Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Một phương pháp đơn giản và nhanh chóng để xác định paraquat trong nước tiểu và huyết tương người bằng cách cải tiến hấp phụ rắn sử dụng thiết bị tự chế
Tóm tắt
Một phương pháp đơn giản và nhanh chóng đã được phát triển để phát hiện bằng mắt thường và định lượng paraquat (PQ) trong mẫu huyết tương và nước tiểu của con người bằng cách sử dụng thiết bị phân tích tự chế kết hợp với phương pháp màu quang và quang phổ UV-Vis. Một phương pháp quang phổ định lượng cho PQ cũng đã được phát triển dựa trên thiết bị tự chế. Các yếu tố khác nhau ảnh hưởng đến hiệu suất hồi phục của PQ như pH của dung dịch mẫu, lượng chất hấp phụ, loại và thể tích dung môi rửa, thời gian chiết và giải hấp, khả năng hấp phụ và thể tích mẫu đã được nghiên cứu và tối ưu chi tiết. Dưới các điều kiện tối ưu, tổng thời gian phân tích của phương pháp bằng mắt thường là dưới 5 phút và cung cấp giới hạn phát hiện quan sát bằng mắt thường là 0,2 μg/mL với khoảng phát hiện giữa 0,5 và 5,0 μg/mL cho việc xác định paraquat. PQ có thể được phát hiện ở mức thấp tới 6,21 × 10−3 μg/mL trong nước tiểu và 0,119 μg/mL trong huyết tương với phương pháp quang phổ định lượng đề xuất này. Phương pháp này đã được áp dụng để theo dõi mức PQ trong huyết tương và nước tiểu tại các bệnh viện địa phương cho những bệnh nhân bị ngộ độc PQ ở các mức độ tuần hoàn máu khác nhau. Kết quả phát hiện không chỉ cho phép can thiệp y tế ngay lập tức mà còn có lợi cho sự sống sót của bệnh nhân.
Từ khóa
#paraquat #định lượng #huyết tương #nước tiểu #hấp phụ rắn #quang phổ UV-VisTài liệu tham khảo
K. Saravu, S. Sekhar, A. Pai, A.S. Barkur, V. Rajesh, J.R. Earla, Paraquat—a deadly poison: report of a case and review. Indian J Crit Care Med 17, 182–184 (2013)
A.P. Vu, T.N. Nguyen, T.T. Do, T.H. Doan, T.H. Ha, T.T. Ta, H.L. Nguyen, P.C. Hauser, T.A.H. Nguyen, T.D. Mai, Clinical screening of paraquat in plasma samples using capillary electrophoresis with contactless conductivity detection: towards rapid diagnosis and therapeutic treatment of acute paraquat poisoning in Vietnam. J. Chromatogr., B: Anal. Technol. Biomed. Life Sci. 1060, 111–117 (2017)
Y. Zou, Y. Shi, Y. Bai, J. Tang, Y. Chen, L. Wang, An improved approach for extraction and high-performance liquid chromatography analysis of paraquat in human plasma. J. Chromatogr., B: Anal. Technol. Biomed. Life Sci. 879, 1809–1812 (2011)
S. Han, Determination of puerarin by capillary electrophoresis with chemiluminescence detection. J. Chromatogr., B: Anal. Technol. Biomed. Life Sci. 877, 1591–1594 (2009)
B. Saad, M. Ariffin, M.I. Saleh, Flow injection potentiometric determination of paraquat in formulations and biological samples. Talanta 47, 1231–1236 (1998)
P. Chuntib, J. Jakmunee, Simple flow injection colorimetric system for determination of paraquat in natural water. Talanta 144, 432–438 (2015)
S.H. Yuen, J.E. Bagness, D. Myles, Spectrophotometric determination of diquat and paraquat in aqueous herbicide formulations. Analyst 92, 375–381 (1967)
M. Ganesan, S. Natesan, V. Ranganathan, Spectrophotometric method for the determination of paraquat. Analyst 104, 258–261 (1979)
H. Luo, X. Wang, Y. Huang, K. Lai, B.A. Rasco, Y. Fan, Rapid and sensitive surface-enhanced Raman spectroscopy (SERS) method combined with gold nanoparticles for determination of paraquat in apple juice. J. Sci. Food Agric. 98, 3892–3898 (2018)
S.U. Khan, Determination of paraquat residues in food crops by gas chromatography. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 14, 745–749 (1975)
