Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tự miễn gây ra bởi phụ gia và vắc xin: các mô hình động vật
Tóm tắt
Sự xuất hiện của bệnh tự miễn sau khi tiêm vắc xin đã được mô tả trong nhiều báo cáo trường hợp và chuỗi trường hợp. Mỗi ngày có thêm nhiều bằng chứng cho thấy mối quan hệ này không chỉ là ngẫu nhiên. Ở người, các phụ gia có thể gây ra các biểu hiện lâm sàng không đặc hiệu về thể chất, cơ xương hoặc thần kinh và trong một số trường hợp có thể dẫn đến sự xuất hiện hoặc gia tăng bệnh tự miễn ở những đối tượng có yếu tố di truyền nhạy cảm. Thực tế rằng các vắc xin và phụ gia có thể kích hoạt phản ứng tự miễn bệnh lý được xác nhận qua các mô hình động vật. Việc sử dụng các mô hình động vật đã cho phép nghiên cứu tác động của việc áp dụng các phụ gia trong một quần thể đồng nhất với những đặc điểm di truyền nhất định. Trong một số trường hợp, các phụ gia có thể kích hoạt phản ứng tự miễn tổng quát, dẫn đến nhiều kháng thể tự nhiên, nhưng đôi khi chúng có thể mô phỏng các bệnh tự miễn ở người như viêm khớp dạng thấp, lupus ban đỏ hệ thống, hội chứng Sjögren, viêm tuyến giáp tự miễn và hội chứng chống phospholipid và có thể cung cấp cái nhìn về các tác dụng không mong muốn tiềm ẩn của các phụ gia. Tương tự, chúng cung cấp thông tin về các đặc điểm lâm sàng, miễn dịch và mô học của các bệnh tự miễn ở nhiều cơ quan, đặc biệt là mô lympho thứ phát. Thông qua việc mô tả các đặc điểm sinh lý bệnh lý của các bệnh tự miễn được tái tạo trong các mô hình động vật, các mục tiêu điều trị mới có thể được mô tả và có thể trong tương lai, chúng ta có thể nhận diện một số quần thể có nguy cơ cao mà việc tránh một số phụ gia có thể giảm tỷ lệ mắc các bệnh tự miễn, thường dẫn đến tỷ lệ bệnh tật và tử vong cao ở thanh thiếu niên. Trong bài viết này, chúng tôi mô tả các mô hình động vật chính có thể tái tạo các bệnh tự miễn ở người với nhấn mạnh vào cách mà chúng tương đồng với các điều kiện ở người.
Từ khóa
#Phụ gia vắc xin #tự miễn #mô hình động vật #bệnh tự miễn #kháng thể tự nhiên #bệnh lý.Tài liệu tham khảo
Coffman RL, Sher A, Seder RA. Vaccine adjuvants: putting innate immunity to work. Immunity. 2010;33(4):492–503.
Ahmed SS, Schur PH, Macdonald NE, Steinman L, Narcolepsy. A(H1N1) pandemic influenza, and pandemic influenza vaccinations: what is known and unknown about the neurological disorder, the role for autoimmunity, and vaccine adjuvants. J Autoimmun. 2014;50:1–11.
Fournie GJ, Mas M, Cautain B, et al. Induction of autoimmunity through bystander effects. Lessons from immunological disorders induced by heavy metals. J Autoimmun. 2001;16(3):319–26.
Guimaraes LE, Baker B, Perricone C, Shoenfeld Y. Vaccines, adjuvants and autoimmunity. Pharmacol Res. 2015;100:190–209.
Cruz-Tapias P, Agmon-Levin N, Israeli E, Anaya JM, Shoenfeld Y. Autoimmune (auto-inflammatory) syndrome induced by adjuvants (ASIA)—animal models as a proof of concept. Curr Med Chem. 2013;20:4030–6.
