Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Một phương pháp nhân giống mô cải tiến của Terminalia bellirica từ mẫu mô nút của cây trưởng thành
Tóm tắt
Một phương pháp nhân giống mô in vitro hiệu quả và cải tiến đã được phát triển cho cây Terminalia bellirica, một loài cây có giá trị dược liệu, từ các mẫu mô nút của cây trưởng thành 10 năm tuổi. Việc nhân nhánh phụ thuộc không chỉ vào loại cytokinin, nồng độ của chúng và mối quan hệ giữa cytokinin với auxin mà còn vào việc chuyển giao liên tiếp các mẫu mô mẹ qua nhiều lần khác nhau, việc cấy ghép các nhánh đã cắt lên môi trường mới và thành phần môi trường khác nhau. Môi trường MS chứa 2.22 μM BAP được xác định là tốt nhất cho việc nhân nhánh trong một bước. Sau khi cắt bỏ các nhánh mới hình thành, các mẫu mô mẹ được chuyển liên tiếp đến cùng một môi trường đã tạo ra tối đa nhánh cho mỗi mẫu mô sau lần IV. Phản ứng hình thành mô được tăng cường hơn nữa khi các cụm nhánh đã cắt (2–3 nhánh) được cấy ghép trên môi trường MS bổ sung 2.22 μM BAP, 1.16 μM Kn và 0.57 μM IAA. Môi trường MS nửa cường độ bổ sung 24.60 μM IBA và 100 mg l−1 AC là hiệu quả nhất cho việc ra rễ của các nhánh. Để giảm thiểu lao động, chi phí và thời gian, một thí nghiệm về ra rễ ex vitro cũng đã được tiến hành và quan sát rằng tỷ lệ các nhánh ra rễ ex vitro cao nhất khi được điều trị với 2,460 μM IBA trong 5 phút. Các cây con ra rễ in vitro cũng như ex vitro đã được thích nghi thành công dưới điều kiện nhà kính. So với các cây con phát triển từ cây con ra rễ in vitro, tỷ lệ sống sót của các cây được ra rễ ex vitro cao hơn một cách đáng kể. Việc sử dụng kỹ thuật ra rễ ex vitro cho sản xuất cây giống là một lựa chọn tiết kiệm hơn; do đó, phương pháp hiện tại có thể được sử dụng cho sản xuất thương mại quy mô lớn của loài cây có giá trị dược liệu này.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Asthana P, Jaiswal VS, Jaiswal U (2011) Micropropagation of Sapindus trifoliatus L. and assessment of genetic fidelity of micropropagated plants using RAPD analysis. Acta Physiol Plant 33:1821–1829
Borkowska B (2001) Morphological and physiological characteristics of micropropagated strawberry plants rooted in vitro or ex vitro. Sci Hortic 89:195–206
Giri C, Shyamkumar B, Anjaneyulu C (2004) Progress in tissue culture, genetic transformation and applications of biotechnology to trees: an overview. Trees Struct Funct 18:115–135
Jeong JH, Murthy HN, Paek KY (2001) High frequency adventitious shoot induction and plant regeneration from leaves of statice. Plant Cell Tissue Organ Cult 65:123–128
Klerk GJD (2002) Rooting of microcuttings: theory and practice. In Vitro Cell Dev Biol Plant 38:415–422
Lloyd G, McCown B (1981) Commercially feasible micropropagation of Mountain Laurel Kalmia latifolia by use of shoot tip culture. Int Plant Prop Soc 30:421–427
Loc HN, Due TD, Kwon HT, Yang SM (2005) Micropropagation of zedoary (Curcuma zedoaria Roscoe): a valuable medicinal plant. Plant Cell Tissue Organ Cult 81:119–122
Malik SK, Chaudhury R, Kalia RK (2005) Rapid in vitro multiplication and conservation of Garcinia indica: a tropical medicinal tree species. Sci Hortic 106:539–553
Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15:473–497
Pan MJ, Staden JV (1998) The use of charcoal in in vitro culture—a review. Plant Growth Reg 26:155–163
Pandey S, Singh M, Jaiswal U, Jaiswal VS (2006) Shoot initiation and multiplication from a tree of Terminalia arjuna Roxb. In Vitro Cell Dev Biol Plant 42:389–393
Pena L, Seguin A (2001) Recent advances in the genetic transformation of trees. Trends Biotechnol 19:500–506
Phulwaria M, Ram K, Gahlot P, Shekhawat NS (2011) Micropropagation of Salvadora persica- a tree of arid horticulture and forestry. New For. doi:10.1007/s11056-011-9254-z
Rai MK, Asthana P, Jaiswal VS, Jaiswal U (2010) Biotechnological advances in guava (Psidium guajava L.): recent developments and prospects for further research. Trees Struct Funct 24:1–12
Ramesh M, Umate P, Rao KV, Sadanandam A (2005) Micropropagation of Terminalia bellirica Roxb.—a sericulture and medicinal plant. In Vitro Cell Dev Biol Plant 41:320–323
Rathore TS, Deora NS, Shekhawat NS (1992) Cloning of Maytenus emarginata (Wild) Ding Hou—a tree of the Indian desert, through tissue culture. Plant Cell Rep 11:449–451
Rathore P, Suthar R, Purohit SD (2008) Micropropagation of Terminalia bellerica Roxb. from juvenile explants. Indian J Biotechnol 7:246–249
Roy SK, Pal PK, Das AK (1987) Propagation of a timber tree Terminalia bellerica Roxb. by tissue culture. Bangladesh J Bot 16:125–130
Shekhawat MS, Shekhawat NS (2011) Micropropagation of Arnebia hispidissima (Lehm) DC. and production of alkannin from callus and cell suspension culture. Acta Physiol Plant 33:1445–1450
Shekhawat NS, Rathore TS, Singh RP, Deora NS, Rao SR (1993) Factors affecting in vitro clonal propagation of Prosopis cineraria. Plant Growth Regul 12:273–280
Shekhawat NS, Singh RP, Deora NS, Kaur G, Kotwal RC, Choudhary N (1998) Micropropagation of plants of stressed ecosystems. In: Srivastava PS (ed) Plant tissue culture and molecular biology: application and prospects. Narosa Publishing House, New Delhi, pp 579–586
Srikumar R, Jeya PN, Manikandan S, Sathya NG, Sheela DR (2006) Effect of Triphala on oxidative stress on cell-mediated immune response against noise stress in rats. Mol Cell Biochem 283:67–79
Suthar RK, Rathore P, Purohit SD (2009) In vitro growth and shoot multiplication in Terminalia bellerica Roxb. under control carbon dioxide environment. Indian J Exp 47:204–209
Tiwari SK, Tiwari KP, Siril EA (2002) An improved micropropagation protocol for teak. Plant Cell Tissue Organ Cult 71:1–6
Tripathi M, Kumari N (2010) Micropropagation of a tropical fruit tree Spondias mangifera Willd. through direct organogenesis. Acta Physiol Plant 32:1011–1015
Yan H, Liang C, Yang L, Li Y (2010) In vitro and ex vitro rooting of Siratia grosvenorii, a traditional medicinal plant. Acta Physiol Plant 32:115–120
Zhang H, Horgan KJ, Reynolds PH, Jameson PE (2010) 6-Benzyladenine metabolism during reinvigoration of mature Pinus radiate buds in vitro. Tree Physiol 30:514–526