Khảo sát hồi cứu về sự hiện diện của Plasmodium spp. và Toxoplasma gondii trong các mẫu mô lưu trữ từ các loài diều hâu New Zealand: Diều hâu New Zealand (Falco novaeseelandiae), Diều hâu Australasian (Circus approximans) và Morepork (Ninox novaeseelandiae)

Parasitology Research - Tập 116 - Trang 2283-2289 - 2017
V. Mirza1, E. B. Burrows2, S. Gils2, S. Hunter3, B. D. Gartrell3, L. Howe2
1Bannerghatta Biological Park, Bangalore, India
2Infectious Disease, Institute of Veterinary, Animal and Biomedical Sciences, Massey University, Palmerston North, New Zealand
3Wildbase, Institute of Veterinary, Animal and Biomedical Sciences, Massey University, Palmerston North, New Zealand

Tóm tắt

Sự định cư của con người ở New Zealand đã dẫn đến việc giới thiệu các bệnh mới nổi, chẳng hạn như sốt rét ở chim và bệnh toxoplasmosis, cùng với các loài chim và động vật có vú ngoại lai. Plasmodium spp. và Toxoplasma gondii có một phạm vi vật chủ rộng, và một số loài chim bản địa của New Zealand đã phát triển thành bệnh chết người sau khi nhiễm phải cả hai tác nhân gây bệnh này. Tuy nhiên, không có báo cáo nào về bệnh toxoplasmosis hay sốt rét ở chim tại New Zealand, cụ thể là ở các loài diều hâu New Zealand (Falco novaeseelandiae), diều hâu Australasian (Circus approximans) và morepork (Ninox novaeseelandiae) trong tài liệu hiện có. Do đó, nghiên cứu này được thiết kế nhằm xác định xem liệu hai tác nhân gây bệnh này có hiện diện trong các loài diều hâu này qua phân tích hồi cứu các mẫu mô lưu trữ. Việc phát hiện và xác định chủng vi sinh vật được thực hiện bằng các kỹ thuật mô học và phân tử đã được xác lập. Tất cả ba loài diều hâu New Zealand đều cho kết quả dương tính với sự hiện diện của Plasmodium spp. (10/117; 8,5%) và một kiểu gen bất thường của T. gondii (9/117; 7,7%). Các dòng Plasmodium được xác định bao gồm P. elongatum GRW6, P. relictum SGS1, P. relictum PADOM02 và Plasmodium sp. LINN1. Hai diều hâu Australasian và một morepork có kết quả dương tính với sự hiện diện của cả Plasmodium spp. và T. gondii. Tuy nhiên, khả năng gây bệnh của các sinh vật này đối với các loài diều hâu vẫn chưa rõ ràng vì không có mô nào cho thấy bằng chứng mô học của bệnh lý lâm sàng liên quan đến nhiễm trùng Plasmodium spp. và T. gondii. Do đó, các kết quả này cho thấy lần đầu tiên rằng hai tác nhân gây bệnh tiềm tàng này có mặt trong các loài diều hâu của New Zealand; tuy nhiên, cần phải có thêm nghiên cứu để xác định tỷ lệ và khả năng gây bệnh của các sinh vật này trong các quần thể sống của các loài chim này tại đất nước.

Từ khóa

#Plasmodium spp. #Toxoplasma gondii #diều hâu New Zealand #bệnh sốt rét #bệnh toxoplasmosis #động vật hoang dã New Zealand