Whitehouse M. Oily adjuvants and autoimmunity: Now time for reconsideration? Lupus. 2012;21:217–22.
Petrovsky N, Aguilar JC. Vaccine adjuvants: current state and future trends. Immunol Cell Biol. 2004;82:9.
Hoffmann MH, Tuncel J, Skriner K, et al. The rheumatoid arthritis-associated autoantigen hnRNP-A2 (RA33) is a major stimulator of autoimmunity in rats with pristane-induced arthritis. J Immunol. 2007;179(11):7568–76.
Platica M, Bojko C, Steiner G, Hollander VP. Effect of subcutaneously administered 2,6,10,14-tetramethylpentadecane on plasmacytoma growth. Cancer Res. 1980;40:2229–33.
Bizjak M, Selmi C, Praprotnik S, et al. Silicone implants and lymphoma: the role of inflammation. J Autoimmun. 2015;65:64–73.
Israeli E, Agmon-Levin N, Blank M, Shoenfeld Y. Macrophagic myofaciitis a vaccine (alum) autoimmune-related disease. Clin Rev Allergy Immunol. 2011;41(2):163–8.
Favoino E, Favia EI, Digiglio L, Racanelli V, Shoenfeld Y, Perosa F. Effects of adjuvants for human use in systemic lupus erythematosus (SLE)-prone (New Zealand black/New Zealand white) F1 mice. Clin Exp Immunol. 2012;175:32–40.
Soldevilla HF, Briones SFR, Navarra SV. Systemic lupus erythematosus following HPV immunization or infection? Lupus. 2012;21:4.
Agmon-Levin N, Arango MT, Kivity S, et al. Immunization with hepatitis B vaccine accelerates SLE-like disease in a murine model. J Autoimmun. 2014;54:21–32.
Holmdahl R, Lorentzen JC, Lu S, et al. Arthritis induced in rats with non-immunogenic adjuvants as models for rheumatoid arthritis. Immunol Rev. 2001;184:19.
Salemo S, D’Amelio R. Could autoimmunity be induced by vaccination? Int Rev Immunol. 2010;29:247–69.
Stratton KR, Howe CJ, Johnston RB Jr. Adverse events associated with childhood vaccines other than pertussis and rubella. Summary of a report from the Institute of Medicine. JAMA. 1994;271(20):1602–5.
Cohen AD, Shoenfeld Y. Vaccine-induced autoimmunity. J Autoimmun. 1996;9(6):699–703.
Ropper AH, Victor M. Influenza vaccination and the Guillain–Barré syndrome. N Engl J Med. 1998;339(25):1845–6.
Tishler M, Shoenfeld Y. Vaccination may be associated with autoimmune diseases. Isr Med Assoc J. 2004;6(7):430–2.
Praprotnik S, Sodin-Semrl S, Tomsic M, Shoenfeld Y. The curiously suspicious: infectious disease may ameliorate an ongoing autoimmune destruction in systemic lupus erythematosus patients. J Autoimmun. 2008;30(1–2):37–41.
Shoenfeld Y, Agmon-Levin N. ASIA Autoimmune/inflammatory syndrome induced by adjuvants. J Autoimmun. 2011;36(1):4–8.
Perricone C, Colafrancesco S, Mazor RD, Soriano A, Agmon-Levin N, Shoenfeld Y. Autoimmune/inflammatory syndrome induced by adjuvants (ASIA) 2013: unveiling the pathogenic, clinical and diagnostic aspects. J Autoimmun. 2013;47:1–16.
Hall SW, Cooke A. Autoimmunity and inflammation: murine models and translational studies. Mamm Genome. 2011;22(7–8):377–89.
Rose NR. The adjuvant effect in infection and autoimmunity. Clin Rev Allergy Immunol. 2008;34(3):279–82.
Vladutiu AO, Rose N. Autoimmune murine thyroiditis relation to histocompatibility (H-2) type. Science. 1971;174(4014):1137–9.
