Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Rễ phát sinh tự phát ở lá Arabidopsis thaliana bị cắt rời
Tóm tắt
Arabidopsis thaliana Heyhn là một loài mô hình trong nghiên cứu sinh hóa, sinh lý và phân tử, với rất nhiều đột biến sẵn có. Công trình này nhằm phát triển một hệ thống để tạo rễ từ lá bị cắt rời, và đánh giá sự biến động theo thời gian của một số tham số sinh hóa liên quan trong các thử nghiệm tạo rễ có và không có auxin. Mô hình tạo rễ là loại trực tiếp (không có sự hình thành callus) trong tất cả các điều trị và kiểu sinh thái được phân tích và khá ổn định. Xét về các tham số khác nhau đã được kiểm tra, hoạt tính peroxidase và hàm lượng các hợp chất phenolic cùng với đường hòa tan xuất hiện như những dấu hiệu sinh hóa đặc trưng nhất của quá trình tạo rễ trong hệ thống này.
Từ khóa
#Arabidopsis thaliana #tạo rễ #lá bị cắt rời #hoạt tính peroxidase #hợp chất phenolic #đường hòa tanTài liệu tham khảo
Ahkami, A.H., Lischewski, S., Haensch, K.-T., Porfirova, S., Hofmann, J., Rollestschek, H., Melzer, M., Franken, P., Hause, B., Druge, U., Hajirezaei, M.: Molecular physiology of adventitious root formation in Petunia hybrida cuttings: involvement of wound response and primary metabolism. — New Phytol. 181: 613–625, 2009.
Akond, A.S.M.G.M., Khandaker, L., Berthold, J., Gates, L., Peters, K., Delong, H., Hossain, K.: Anthocyanin, total polyphenols and antioxidant activity of common bean. — Amer. J. Food Technol. 6: 385–394, 2011.
Boerjan, W., Cervera, M.T., Delarue, M., Beeckman, T., Dewitte, W., Bellini, C., Caboche, M., Van Onckelen, H., Montagu, M.V., Inze, D.: Superroot, a recessive mutation in Arabidopsis, confers auxin overproduction. — Plant Cell 7: 1405–1419, 1995.
Bradford, M.M.: Rapid and sensitive method for quantitation of microgram quantities of protein utilizing principle of protein-dye binding. — Anal. Biochem. 72: 248–254. 1976.
Chatterjee, M., Sharma, P., Khurana, J.P.: Cryptochrome 1 from Brassica napus is up-regulated by blue light and controls hypocotyls/stem growth and anthocyanin accumulation. — Plant Physiol. 141: 61–74, 2006.
Correa, L.R., Fett-Neto, A.G.: Effects of temperature on adventitious root development in microcuttings of Eucalyptus saligna Smith and Eucalyptus globulus Labill. — J. Therm. Biol. 29: 315–324, 2004.
Correa, L.R., Paim, D.C., Schwambach, J., Fett-Neto, A.G.: Carbohydrates as regulatory factors on the rooting of Eucalyptus saligna Smith and Eucalyptus globulus Labill. — Plant Growth Regul. 45: 63–73, 2005.
Das, A., Kesari, V., Rangan, L.: Plant regeneration in Curcuma species and assessment of genetic stability of regenerated plants. — Biol. Plant. 54: 423–429, 2010.
De Klerk, G.J., Van der Krieken, W., De Jong, J.C.: The formation of adventitious roots: new concepts, new possibilities. — In Vitro cell. dev. Biol. Plant 35: 189–199, 1999.
El Euch, C., Jay-Allemand, C., Pastuglia, M., Doumas, P., Charpentier, J.P., Capelli, P., Jouanin, L.: Expression of antisense chalcone synthase RNA in transgenic hybrid walnut microcuttings. Effect on flavonoid content and rooting ability. — Plant mol. Biol. 38: 467–479, 1998.
