Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Gel thủy tinh nhạy nhiệt có thể tiêm để giải phóng liên tục apelin-13 nhằm cải thiện sự sống sót của vạt da trong mô hình vạt da ngẫu nhiên ở chuột
Tóm tắt
Với ưu thế của quy trình thuận tiện, các vạt da mô hình ngẫu nhiên thường được sử dụng trong tái tạo chi và sửa chữa vết thương. Apelin-13 là một peptide nội sinh đã được phát hiện, được chứng minh là có nhiều chức năng sinh học mạnh mẽ. Gần đây, các hệ thống gel nhạy nhiệt đã thu hút được sự quan tâm ngày càng tăng với tư cách là vật liệu băng vết thương do những lợi thế của chúng. Trong nghiên cứu này, một loại gel chitosan (CH)/β-glycerophosphate (β-GP) được nạp apelin-13 đã được phát triển nhằm thúc đẩy sự sống sót của vạt da ngẫu nhiên. Các vạt da ngẫu nhiên đã được tạo ra ở 60 con chuột, sau đó các động vật được phân loại vào nhóm gel thủy tinh đối chứng và nhóm gel apelin-13. Nội dung nước của vạt cũng như diện tích sống sót đã được đo 7 ngày sau phẫu thuật. Nhuộm hematoxylin và eosin được sử dụng để đánh giá sự hình thành mạch của vạt. Mức độ phân biệt tế bào 34 (CD34) và yếu tố tăng trưởng nội mô mạch máu (VEGF) đã được phát hiện bằng phương pháp miễn dịch hóa tâm và Western blot. Yếu tố hoại tử khối u-α (TNF-α) và interleukin-6 (IL-6) được đánh giá bằng phương pháp thử nghiệm miễn dịch liên kết enzym (ELISA). Sự căng thẳng oxy hóa được ước tính thông qua hoạt động của malondialdehyde (MDA) và superoxide dismutase (SOD) trong mô. Kết quả của chúng tôi cho thấy rằng gel CH/β-GP/apelin-13 có thể không chỉ giảm phù nề mô mà còn cải thiện diện tích sống sót của vạt. Gel CH/β-GP/apelin-13 cũng làm tăng mức protein VEGF và tăng mật độ mạch trung bình. Hơn nữa, gel CH/β-GP/apelin-13 được chứng minh có thể ức chế đáng kể sự biểu hiện của TNF-α và IL-6, đồng thời làm tăng hoạt tính của SOD và ức chế hàm lượng MDA. Tóm lại, các kết quả này chỉ ra rằng gel CH/β-GP/apelin-13 có thể là một phương pháp điều trị tiềm năng cho vạt da mô hình ngẫu nhiên.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Sen H, Oruc M, Isik VM, Sadic M, Sayar H, Citil R et al. The effect of omeprazole usage on the viability of random pattern skin flaps in rats. Ann Plast Surg. 2017;78:e5–e9.
Kailiang Z, Yihui Z, Dingsheng L, Xianyao T. Effects of muscone on random skin flap survival in rats. J Reconstr Microsurg. 2016;32:200–7.
Cao B, Wang L, Lin D, Cai L, Gao W. Effects of lidocaine on random skin flap survival in rats. Dermatol Surg. 2015;41:53–8.
Yang M, Sheng L, Li H, Weng R, Li QF. Improvement of the skin flap survival with the bone marrow-derived mononuclear cells transplantation in a rat model. Microsurgery. 2010;30:275–81.
Kim HJ, Xu L, Chang KC, Shin SC, Chung JI, Kang D et al. Anti-inflammatory effects of anthocyanins from black soybean seed coat on the keratinocytes and ischemia-reperfusion injury in rat skin flaps. Microsurgery. 2012;32:563–70.
Lima LP, de Oliveira Albuquerque A, de Lima Silva JJ, Medeiros F, de Vasconcelos PR, Guimaraes SB. Electroacupuncture attenuates oxidative stress in random skin flaps in rats. Aesthetic Plast Surg. 2012;36:1230–5.
Lee DK, Cheng R, Nguyen T, Fan T, Kariyawasam AP, Liu Y et al. Characterization of apelin, the ligand for the APJ receptor. J Neurochem. 2000;74:34–41.
Sandal S, Tekin S, Seker FB, Beytur A, Vardi N, Colak C et al. The effects of intracerebroventricular infusion of apelin-13 on reproductive function in male rats. Neurosci Lett. 2015;602:133–8.
