Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Một phương pháp cải tiến để cho ăn in vitro đối với con cái trưởng thành của Dermanyssus gallinae (bọ đỏ gia cầm) sử dụng màng Baudruche (da lừa)
Tóm tắt
Dermanyssus gallinae, hay còn gọi là bọ đỏ gia cầm (PRM), là một loài ký sinh trùng ngoại ký sinh quan trọng ở gà đẻ, có ảnh hưởng đáng kể đến phúc lợi động vật và có khả năng gây thiệt hại kinh tế. Việc thử nghiệm các hợp chất kiểm soát mới thường liên quan đến các phương pháp in vitro trước khi đánh giá in vivo. Lịch sử cho thấy các phương pháp in vitro đã liên quan đến việc PRM ăn máu gà qua một màng ngăn. Việc sử dụng máu gà yêu cầu nhiều quy trình (lấy máu) để cung cấp đủ chất liệu, và việc sử dụng một loài lớn hơn (ví dụ như ngỗng) có thể được coi là một cải tiến trong việc sử dụng động vật trong nghiên cứu. Thiết bị cho ăn in vitro được sử dụng là thiết bị hiện tại sử dụng màng Parafilm™ M (Bartley et al.: Int J Parasitol. 45:819–830, 2015). Loài PMR cái trưởng thành đã được sử dụng để điều tra bất kỳ sự khác biệt nào trong việc ăn uống, đẻ trứng và tỷ lệ tử vong khi được cho ăn máu ngỗng hoặc máu gà. Các ảnh hưởng đến các tham số này khi PRM được cho ăn qua màng Parafilm™ M hoặc màng Baudruche riêng lẻ hoặc qua sự kết hợp của màng với lưới polyester phủ lên đã được kiểm tra bằng máu ngỗng. Bọ đỏ gia cầm ăn tốt tương đương trên máu ngỗng hoặc máu gà qua màng Parafilm™ M, và không có sự khác biệt đáng kể nào về tỷ lệ tử vong của PRM được cho ăn với loại máu nào. Một sự gia tăng đáng kể (kiểm định t: t = 3.467, df = 4, P = 0.03) trong số trứng được đẻ trên mỗi con bọ được cho ăn đã được quan sát khi sử dụng máu ngỗng. Một sự tăng 70% trong việc cho ăn PRM đã được ghi nhận khi bọ được cho ăn máu ngỗng qua màng Baudruche so với việc chúng được cho ăn máu ngỗng qua màng Parafilm™ M. Việc thêm lưới polyester phủ không cải thiện tỷ lệ cho ăn. Một sự gia tăng đáng kể (phân tích phương sai: F(3, 20) = 3.193, P = 0.04) trong việc đẻ trứng của PRM đã được quan sát ở các con bọ được cho ăn máu ngỗng qua màng Baudruche so với những con được cho ăn máu ngỗng qua màng Parafilm™ M. Một trung bình là 1.22 (lỗi chuẩn trung bình ± 0.04) trứng trên mỗi con bọ được cho ăn đã được thu được bằng cách sử dụng thiết bị cho ăn Baudruche so với chỉ 0.87 (SEM ± 0.3) trứng trên mỗi con bọ được cho ăn bằng thiết bị Parafilm™ M khi không có sự kết hợp nào với lưới polyester phủ lên. Việc cho ăn in vitro các con cái trưởng thành của PRM có thể được thực hiện dễ dàng thông qua việc sử dụng máu ngỗng trong các thiết bị cho ăn với màng Baudruche.
Từ khóa
#Dermanyssus gallinae #bọ đỏ gia cầm #màng Baudruche #phương pháp cho ăn in vitro #phúc lợi động vật #nghiên cứu ký sinh trùng.Tài liệu tham khảo
Sigognault Flochlay A, Thomas E, Sparagano O. Poultry red mite (Dermanyssus gallinae) infestation: a broad impact parasitological disease that still remains a significant challenge for the egg-laying industry in Europe. Parasites Vectors. 2017;10:357.
Sparagano OA, George DR, Harrington DW, Giangaspero A. Significance and control of the poultry red mite Dermanyssus gallinae. Annu Rev Entomol. 2014;59:447–66.
Sommer D, Heffels-Redmann U, Köhler K, Lierz M, Kaleta EF. Role of the poultry red mite (Dermanyssus gallinae) in the transmission of avian influenza A virus. Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere. 2016;44:26–33.
Thomas E, Chiquet M, Sander B, Zschiesche E, Flochlay AS. Field efficacy and safety of fluralaner solution for administration in drinking water for the treatment of poultry red mite (Dermanyssus gallinae) infestations in commercial flocks in Europe. Parasites Vectors. 2017;10:457.
Wright HW, Bartley K, Nisbet AJ, et al. The testing of antibodies raised against poultry red mite antigens in an in vitro feeding assay; preliminary screen for vaccine candidates. Exp Appl Acarol. 2009;48:81–91.
Bartley K, Turnbull F, Wright HW, et al. Field evaluation of poultry red mite (Dermanyssus gallinae) native and recombinant prototype vaccines. Vet Parasitol. 2017;244:25–34.
Arkle S, George DR, Guy JH, Sparagano OAE. Comparison of in vitro survival and fecundity rates or the poultry red mite Dermanyssus gallinae. Res Vet Sci. 2010;88:279–80.
Bruneau A, Dernburg A, Chauve C, Zenner L. First in vitro cycle of the chicken mite, Dermanyssus gallinae (DeGeer 1778), utilizing an artificial feeding device. Parasitology 2001;123(Pt 6):583–9.
Bartley K, Wright HW, Huntley JF, et al. Identification and evaluation of vaccine candidate antigens from the poultry red mite (Dermanyssus gallinae). Int J Parasitol. 2015;45:819–30.
Harrington D, Guy J, Robinson K, Sparagano O. Comparison of synthetic membranes in the development of an in vitro feeding system for Dermanyssus gallinae. Bull Entomol Res. 2010;100:127–32.
Nunn F, Bartley K, Palarea Albaladejo J, et al. A novel, high-welfare methodology for evaluating poultry red mite interventions in vivo. Vet Parasitol. 2019;267:42–6.
McDevitt R, Nisbet AJ, Huntley JF. Ability of a proteinase inhibitor mixture to kill poultry red mite, Dermanyssus gallinae in an in vitro feeding system. Vet Parasitol. 2006;141(3–4):380–5.
Trentelman JJA, Teunissen H, Kleuskens JAGM, et al. A combination of antibodies against Bm86 and Subolesin inhibits engorgement of Rhipicephalus australis (formerly Rhipicephalus microplus) larvae in vitro. Parasites Vectors. 2019;12(1):362.
Schmidt ML. Laboratory culture of two Phlebotomous species, P. papatasi and P. orientalis. Bull WHO. 1964;31(4):577–8.
Krull C, Böhme B, Clausen PH, Nijhof AM. Optimization of an artificial tick feeding assay for Dermacentor reticulatus. Parasites Vectors. 2017;10(1):60.
Kröber T, Guerin PM. In vitro feeding assays for hard ticks. Trends Parasitol. 2007;23(9):445–9.
Kuhnert F, Diehl PA, Guerin PM. The life-cycle of the bont tick Amblyomma hebraeum in vitro. Int J Parasitol. 1995;25(8):887–96.