Tài liệu tham khảo

Alley MR, Hale KA, Cash W, Ha HJ, Howe L (2010) Concurrent avian malaria and avipox virus infection in translocated South Island saddlebacks (Philesturnus carunculatus carunculatus). New Zeal Vet J 58(4):218–223 Aubert D, Terrier M, Dumetre A, Barrat J, Villena I (2008) Prevalence of Toxoplasma gondii in raptors from France. J Wildl Dis 44(1):172–173 Banda ME, Howe L, Gartrell BD, McInnes K, Hunter S, French NP (2013) A cluster of avian malaria cases in a kiwi management programme. New Zeal Vet J 61(3):121–126 Bell BD, the NZOCT Board (1990) Acta XX Congressus Internationalis Ornithologici: Christchurch, New Zealand, 2–9 December 1990. New Zealand Ornithological Congress Trust (NZOCT) Board Bensch S, Hellgren O, Perez-Tris J (2009) MalAvi: a public database of malaria parasites and related haemosporidians in avian hosts based on mitochondrial cytochrome b lineages. Molec Ecol Resour 9:1353–1358 Benson DA, Clark K, Karsch-Mizrachi I, Lipman DJ, Ostell J, Sayers EW (2014) GenBank. Nuc Acids Res 42:32–37 Butchart S, Symes A (2012) Circus approximans. IUCN Red List of Threatened Species. Version 2014.3. Retrieved 19 February, 2015, from http://www.iucnredlist.org Cabezon O, Garcia-Bocanegra I, Molina-Lopez R, Marco I, Blanco JM, Hofle U, Margalida A, Bach-Raich E, Darwich L, Echeverria I, Obon E, Hernandez M, Lavin S, Dubey JP, Almeria S (2011) Seropositivity and risk factors associated with Toxoplasma gondii in wild birds from Spain. PlosOne 6(12):e29549 Daszak P, Cunningham AA, Hyatt AD (2000) Emerging infectious diseases of wildlife—threats to biodiversity and human health. Science 287:443–449 Derraik JGB, Tompkins DM, Alley MR, Holder P, Atkinson T (2008) Epidemiology of an avian malaria outbreak in a native bird species (Mohoua ochrocephala) in New Zealand. J Royal Soc New Zeal 38(4):237–242 Dubey JP (2008) The history of Toxoplasma gondii—the first 100 years. J Eukaryot Microbiol 55(6):467–475 Dubey JP, Velmurugan GV, Rajendran C, Yabsley MJ, Thomas NJ, Beckmen KB, Sinnett D, Ruid D, Hart J, Fair PA, McFee WE, Shearn-Bochsler V, Kwok OCH, Ferreira LR, Choudhary S, Faria EB, Zhou H, Felix TA, Su C (2011) Genetic characterization of Toxoplasma gondii in wildlife from North America revealed widespread and high prevalence of the fourth clonal type. Int J Parasitol 41:1139–1147 Eason CT, Spurr EB (1995) Review of the toxicity and impacts of brodifacoum on non-target wildlife in New Zealand. New Zeal J Zoo 22(4):371–379 Ewen JG, Bensch S, Blackburn TM, Bonneaud C, Brown R, Cassey P, Perez-Tris J (2012) Establishment of exotic parasites: the origins and characteristics of an avian malaria community in an isolated island avifauna. Ecol Lett 15(10):1112–1119 Frenkel JK, Ruiz A, Chinchilla M (1975) Soil survival of Toxoplasma oocysts in Kansas and Costa Rica. Am J Trop Hyg 24:439–443 Heather BD, Robertson HA (1996) The field guide to the birds of New Zealand. Viking, Auckland Hellgren O, Waldenström J, Bensch S (2004) A new PCR assay for simultaneous studies of Leucocytozoon, Plasmodium, and Haemoproteus from avian blood. J Parasitol 90(4):797–802 Hitchmough R, Bull L, Cromarty P (2007) New Zealand threat classification system lists: 2005. Science & Technical Publishing, Department of Conservation, Wellington Howe L, Castro IC, Schoener ER, Hunter S, Barraclough RK, Alley MR (2012) Malaria parasites (Plasmodium spp.) infecting introduced, native and endemic New Zealand birds. Parasitol Res 110(2):913–923 Howe L, Hunter S, Burrows E, Roe W (2014) Four cases of fatal toxoplasmosis in three species of