Tatemoto K, Hosoya M, Habata Y, Fujii R, Kakegawa T, Zou MX et al. Isolation and characterization of a novel endogenous peptide ligand for the human APJ receptor. Biochem Biophys Res Commun. 1998;251:471–6.
Hosoya M, Kawamata Y, Fukusumi S, Fujii R, Habata Y, Hinuma S et al. Molecular and functional characteristics of APJ. Tissue distribution of mRNA and interaction with the endogenous ligand apelin. J Biol Chem. 2000;275:21061–7.
Chen D, Lee J, Gu X, Wei L, Yu SP. Intranasal delivery of Apelin-13 is neuroprotective and promotes angiogenesis after ischemic stroke in Mice. ASN Neuro. 2015;7:1759091415605114.
Yang Y, Zhang X, Cui H, Zhang C, Zhu C, Li L. Apelin-13 protects the brain against ischemia/reperfusion injury through activating PI3K/Akt and ERK1/2 signaling pathways. Neurosci Lett. 2014;568:44–9.
Yang S, Li H, Tang L, Ge G, Ma J, Qiao Z et al. Apelin-13 protects the heart against ischemia-reperfusion injury through the RISK-GSK-3beta-mPTP pathway. Arch Med Sci. 2015;11:1065–73.
Merino S, Martin C, Kostarelos K, Prato M, Vazquez E. Nanocomposite hydrogels: 3D Polymer-nanoparticle synergies for on-demand drug delivery. ACS Nano. 2015;9:4686–97.
Li Z, Guan J. Thermosensitive hydrogels for drug delivery. Expert Opin Drug Deliv. 2011;8:991–1007.
Li J, Shu Y, Hao T, Wang Y, Qian Y, Duan C et al. A chitosan-glutathione based injectable hydrogel for suppression of oxidative stress damage in cardiomyocytes. Biomaterials. 2013;34:9071–81.
Supper S, Anton N, Seidel N, Riemenschnitter M, Curdy C, Vandamme T. Thermosensitive chitosan/glycerophosphate-based hydrogel and its derivatives in pharmaceutical and biomedical applications. Expert Opin Drug Deliv. 2014;11:249–67.
Qu Y, Tang J, Liu L, Song L, Chen S, Gao Y. Alpha-tocopherol liposome loaded chitosan hydrogel to suppress oxidative stress injury in cardiomyocytes. Int J Biol Macromol. 2019;125:1192–202.
Kim S, Nishimoto SK, Bumgardner JD, Haggard WO, Gaber MW, Yang Y. A chitosan/beta-glycerophosphate thermo-sensitive gel for the delivery of ellagic acid for the treatment of brain cancer. Biomaterials. 2010;31:4157–66.
Zhao Y, Liu JG, Chen WM, Yu AX. Efficacy of thermosensitive chitosan/beta-glycerophosphate hydrogel loaded with beta-cyclodextrin-curcumin for the treatment of cutaneous wound infection in rats. Exp Ther Med. 2018;15:1304–13.
Peng H, Huang Q, Yue H, Li Y, Wu M, Liu W et al. The antitumor effect of cisplatin-loaded thermosensitive chitosan hydrogel combined with radiotherapy on nasopharyngeal carcinoma. Int J Pharm. 2019;556:97–105.
Chenite A, Chaput C, Wang D, Combes C, Buschmann MD, Hoemann CD et al. Novel injectable neutral solutions of chitosan form biodegradable gels in situ. Biomaterials. 2000;21:2155–61.
McFarlane RM, Deyoung G, Henry RA. The design of a pedicle flap in the rat to study necrosis and its prevention. Plast Reconstr Surg. 1965;35:177–82.
Tao XY, Wang L, Gao WY, Ding J, Feng XL, Zhou ZW et al. The effect of inducible nitric oxide synthase on multiterritory perforator flap survival in rats. J Reconstr Microsurg. 2016;32:643–9.
Shi ZR, Itzkowitz SH, Kim YS. A comparison of three immunoperoxidase techniques for antigen detection in colorectal carcinoma tissues. J Histochem Cytochem. 1988;36:317–22.
Ozkan F, Senayli Y, Ozyurt H, Erkorkmaz U, Bostan B. Antioxidant effects of propofol on tourniquet-induced ischemia-reperfusion injury: an experimental study. J Surg Res. 2012;176:601–7.
Lin Y, Lin B, Lin D, Huang G, Cao B. Effect of thymosin beta4 on the survival of random skin flaps in rats. J Reconstr Microsurg. 2015;31:464–70.
