mã hóa cho các protein kinase tiếp nhận, các protein vận chuyển ubiquitin, các protein liên quan đến chuyển hóa phenylpropanoid, các protein liên quan đến chống oxy hóa và một số protein điều hòa sinh trưởng. Sự biểu hiện khác biệt của các gen này đã được xác thực một phần bằng qRT-PCR ở hai giống lúa. Công trình của chúng tôi cho thấy rằng lúa allelopathic có một hệ thống phòng thủ hóa học tích cực và hệ thống enzyme tự giải độc như các enzyme tăng biểu hiện liên quan đến tổng hợp de novo của các hóa chất phenolic allelochemicals và glutathione-S-transferase (GST) liên quan đến giải độc xenobiotic.

Từ khóa

#allelopathy #axít salicylic #lúa #cỏ dại barnyardgrass #biểu hiện gen #enzyme bảo vệ tế bào

Tài liệu tham khảo

Baerson SR, Moreiras AS, Bonjoch NP, Schulz M, Kagan IA, Agarwal AK et al (2005) Detoxification and transcriptome response in Arabidopsis seedlings exposed to the allelochemical benzoxazolin-2(3H)-one (BOA). J Biol Chem 280:21867–21881. doi:10.1074/jbc.M500694200 Balke NE, Hodges TK (1979) Comparison of reduction in adenosine triphosphate content, plasma membrane-associated adenosine triphosphase activity and potassium absorption in oat root by diethylstilbestrol. Plant Physiol 63:53–56 Belz RG (2007) Allelopathy in crop/weed interactions: an update. Pest Manag Sci 63:308–326. doi:10.1002/ps.1320 Belz RG, Hurle K (2004) A novel laboratory screening bioassay for crop seedling allelopathy. J Chem Ecol 30:175–198. doi:10.1023/B:JOEC.0000013190.72062.3d Bi HH, Zeng RS, Su LM, An M, Luo SM (2007) Rice allelopathy induced by methyl jasmonate and methyl salicylate. J Chem Ecol 33:1089–1103. doi:10.1007/s10886-007-9286-1 Bob BB, Wilhelm G, Russell LJ (eds) (2000) Biochemistry & molecular biology of plants. American Society of Plant Physiologists, Maryland Bryant JP, Chapin FSIII, Reichardt PB, Clausen TP (1987) Response of winter chemical defense in Alaska paper birch and green alder to manipulation of plant carbon/nutrient balance. Oecologia 72:510–514. doi:10.1007/BF00378975 Dhindsa RS, Dhindsa PP, Thorpe TA (1981) Leaf senescence: correlated with increased levels of membrane permeability and lipid peroxidation and decreased levels of superoxide dismutase and catalase. J Exp Bot 32:93–96. doi:10.1093/jxb/32.1.93 Diatchenko L, Lau YFC, Campbell AP, Chenchik A, Moqadam F, Huang B et al (1996) Suppression subtractive hybridization: a method for generating differentially regulated or tissue-specific cDNA probes and libraries. Proc Natl Acad Sci USA 93:6025–6030. doi:10.1073/pnas.93.12.6025 Dilday RH, Yan WG, Moldenhauer KAK, Gravois KA (1998) Allelopathic activity in rice for controlling major aquatic weeds. In: Olofsdotter M (ed) Allelopathy in rice. International Rice Research Institute, Manila, pp 7–26 Dilday RH, Mattice JD, Moldenhauer KA (2000) An overview of rice allelopathy in the USA. In: Kim KU, Shin DH (eds) Rice allelopathy. Kyungpook National University, Taegu, pp 15–26 Dunham CW (1958) Use of methylene blue to evaluate rooting of cuttings. Proc Am Soc Hortic Sci 72:450–453 Ebana K, Yan WG, Dilday RH, Namai H, Okuno K (2001) Analysis of QTL associated with the allelopathic effect of rice using water-soluble extracts. Breed Sci 51:47–51. doi:10.1270/jsbbs.51.47 Fajer ED, Bowers MD, Bazzaz FA (1992) The effect of nutrients and enriched CO2 environments on production of carbon-based allelochemicals in plantago: a test of the carbon/nutrient balance. Am Nat 140:702–723. doi:10.1086/285436 Gong HB, Jiao YX, Hu WW, Pua EC (2005) Expression of glutathione-S-transferase and its role in plant growth and development in vivo and shoot morphogenesis in vitro. Plant Mol Biol 57:53–66. doi:10.1007/s11103-004-4516-1 He HQ, Dong ZH, Liang YY, Lin SW, Lin WX (2002) New advance of research on allelopathy in rice (Oryza sativa L.). Res Agric Mod 23:140–143 (in Chinese) He HQ, Shen LH, Xiong J, Jia XL, Lin WX, Wu H (2004) Conditional genetic effect of allelopathy in rice (Oryza sativa L.) under different environmental conditions. Plant Growth Regul 44:211–218. doi:10.1007/s10725-004-5107-5 Jensen LB, Courtois B, Shin LS, Li ZK, Olofsdotter M, Mauleon RP (2001) Locating genes controlling allelopathic effects against barnyardgrass in upland rice. Agron J 93:21–26 Kenneth J, Thomas D (2001) Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2−△△Ct method. Methods 25:402–408. doi:10.1006/meth.2001.1262 Kim SY, Madrid AV, Park ST, Yang SJ, Olofsdotter M (2005) Evaluation of rice allelopathy in hydroponics. Weed Res 45:74–79. doi:10.1111/j.1365-3180.2004.00438.x Kovacik J, Klejdus B, Backor