Lujan L, Pérez M, Salazar E, et al. Autoimmune/autoinflammatory syndrome induced by adjuvants (ASIA syndrome) in commercial sheep. Immunol Res. 2013;56(2–3):317–24.
Wester L, Olofsson P, Ibrahim SM, Holmdahl R. Chronicity of pristane-induced arthritis in rats is controlled by genes on chromosome 14. J Autoimmun. 2003;21(4):305–13.
Holm BC, Lorentzen JC, Bucht A. Adjuvant oil induces waves of arthritogenic lymph node cells prior to arthritis onset. Clin Exp Immunol. 2004;137(1):59–64.
Wester L, Koczan D, Holmberg J, et al. Differential gene expression in pristane-induced arthritis susceptible DA versus resistant E3 rats. Arthritis Res Ther. 2003;5(6):R361–72.
Vingsbo C, Sahlstrand P, Brun JG, Jonsson R, Saxne T, Holmdahl R. Pristane-induced arthritis in rats a new model for rheumatoid arthritis with a chronic disease course influenced by both major histocompatibility complex and non-major histocompatibility complex genes. Am J Pathol. 1996;149(5):9.
Reeves WH, Lee PY, Weinstein JS, Satoh M, Lu L. Induction of autoimmunity by pristane and other naturally occurring hydrocarbons. Trends Immunol. 2009;30(9):455–64.
De Franco M, Peters LC, Correa MA, et al. Pristane-induced arthritis loci interact with the Slc11a1 gene to determine susceptibility in mice selected for high inflammation. PLoS ONE. 2014;9(2):e88302.
Barker RN, Easterfield AJ, Allen RF, Wells AD, Elson CJ, Thompson SJ. B- and T-cell autoantigens in pristane-induced arthritis. Immunology. 1996;89:6.
Holmberg J, Tuncel J, Yamada H, Lu S, Olofsson P, Holmdahl R. Pristane, a Non-antigenic adjuvant, induces MHC class II-restricted, arthritogenic T cells in the rat. J Immunol. 2006;176(2):1172–9.
Morgan R, Wu B, Song Z, Wooley PH. Immune reactivity to connective tissue antigens in pristane induced arthritis. J Rheumatol. 2004;31:10.
Zhu W, Jiang C, Xu J, et al. Pristane primed rat T cells enhance TLR3 expression of fibroblast-like synoviocytes via TNF-alpha initiated p38 MAPK and NF-kappaB pathways. Clin Immunol. 2015;156(2):141–53.
Vingsbo C, Sahistrand P, Brun JG, Jonsson R, Saxne T, Holmdahl R. Avridine-induced arthritis in rats; a T cell-dependent chronic disease influenced both by MHC genes and by non-MHC genes. Clin Exp Immunol. 1995;99(3):359–63.
Kaibara N, Hotokebuchi T, Takagishi K, et al. Pathogenic difference between collagen arthritis and adjuvant arthritis. J Exp Med. 1984;159:9.
Ratkay LG, Zhang L, Tonzetich J, Waterfield JD. Complete Freund’s adjuvant induces an earlier and more severe arthritis in MRL-ipr mice. J Immunol. 1993;151(1):5081–7.
Kleinau S, Erlandsson H, Klareskog L. Percutaneous exposure of adjuvant oil causes arthritis in DA rats. Clin Exp Immunol. 1994;96(2):281–4.
Svelander L, Müssener A, Erlandsson-Harris H, Kleinau S. Polyclonal Thl cells transfer oil-induced arthritis. Immunology. 1994;91(2):260–5.
Lorentzen JC, Glaser A, Jacobsson L, et al. Identification of rat susceptibility loci for adjuvant-oil-induced arthritis. Proc Natl Acad Sci USA. 1998;95:5.