Fett-Neto, A.G., Fett, J.P., Goulart, L.W., Pasquali, G., Termignoni, R.R., Ferreira, A.G.: Distinct effects of auxin and light on adventitious root development in Eucalyptus saligna Smith and Eucalyptus globulus Labill. — Tree Physiol. 21: 457–464, 2001.
Fett-Neto, A.G., Teixeira, S.L., Da Silva, E.A.M., Santanna, R.: Biochemical and morphological changes during in vitro rhizogenesis of Sequoia sempervirens (Don,D.) Endl. — J. Plant Physiol. 140: 720–728, 1992.
Fogaça, C.M., Fett-Neto, A.G.: Role of auxin and its modulators in the adventitious rooting of Eucalyptus species differing in recalcitrance. — Plant Growth Regul. 45: 1–10, 2005.
Folin, O., Ciocalteu, V.: On tyrosine and tryptophane determinations in proteins. — J. biol. Chem. 73: 649–672, 1927.
Genéve, R.L.: Patterns of adventitious root formation in English ivy. — J. Plant. Growth Regul. 10: 215–220, 1991.
Husen, A.: Clonal propagation of Dalbergia sissoo Roxb. and associated metabolic changes during adventitious root primordium development. — New Forest. 36:13–27, 2008.
Kaliamoorthy, S., Naidoo, G., Achar, P.: Micropropagation of Harpagophytum procumbens. — Biol. Plant. 52: 191–194, 2008.
Lev-Yadun, S., Gould, K.S.: What do red and yellow autumn leaves signal? — Bot. Rev. 73: 279–289, 2007.
Lüdwig-Müller, J., Vertocnik, A., Town, C.D.: Analysis of indole-3-butyric acid-induced adventitious root formation on Arabidopsis stem segments. — J. exp. Bot. 56: 2095–2105, 2005.
McCready, R.M., Guggolz, J., Silviera, V., Owens, H.S.: Determination of starch and amylase in vegetables — application to peas. — Anal. Chem. 22: 1156–1158, 1950.
Murashige, T., Skoog, F.: A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco cultures. — Physiol. Plant. 15: 473–497, 1962.
Nelson, N.: A photometric adaptation of Somogyi method for the determination of glucose. — J. biol. Chem. 153: 375–380, 1944.
Pastur, G.M., Arena, M., Curvetto, N., Zappacosta, D., Eliasco, E.: Successive media to improve the in vitro rhizogenesis of Nothofagus nervosa (Phil.) Dim. et Mil. — New Forest. 26: 201–215, 2003.
Qaddoury, A., Amssa, M.: Effect of exogenous indole butyric acid on root formation and peroxidase and indole-3-acetic acid oxidase activities and phenolic contents in date palm offshoots. — Bot. Bull. Acad. sin. 45: 127–137, 2004.
Ranjit, M., Kester, D.E., Polito, V.S.: Micropropagation of cherry rootstocks III. Correlations between anatomical and physiological parameters and rooting initiation. — J. amer. Soc. hort. Sci. 113: 155–159, 1988.
Ross, C.W.: Plant Physiology. Laboratory Manual. — Wadsworth Publishing, Belmont 1974.
Rout, G.R.: Effect of auxins on adventitious root development from single node cuttings of Camellia sinensis (L.) Kuntze and associated biochemical changes. — Plant Growth Regul. 48: 111–117, 2006.
Rusak, G., Cerni, S., Stupin Polancec, D., Lüdwig-Muller, J.: The responsiveness of the IAA2 promoter to IAA and IBA is differentially affected in Arabidopsis roots and shoots by flavonoids. — Biol. Plant. 54: 403–414, 2010.
Somogyi, M.: A new reagent for determination of sugars. — J. biol. Chem. 160: 61–68, 1945.
Tarrago, J., Sansberro, P., Filip, R., Lopez, P., Gonzalez, A., Luna, C., Mroginski, L.: Effect of leaf retention and flavonoids on rooting of Ilex paraguariensis cuttings. — Scientia Hort. 103: 479–488, 2005.
Zhishen, J., Mengchen, T., Jianming, W.: The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. — Food Chem. 64: 555–559, 1999.