Liệu pháp thay thế để quản lý viêm tai giữa do nấm đa kháng thuốc

Archiv für Mikrobiologie - Tập 202 - Trang 1231-1240 - 2020
M. F. Ghaly1, A. A. Shaheen2, A. M. Bouhy1, M. M. Bendary3
1Microbiology Department, Faculty of Science, Zagazig University, Zagazig, Egypt
2Microbiology and Immunology Department, Faculty of Medicine, Zagazig University, Zagazig, Egypt
3Microbiology and Immunology Department, Faculty of Pharmacy, Port Said University, Zagazig, Egypt

Tóm tắt

Trong vài thập kỷ qua, sự gia tăng tình trạng nhiễm nấm đa kháng thuốc (MDR) đã trở thành một mối đe dọa đang nổi lên đối với sức khỏe cộng đồng. Do đó, điều quan trọng là cần làm sáng tỏ việc sử dụng liệu pháp thay thế để điều trị nhiễm nấm MDR. Nghiên cứu này được thực hiện nhằm làm rõ việc sử dụng chiết xuất thực vật và tinh dầu, hoặc kết hợp với các thuốc chống nấm khác để điều trị viêm tai giữa do nấm MDR gây ra. Thực vật y học được coi là nguồn an toàn và rẻ hơn so với các thuốc chống nấm hóa học. Hai mươi mốt chủng nấm được tách ra từ 104 mẫu dịch tai của bệnh nhân mắc viêm tai giữa đã được xác định thông qua các phương pháp kiểu hình và kiểu gen. Phương pháp phân lập kháng sinh đã được sử dụng để xác định các chủng MDR. Độ nhạy của các chủng nấm MDR đã được thử nghiệm chống lại nhiều chiết xuất thực vật và tinh dầu, hoặc kết hợp với các thuốc chống nấm khác. Dầu cây thì là và chiết xuất đinh hương đã chứng minh có tác dụng hiệp đồng, gợi ý việc sử dụng chúng trong điều trị nhiễm nấm, đặc biệt là viêm tai giữa do nấm MDR. Cấu trúc siêu vi phân của các chủng nấm MDR đã cho thấy sự phá hủy hoàn toàn sau khi tiếp xúc với các vật liệu đã sử dụng khi quan sát dưới kính hiển vi truyền qua (TEM). Dầu cây thì là và chiết xuất đinh hương được xác định là các tác nhân hiệu quả nhất chống lại các chủng nấm MDR và chúng có tiềm năng trở thành công cụ hữu ích trong việc quản lý nhiễm nấm gây viêm tai giữa.

Từ khóa

#nấm đa kháng thuốc #viêm tai giữa #liệu pháp thay thế #chiết xuất thực vật #tinh dầu

