Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tái sinh chồi bất định từ các mẫu lá của cây hạnh nhân (Prunus dulcis mill.)
Tóm tắt
Một phương pháp đã được phát triển để thúc đẩy sự hình thành chồi từ các mẫu lá của cây hạnh nhân. Những chiếc lá được mổ xẻ từ các văn hóa chồi vi sinh của các giống thương mại Nonpareil và Ne Plus Ultra, và các phần mẫu được ủ trên môi trường cơ bản Almehdi và Parfitt (1986) (AP) với các điều kiện điều hòa tăng trưởng thực vật khác nhau. Ba auxin, bao gồm axit 2,4-dichlorophenoxyacetic (2,4-D), axit α-naphthaleneacetic (NAA), và axit indole-3-butyric (IBA), được thử nghiệm kết hợp với hai cytokinins, benzylaminopurine (BA) và thidiazuron (TDZ), ở các nồng độ khác nhau cùng với hydrolysate casein (CH) nhằm xác định các điều kiện thuận lợi nhất cho sự tái sinh chồi bất định. Phản ứng với các điều kiện điều hòa tăng trưởng thực vật được thử nghiệm thay đổi theo kiểu gen. Trong số ba auxin được thử, NAA và IBA đã kích thích sự hình thành chồi bất định từ các mẫu Ne Plus Ultra, nhưng chỉ có IBA là hiệu quả cho Nonpareil. Đối với các cytokinins, sự phát triển chồi từ Ne Plus Ultra xảy ra trong sự hiện diện của cả BA và TDZ, trong khi đó đối với Nonpareil chỉ có TDZ là hiệu quả trừ khi CH được bổ sung vào môi trường cơ bản. Việc bổ sung CH (0.1% w/v) cải thiện hình thái callus và tăng tần suất tái sinh cho cả hai giống cây. Tần suất tái sinh tối đa cho Ne Plus Ultra (44.4%) và Nonpareil (5.5%) đã đạt được trên muối cơ bản AP được bổ sung với CH, IBA (9.8 μM), và TDZ ở nồng độ 22.7 và 6.8 μM, tương ứng.
Từ khóa
#tái sinh chồi #mẫu lá #cây hạnh nhân #điều hòa tăng trưởng thực vật #giống Nonpareil #giống Ne Plus Ultra #axit #cytokininsTài liệu tham khảo
Almehdi, A. A.; Parfitt, D. E. In vitro propagation of peach: 1. Propagation of Lovell and Nemaguard peach rootstocks. Fruit Var. J. 40:12–17; 1986.
Antonelli, M. Regeneration from almond cotyledons: induction of proembryonal masses. Acta Hort. 300:255–259; 1991.
Antonelli, M.; Druart, P. The use of a brief 2,4-D treatment to induce leaf regeneration on Prunus canescens Bois. Acta Hort. 280:45–50; 1990.
Bimal, R.; Jha, K. K. Role of cytokinin in shoot bud differentiation from endosperm of Prunus amygdalus Baill. J. Plant. Anat. Morphol. 2:63–66; 1985.
Cao, X.; Liu, Q.; Rowland, L. J.; Hammerschlag, F. A. GUS expression in blueberry (Vaccinium spp.): factors influencing Agrobacterium-mediated gene transfer efficiency. Plant Cell Rep. 18:266–270; 1998.
Chevreau, E.; Skirvin, R. M.; Abu-Qaoud, H. A.; Korban, S. S.; Sullivan, J. G. Adventitious shoot regeneration from leaf tissue of three pear (Pyrus sp.) cultivars in vitro. Plant Cell Rep. 7:688–691; 1989.
De Bondt, A.; Eggermont, K.; Druart, P.; De Vil, M.; Goderis, I.; Vanderleyden, J.; Broekaert, W. F. Agrobacterium-mediated transformation of apple (Malus × domestica Borkh.): an assessment of factors affecting gene transfer efficiency during early transformation steps. Plant Cell Rep. 13:587–593; 1994.
Escalettes, V.; Dosba, F. In vitro adventitious shoot regeneration from leaves of Prunus spp. Plant Sci. 90:201–209; 1993.
Fasolo, F.; Zimmerman, R. H.; Fordham, I.: Adventitious shoot formation on excised leaves of in vitro grown shoots of apple cultivars. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 16:75–87; 1989.
George, E. F. Plant propagation by tissue culture. Part 1: The technology, 2nd edn. London: Exegetics Ltd.; 1993:285–291.
Hammatt, N.; Grant, N. J. Shoot regeneration from leaves of Prunus serotina Ehrh. (black cherry) and P. avium L. (wild cherry). Plant Cell Rep. 17:526–530; 1998.
Hammerschlag, F. A.; Zimmerman, R. H.; Yadava, U. L.; Hunsucker, S.; Gercheva, P. Effect of antibiotics and exposure to an acidified medium on the elimination of Agrobacterium tumefaciens from apple leaf explants and on shoot regeneration. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 122:758–763; 1997.
Hisajima, S. Multiple shoot formation from almond seeds and an excised single shoot. Agric. Biol. Chem. 46:1091–1093; 1982.
Huetteman, C. A.; Preece, J. E. Thidiazuron: a potent cytokinin for woody plant tissue culture. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 33:105–119; 1993.
James, D. J.; Passey, A. J.; Malhotra, S. B. Organogenesis in callus derived from stem and leaf tissues of apple and cherry rootstocks. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 3:333–341; 1984.
Lane, W. D.; Iketani, H.; Hayashi, T. Shoot regeneration from cultured leaves of Japanese pear (Pyrus pyrifolia). Plant Cell Tiss. Org. Cult. 54:9–14; 1998.
Litz, R. E.; Gray, D. J. Organogenesis and somatic embryogenesis. In: Hammerschlag, F. A.; Litz, B. E., eds., Biotechnology of perennial fruit crops. Wallingford, UK: CAB International; 1992:169–200.
Lu, C. The use of thidiazuron in tissue culture. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant. 29:92–96; 1993.
Mehra, A.; Mehra, P. N. Organogenesis and plantlet formation in vitro in almond. Bot. Gaz. 135:61–73; 1974.
Miguel, C. M.; Druart, P.; Oliveira, M. M. Shoot regeneration from adventitious buds induced on juvenile and adult almond (Prunus dulcis Mill.) explants. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 32:148–153; 1996.
Murashige, T.; Skoog, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15:473–497; 1962.
Pawlicki, N.; Welander, M. Adventitious shoot regeneration from leaf segments of in vitro cultured shoot of the apple rootstock Jork 9. J. Hort. Sci. 69:687–696; 1994.
Quoirin, M.; Lepoivre, P. Etude de milieux adaptes aux cultures in vitro de Prunus. Acta Hort. 78:437–442; 1977.
Singh, Z.; Sansavini, S. Genetic transformation and fruit crop improvement. In: Janick, J., ed. Plant breeding reviews 16. New York: John Wiley and Sons, Inc.; 1998:87–134.
Sriskandarajah, S.; Goodwin, P. B.; Speirs, P. Genetic transformation of the apple scion cultivar Delicious via Agrobacterium tumefaciens. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 36:317–329; 1994.
van Nieuwkerk, J. P.; Zimmerman, R. H.; Fordham, I. Thidiazuron stimulation of apple shoot proliferation in vitro. HortSci. 21:516–518; 1986.