Holm BC, Xu HW, Jacobsson L, Larsson A, Luthman H, Lorentzen J. Rats made congenic for Oia3 on chromosome 10 become susceptible to squalene-induced arthritis. Hum Mol Gen. 2001;10(6):565–72.
Carlson BC, Jansson AM, Larsson A, Bucht A, Lorentzen JC. The endogenous adjuvant squalene can induce a chronic T-cell-mediated arthritis in rats. Am J Pathol. 2000;156:2057–65.
Satoh M, Richards HB, Shaheen VM, et al. Widespread susceptibility among inbred mouse strains to the induction of lupus autoantibodies by pristane. Clin Exp Immunol. 2000;121:399–405.
Richards HB, Satoh M, Shaw M, Libert C, Poli V, Reeves WH. Interleukin 6 dependence of anti-DNA antibody production: evidence for two pathways of autoantibody formation in pristane-induced lupus. J Exp Med. 1998;188(5):6.
Satoh M, Kumar A, Kanwar YS, Reeves WH. Anti-nuclear antibody production and immune-complex glomerulonephritis in BALB/c mice treated with pristane. Proc Natl Acad Sci USA. 1995;92(24):10934–8.
Feng D, Yang L, Bi X, Stone RC, Patel P, Barnes BJ. Protection of Irf5-deficient mice from pristane-induced lupus involves altered cytokine production and class switching. Eur J Immunol. 2012;42(6):1477–87.
Richards HB, Satoh M, Jennette JC, Okano T, Kanwar YS, Reeves WH. Disparate T cell requirements of two subsets of lupus-specific autoantibodies in pristane-treated mice. Clin Exp Immunol. 1999;115(3):547–53.
Perry D, Sang A, Yin Y, Zheng YY, Morel L. Murine models of systemic lupus erythematosus. J Biomed Biotechnol. 2011;2011:1–19.
Summers SA, Odobasic D, Khouri MB, et al. Endogenous interleukin (IL)-17A promotes pristane-induced systemic autoimmunity and lupus nephritis induced by pristane. Clin Exp Immunol. 2014;176:342–50.
Clynes R, Calvani N, Croker PB, Richards HB. Modulation of the immune response in pristane-induced lupus by expression of activation and inhibitory Fc receptors. Clin Exp Immunol. 2005;141:230–7.
Bagavant H, Nandula SR, Kaplonek P, Rybakowska PD, Deshmukh US. Alum, an aluminium based adjuvant, induces Sjögren’s syndrome-like disorder in mice. Clin Exp Rheumatol. 2014;32(2):251–5.
Kong YC, Audibert F, Giraldo AA, Rose NR, Chedid L. Effects of natural or synthetic microbial adjuvants on induction of autoimmune thyroiditis. Infect Immun. 1985;49:40–5.
Blank M, Krause I, Fridkin M, et al. Bacterial induction of autoantibodies to β2-glycoprotein-I accounts for the infectious etiology of antiphospholipid syndrome. J Clin Invest. 2002;109(6):797–804.
Zivkovic I, Stojanovic M, Petrusic V, Inic-Kanada A, Dimitrijevic L. Induction of APS after TTd hyper-immunization has a different outcome in BALB/c and C57BL/6 mice. Am J Reprod Immunol. 2011;65(5):492–502.
Petrusic V, Zivkovic I, Muhandes L, Dimitrijevic R, Stojanovic M, Dimitrijevic L. Infection-induced autoantibodies and pregnancy related pathology: an animal model. Reprod Fertil Dev. 2014;26(4):578–86.
Petrusic V, Todorovic N, Zivkovic I, et al. Autoantibody response and pregnancy-related pathology induced by combined LPS and tetanus toxoid hyperimmunization in BALB/c and C57BL/6 mice. Autoimmunity. 2015;48(2):87–99.
Koppang EO, Bjerkas I, Haugarvoll E, et al. Vaccination-induced systemic autoimmunity in farmed Atlantic salmon. J Immunol. 2008;181(7):4807–14.