Tài liệu tham khảo

Aligiannis N, Kalpoutzakis E, Chinou IB, Mitakou S, Gikas E, Tsarbopoulos A (2001) Composition and antimicrobial activity of the essential oils of five taxa of Sideritis from Greece. J Agric Food Chem 49:811–815 Amber K, Aijaz A, Immaculata X, Luqman K, Nikhat M (2010) Anticandidal effect of Ocimum sanctum essential oil and its synergy with fluconazole and ketoconazole. Phytomedicine 17:921–925 Ausubel FM, Brent R, Kingston RE, Moore DD, Seidman JG, Smith A, wiely SK (1995) Short protocols in molecular biology. John Willey and Sons, Inc, NY. https://doi.org/10.1016/0168-9525(96)81467-3 Barnett HL, Hunter B (1972) Illustrated genera of imperfect fungi, 3rd edn. Burges Publishing Company, USA Bauer AW, Kirby WM, Sherris JC, Turk M (1966) Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Am J Clin Pathol 45:493–496 Burt S (2004) Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods—a review. Int J Food Microbiol 94:223–253 Canillac N, Mourey A (2001) Antibacterial activity of the essential oil of Picea excelsa on Listeria, Staphylococcus aureus and coliform bacteria. Food Microbiol 18:261–268 Collins C, Lyne P (1984) Microbiological methods, 5th edn. Butter-Worth and Co-Publisher Ltd., Ibadan, pp 300–345 Davey K, Holmes A, Johnson E, Szekeley A, Warnock D (1998) Comparative evaluation of broth microdilution methods for antifungal drug susceptibility using Candida species and Cryptococcus neoformans. J Clini Microbiol 36:925–930 Elgayyar M, Draughon FA, Golden DA, Mount JR (2001) Antimicrobial activity of essential oils from plants against selected pathogenic and saprophytic microorganisms. J Food Prot 64:1019–1024 Farag S, Soliman NA (2011) Biodegradation of crude petroleum oil and environmental pollutants by C. tropicalis strain. Braz Arch Biol Technol 54:821–830 Fichtenbaum C, Koletar S, Yiannoutsos C, Holland F, Pottage J, Cohn S (2000) Refractory mucosal candidiasis in advanced human immunodeficiency virus infection. Clin Infect Dis 30:749–756 Gokale K, Suligavi S, Baragundi M, Anushka D, Manjula R (2013) A clinicomycological study. Int J Med Health Sci 2:218–223 Gucwa K, Milewski S, Dymerski T, Szweda P (2018) Investigation of the antifungal activity and mode action of Thymus vulgaris, Citrus limonum, Pelargonium graveolens, Cinnamomum cassia, Ocimum basilicum, and Eugenia caryophyllus essential oils. Molecules 23:E1116 Gupta B, Berridge M (1966) Fine structural organization of the rectum in the blow fly Calliphora erthrocephala (Meig) with reference to connective tissue trachea and neurosecretory innervation of the rectal papillae. J Morph 120:23–28 Hasantha G, Leigh H, Peter M, Jonathan C (2008) The global burden of childhood otitis media and hearing impairment: a systemic review. Pediatrics 121:S1–7. https://doi.org/10.1542/peds.2007-2022QQ Hazama M, Mohd M, Habsah H, Wong CY (2017) Does fungal infection is the main cause for persistent middle ear otorrhea?. Egyptian Journal of E.N.T and Allied Sciences 18: 79–82. Khan M, Malik A, Ahmad I (2012) Anticandidal activity of essential oils alone and in combination with amphotericin B or fluconazole against multi-drug resistant isolates of Candida albicans. Med Mycol 50:33–42 Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn C (1997) Introduction to microbiology part I: the role of the microbiology laboratory in the diagnosis of infectious diseases. Guidelines to practice and management in “Color atlas and text book of diagnostic microbiology”. Fifth edition, Pp. 69–120. Philadelphia Krumperman P (1983) Multiple antibiotic resistance indexing of Escherichia coli to identify high-risk sources of fecal contamination of foods. Appl Environ Microbiol 46:165–170 Lo´pez-Malo A, Alzamora S, Palou E (2005) Aspergillus flavus growth in the presence of chemical preservatives and naturally occurring antimicrobial compounds. Int J Food Microbiol 99:119–128 Lucente F (1993) Fungal infections of the external ear. Otolaryngol Clin North Am 26:995–1006 Milne L, Mitchell T (1996) In: Mackie and Mc Cartney. Practical medical microbiology, 14th (ed.), vol 38. pp 537–541 Mittal R, Rana A, Jaitak V (2018) Essential oils: an impending substitute of synthetic antimicrobial agents to overcome antimicrobial resistance. Curr Drug Targets 20:605 Mushi M, Buname G, Bader O, Groß U, Mshana S (2016) Aspergillus fumigatus carrying TR34/L98H resistance allele causing complicated suppurative otitis media in Tanzania: call for improved diagnosis fungi in sub-Saharan Africa. BMC Infect Dis 2:464 Clinical Laboratory Standards (2008) Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of filamentous fungi. Approved standard–second edition M38-A2. Wayne, PA19087 USA Pajor A, Durko M, Jankowski A, Bartoszko T, Stańczyk R (2006) Bacteriological evaluation in chronic otitis media. Otolaryngol Pol 60:757–763 Pauli A (2001) Antimicrobial properties of essential oil constituents. Int J Aromatherapy 11:126–133 Paulose K, Al-Khalifa S, Shenoy P, Sharma K (1989) Mycotic infection of the ear (otomycosis): a prospective study. J Laryngol Otol 103:30–35 Rajkowska K, Kunicka S, Maroszyńska M (2017) Selected essential oils as antifungal agents against antibiotic-resistant Candida spp.: In vitro study on clinical and food-borne isolates. Microb Drug Resist 23:18–24 Rasooli I, Owlia P (2005) Chemoprevention by thyme oils of Aspergillus parasiticus growth and aflatoxin production. Phytochemistry 66:2851–2856 Recio M, Rios J, Villar A (1989) Antimicrobial activity of selected plants employed in Spanish Mediterranean area. Part tiphytother Res 3:77–80 Saad A, Fadli M, Bouaziz M, Benharref A, Mezrioui N, Hassani L (2010) Anticandidal activity of the essential oils of Thymus maroccanus and T.broussonetii and their synergism with amph B and fluconazole. Phytomedicine 17:1057–1060 Sievers F, Wilm A, Dineen D (2011) Fast, scalable generation of high-quality protein multiple sequence alignments using Clustal Omega. Mol Syst Biol 7:539 Smith M, Navilliat P (1997) A new protocol for antimicrobial testing of oils. J Microbiol Methods 28:21–24 Sptempack J, Ward R (1969) An improved staining for electron microscopy. J Cell Biol 22:679–701 Tambekar D, Dhanorkar D, Gulhane S, Khandelwal V, Dudhane M (2006) Antibacterial susceptibility of some urinary tract pathogens to commonly used antibiotics. Afr J Biotechnol 5:17 Tavernier E, Desnos-Ollivier M, Honeyman F, Srour M, Fayard A, Cornillon J (2015) Development of echinocandin resistance in Candida krusei isolates following exposure to micafungin and caspofungin in a BM transplant unit. Bone Marrow Transplant 50:158–160 Tortorano A, Kibbler C, Peman J (2006) Candidaemia in Europe: epidemiology and resistance. Int J Antimicrob Agents 27:359–366 Wan J, Wilcock A, Coventry M (1998) The effect of essential oils of basil on the growth of Aeromonas hydrophila and Pseudomonas fluorescens. J Appl Microbiol 84:152–158 Yangmin G, Zhan P, Hagen F, Menken SB, Sun J, Rezaei MA, de Hoog S (2018) Molecular epidemiology and in vitro antifungal susceptibility of Trichophyton schoenleinii, agent of tinea capitis favosa. Mycoses 52:5 Yehia M, Al-Habib H, Shehab N (1990) Otomycosis: a common problem in North Iraq. J Laryngol Otol 104:387–389 Yoshida T, Jono K, Okonogi K (1997) modified agar dilution susceptibility testing method for determining in vitro activities of antifungal agents, including azole compounds, antimicrob agents chemother. 41: 1349–51 Zaika L (1988) Spices and herbs: their antimicrobial activity and its determination. J Food Saf 9:97–118