M, Repca M (2007) Phenylalanine ammonia-lyase activity and phenolic compounds accumulation in nitrogen-deficient Matricaria chamomilla leaf rosettes. Plant Sci 172:393–399. doi:10.1016/j.plantsci.2006.10.001 Lee SB, Seo KI, Koo JH, Hur HS, Shin JC (2005) QTLs and molecular markers associated with rice allelopathy. In: Haper JDI, An M, Kent JH (eds) Proceedings of the fourth world congress on allelopathy “Establishing the scientific base”, Charles Sturt University, Wagga Wagga, NSW, Australia, pp 505–507 Lin WX, Kim KU, Shin DH (2000) Allelopathic potential in rice (Oryza sativa L.) and its modes of action on barnyardgrass (Echinochloa crusgalli L.). Allelopath J 7:215–224 Lin WX, He HQ, Guo YC, Liang YY, Chen FY (2001) Rice allelopathy and its physiobiochemical characteristics. Chin J Appl Ecol 12:871–875 (in Chinese) Lin WX, He HQ, Kim KU (2003) The performance of allelopathic heterosis in rice (Oryza sativa L.). Allelopath J 2:179–188 Ling ZP, Hu YL (1997) Stress resistance of plants induced via the salicylic acid-mediated signal transduction pathway. Acta Bot Sin 39:l85–188 (in Chinese) Ohtake Y, Takahashi T, Komeda Y (2000) Salicylic acid induces the expression of a number of receptor-like kinase genes in Arabidopsis thaliana. Plant Cell Physiol 41:1038–1044. doi:10.1093/pcp/pcd028 Olofsdotter M (1998) Allelopathy in rice. In: Olofsdotter M (ed) Allelopathy in rice. International Rice Research Institute, Manila, pp 1–5 Pfaff MW (2001) A new mathematical model for relative quantification in real-time RT-PCR. Nucleic Acids Res 29:2002–2007 Putnam AR, Tang CS (1986) Allelopathy: state of science. In: Putnam AR, Tang CS (eds) The science of allelopathy. Wiley, New York, pp 43–56 Rasbin I (1992) Salicylate, a new plant hormone. Plant Physiol 99:799–803 Razal RA, Ellis S, Santokh S, Lewis NG, Towers GHN (1996) Nitrogen recycling in phenylpropanoid metabolism. Phytochemistry 41:31–35. doi:10.1016/0031-9422(95)00628-1 Schuler MA (1996) Plant cytochrome P450 monooxygenases. Crit Rev Plant Sci 15:235–284. doi:10.1080/713608134 Shen LH, Lin WX (2007) Effects of phosphorus levels on allelopathic potential of rice co-cultured with barnyardgrass. Allelopath J 19:23–32 Shen LH, Xiong J, Lin WX (2008) Rice allelopathy research in china. In: Zeng RS, Mallik AU, Luo SM (eds) Allelopathy in sustainable agriculture and forestry. Springer, New York, pp 215–233 Song BQ, Xiong J, Fang CX, Qiu L, Lin RY, Liang YY et al (2008) Allelopathic enhancement and differential gene expression in rice under low nitrogen treatment. J Chem Ecol 34:688–695. doi:10.1007/s10886-008-9455-x Takao M, Akazawa T, Fukuchi S (1970) Enzymic mechanism of starch breakdown in germinating rice seeds.III.α-amylase isozymes. Plant Physiol 46:650–654 Tsai CJ, Harding SA, Tschaplinski TJ, Lindroth RL, Yuan YN (2006) Genome-wide analysis of the structural genes regulating defense phenylpropanoid metabolism in Populus. New Phytol 172:47–62. doi:10.1111/j.1469-8137.2006.01798.x Weidenhame JD (1996) Distinguishing resource competition and chemical interference: overcoming the method-ological impasse. Agron J 88:866–875 Wen PF, Chen JY, Kong WF, Pan QH, Wan SB, Huang WD (2005) Salicylic acid induced the expression of phenylalanine ammonia-lyase gene in grape berry. Plant Sci 169:928–934. doi:10.1016/j.plantsci.2005.06.011 Xiang CB, Miao ZH, Lam E (1996) Coordinated activation of as-1-type elements and a tobacco glutathione S-transferase gene by auxins, salicylic acid, methyl-jasmonate and hydrogen peroxide. Plant Mol Biol 32:415–426. doi:10.1007/BF00019093 Xiong J, Lin WX, Zhou JJ, Wu MH, Chen XX, He HQ (2005) Studies on biointerference between barnyardgrass and rice accessions at different nitrogen regimes. In: Harper JDI, An M, Wu H, Kent JH (eds) Proceedings fourth world congress on allelopathy, Charles Sturt University, Wagga Wagga, NSW, Australia, pp 501–504 Xiong J, Jia XL, Deng JY, Jiang BY, He HB, Lin WX (2007a) Analysis of epistatic effect and QTL interactions with environment for allelopathy in rice (Oryza sativa L.). Allelopath J 20:259–268 Xiong J, Wang HB, Fang CX, Qiu L, Wu WX, He HB et al (2007b) The differential expression of the genes of the key enzymes involved in phenolic compound metabolism in rice (Oryza sativa L.) under different nitrogen supply. J Plant Physiol Mol Biol 33:387–394 (in Chinese) Xu ZH, Yu LQ, Zhao M (2003) Rice allelopathy to barnyardgrass. Chin J Appl Ecol 14:737–740 (in Chinese) Zeng DL, Qian Q, Teng S, Dong G, Fujimoto H, Yasufumi K et al (2003) Genetic analyses on rice allelopathy. Chin Sci Bull 48:70–73