Reichenberger MA, Heimer S, Schaefer A, Lass U, Gebhard MM, Germann G et al. Extracorporeal shock wave treatment protects skin flaps against ischemia-reperfusion injury. Injury. 2012;43:374–80.
Beeres SL, Bengel FM, Bartunek J, Atsma DE, Hill JM, Vanderheyden M et al. Role of imaging in cardiac stem cell therapy. J Am Coll Cardiol. 2007;49:1137–48.
Basu G, Downey H, Guo S, Israel A, Asmar A, Hargrave B et al. Prevention of distal flap necrosis in a rat random skin flap model by gene electro transfer delivering VEGF(165) plasmid. J Gene Med. 2014;16:55–65.
Kalka C, Tehrani H, Laudenberg B, Vale PR, Isner JM, Asahara T et al. VEGF gene transfer mobilizes endothelial progenitor cells in patients with inoperable coronary disease. Ann Thorac Surg. 2000;70:829–34.
Zhang F, Fischer K, Komorowska-Timek E, Guo M, Cui D, Dorsett-Martin W. et al. Improvement of skin paddle survival by application of vascular endothelial growth factor in a rat TRAM flap model. Ann Plast Surg. 2001;46:314–9.
Zhang F, Lineaweaver W. Acute and sustained effects of vascular endothelial growth factor on survival of flaps and skin grafts. Ann Plast Surg. 2011;66:581–2.
Kuo YR, Wu WS, Hsieh YL, Wang FS, Wang CT, Chiang YC et al. Extracorporeal shock wave enhanced extended skin flap tissue survival via increase of topical blood perfusion and associated with suppression of tissue pro-inflammation. J Surg Res. 2007;143:385–92.
Zhou KL, Zhang YH, Lin DS, Tao XY, Xu HZ. Effects of calcitriol on random skin flap survival in rats. Sci Rep. 2016;6:18945.
Chung WJ, Cho A, Byun K, Moon J, Ge X, Seo HS et al. Apelin-13 infusion salvages the peri-infarct region to preserve cardiac function after severe myocardial injury. Int J Cardiol. 2016;222:361–7.
Wang K, Ju Z, Yong Y, Chen T, Song J, Zhou J. The effects of electroacupuncture on the Apelin/APJ System in the spinal cord of rats with inflammatory pain. Anesth Analg. 2016;123:1603–10.
Xin Q, Cheng B, Pan Y, Liu H, Yang C, Chen J et al. Neuroprotective effects of apelin-13 on experimental ischemic stroke through suppression of inflammation. Peptides. 2015;63:55–62.
Kim EK, Hong JP. The effect of recombinant human erythropoietin on ischemia-reperfusion injury: an experimental study in a rat TRAM flap model. Plast Reconstr Surg. 2007;120:1774–81.
Taleb S, Moghaddas P, Rahimi Balaei M, Taleb S, Rahimpour S, Abbasi A et al. Metformin improves skin flap survival through nitric oxide system. J Surg Res. 2014;192:686–91.
He F, Li J, Liu Z, Chuang CC, Yang W, Zuo L. Redox mechanism of reactive oxygen species in exercise. Front Physiol. 2016;7:486.
Sirota TV, Zakharchenko MV, Kondrashova MN. Cytoplasmic superoxide dismutase activity is a sensitive indicator of the antioxidant status of the rat liver and brain. Biomed Khim. 2014;60:63–71.
Boal F, Timotin A, Roumegoux J, Alfarano C, Calise D, Anesia R et al. Apelin-13 administration protects against ischaemia/reperfusion-mediated apoptosis through the FoxO1 pathway in high-fat diet-induced obesity. Br J Pharm. 2016;173:1850–63.
Xiao-Xiao T, Sen-Min W, Ding-Sheng L. Effects of vinpocetine on random skin flap survival in rats. J Reconstr Microsurg. 2013;29:393–8.
Chung KI, Kim HK, Kim WS, Bae TH. The effects of polydeoxyribonucleotide on the survival of random pattern skin flaps in rats. Arch Plast Surg. 2013;40:181–6.
Cheng L, Chen T, Tu Q, Li H, Feng Z, Li Z et al. Naringin improves random skin flap survival in rats. Oncotarget. 2017;8:94142–50.
Cai L, Huang W, Lin D. Effects of traditional Chinese medicine Shuxuetong injection on random skin flap survival in rats. ScientificWorldJournal. 2014;2014:816545.
Cai L, Cao B, Lin D. Effects of traditional chinese medicine huangqi injection (Radix astragali) on random skin flap survival in rats. J Reconstr Microsurg. 2015;31:565–70.