endemic New Zealand birds. Avian Dis 58(1):171–175 Huelsenbeck JP (2003) MrBayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models. Bioinformatics 19:1572–1574 Krone O, Priemer J, Streich J, Sommer P, Langgemach T, Lessow O (2001) Haemosporida of birds of prey and owls from Germany. Acta Protozool 40(4):281–289 Larkin MA, Blackshields G, Brown NP, Chenna R, McGettigan PA, McWilliam H, Valentin F, Wallace IM, Wilm A, Lopez R, Thompson JD, Gibson TJ, Higgins DG (2007) Clustal W and Clustal X version 2.0. Bioinformatics 23(21):2947–2948. doi:10.1093/bioinformatics/btm404 Lindsay DS, Blagburn BL (1999) Prevalence of encysted apicomplexans in muscles of raptors. Vet Parasitol 80(4):341–344 Love D, Kwok OC, Verma SK, Dubey JP, Bellah J (2016) Antibody prevalence and isolation of viable Toxoplasma gondii from raptors in the southeastern USA. J Wildlife Dis 52(3):653–656 Mikaelian I, Dubey JP, Martineau D (1997) Severe hepatitis resulting from toxoplasmosis in a barrel owl (Strix varia) from Quebec, Canada. Avian Dis 41(3):738–740 Ortego J, Calabuig G, Cordero PJ, Aparicio JM (2007) Genetic characterization of avian malaria (Protozoa) in the endangered lesser kestrel, Falco naumanni. Parasitol Res 101(4):1153–1156 Palinauskas V, Valkiūnas GN, Bolshakov CV, Bensch S (2008) Plasmodium relictum (lineage P-SGS1): effects on experimentally infected passerine birds. Exp Parasitol 120(4):372–380 Perez-Rodriguez A, de la Puente J, Onrubia A, Perez-Tris J (2013) Molecular characterization of haemosporidian parasites from kites of the genus Milvus (Aves: Accipitridae). Int J Parasitol 43(5):381–387 Remple JD (2004) Intracellular hematozoa of raptors: a review and update. J Avian Med Surg 18(2):75–88 Roe WD, Howe L, Baker EJ, Burrows L, Hunter SA (2013) An atypical genotype of Toxoplasma gondii as a cause of mortality in Hector's dolphins (Cephalorhynchus hectori). Vet Parasitol 192(1–3):67–74 Salakij J, Lertwatcharasarakul P, Kasorndorkbua C, Salakij C (2012) Plasmodium circumflexum in a Shikra (Accipiter badius): phylogeny and ultra-structure of the haematozoa. Jpn J Vet Res 60(2–3):105–109 Schoener ER, Banda M, Howe L, Castro IC, Alley MR (2014) Avian malaria in New Zealand. New Zeal Vet J 62(4):189–198 Su C, Shwab EK, Zhou P, Zhu XQ, Dubey JP (2010) Moving towards an integrated approach to molecular detection and identification of Toxoplasma gondii. Parasitology 137:1–11 Swofford DL (2002) PAUP*. Phylogenetic analysis using parsimony (*and other methods). Version 4. Sinauer Associates, Sunderland, MA Szabo KA, Mense MG, Lipscomb TP, Felix KJ, Dubey JP (2004) Fatal toxoplasmosis in a bald eagle (Haliaeetus leucocephalus). J Parasitol 90(4):907–908 Valkiunas G, Zehtindjiev P, Dimitrov D, Krizanauskiene A, Iezhova TA, Bensch S (2008) Polymerase chain reaction-based idenfication of Plasmodium (Huffia) elongatum, with remarks on species identity of haemosporidian lineages deposited in GenBank. Parasitol Res 102(6):1185–1193 Van Riper C, Van Riper SG, Goff ML, Laird M (1986) The epizootiology and ecological significance of malaria in Hawaiian land birds. Ecol Monogr 56(4):327–344 Vicker MC, Hartley WJ, Mason RW, Dubey JP, Schollam L (1992) Blindness associated with toxoplasmosis in canaries. J Amer Vet Med Assoc 200(11):1723–1725 Wendte JM, Gibson AK, Grigg ME (2011) Population genetics of Toxoplasma gondii: new perspectives from parasite genotypes in wildlife. Vet Parasitol 182:96–111 Yu L, Shen J, Su C, Sunderman CA (2013) Genetic characterization of Toxoplasma gondii in wildlife from Alabama, USA. Parasitol Res 112(3):1333–1336