R.M. de Almeida, M. Yonamine, Gas chromatographic-mass spectrometric method for the determination of the herbicides paraquat and diquat in plasma and urine samples. J. Chromatogr., B: Anal. Technol. Biomed. Life Sci. 853, 260–264 (2007)
B.S. Yu, X.P. Yan, G. Bin Zhen, Y.P. Rao, RP-HPLC determination of puerarin in Chinese traditional medicinal preparations containing pueraria. J. Pharm. Biomed. Anal. 30, 843–849 (2002)
C. Fuke, T. Arao, Y. Morinaga, H. Takaesu, K. Ameno, T. Miyazaki, Analysis of paraquat, diquat and two diquat metabolites in biological materials by high-performance liquid chromatography. Leg. Med. 4, 156–163 (2002)
M.S.F. Santos, L.M. Madeira, A. Alves, Different approaches for paraquat quantification in waters. J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 38, 472–484 (2015)
R. Nortes-Méndez, J. Robles-Molina, R. López-Blanco, A. Vass, A. Molina-Díaz, J.F. Garcia-Reyes, Determination of polar pesticides in olive oil and olives by hydrophilic interaction liquid chromatography coupled to tandem mass spectrometry and high resolution mass spectrometry. Talanta 158, 222–228 (2016)
X.-L. Ruan, J.-J. Qiu, C. Wu, T. Huang, R.-B. Meng, Y.-Q. Lai, Magnetic single-walled carbon nanotubes-dispersive solid-phase extraction method combined with liquid chromatography-tandem mass spectrometry for the determination of paraquat in urine. J. Chromatogr., B: Anal. Technol. Biomed. Life Sci. 965, 85–90 (2014)
I.R. Pizzutti, G.M.E. Vela, A.A. De Kok, J.M. Scholten, J.V. Dias, C.D. Cardoso, M.E. Giovana, G. Vela, R.Vivian Concenco, Determination of paraquat and diquat: LC-MS method optimization and validation. Food Chem. 209, 248–255 (2016)
T. Kinoshita, Y. Kosugi, T. Suzuki, Simultaneous determination of iminoctadine, diquat, and paraquat in tap and river water by liquid chromatography–tandem mass spectrometry after solid-phase extraction. J Jpn Soc Water Environ 38, 49–55 (2015)
P. Shivhare, V.K. Gupta, Spectrophotometric method for the determination of paraquat in water, grain and plant materials. Analyst 116, 391–393 (1991)
L. Gao, J. Liu, H. Yuan, X. Deng, Solid-phase microextraction combined with GC–MS for determination of diquat and paraquat residues in water. Chromatographia 78, 125–130 (2015)
F. Latifeh, Y. Yamini, S. Seidi, Ionic liquid-modified silica-coated magnetic nanoparticles: promising adsorbents for ultra-fast extraction of paraquat from aqueous solution. Environ. Sci. Pollut. Res. 23, 4411–4421 (2016)
O. Sha, Y. Wang, X. Yin, X. Chen, L. Chen, S. Wang, Magnetic solid-phase extraction using Fe3O4@SiO2 magnetic nanoparticles followed by UV–Vis spectrometry for determination of paraquat in plasma and urine samples. J Anal Methods Chem 10, 1–9 (2017)
J. Chen, X. Zhu, Ionic liquid coated magnetic core/shell Fe3O4@SiO2 nanoparticles for the separation/analysis of linuron in food samples. Spectrochim. Acta Part A Mol. Biomol. Spectrosc. 137, 456–462 (2015)
K. Kato, H. Okada, H. Imura, K. Ohashi, Highly sensitive determination of paraquat and diquat in human blood with tetrabromophenolphthalein ethyl ester by ion-pair extraction/spectrophotometric method. Anal. Sci. 15, 689–693 (1999)
F. Ghavidel, S.J. Shahtaheri, M. Torabbeigi, A.R. Froushani, Optimization of solid phase microextraction procedure for determination of paraquat using reduction process. J. Anal. Chem. 71, 648–652 (2016)
P. Paixao, P. Costa, T. Bugalho, C. Fidalgo, L.M. Pereira, Simple method for determination of paraquat in plasma and serum of human patients by high-performance liquid chromatography. J. Chromatogr., B: Anal. Technol. Biomed. Life Sci. 775, 109–113 (2002)