Kháng thể đơn dòng nhận diện kháng nguyên bề mặt tế bào và ức chế sự tái bản của virus parvovirus heo

Archives of Virology - Tập 123 - Trang 323-333 - 1992
M. J. Harding1,2, T. W. Molitor1
1Department of Large Animal Clinical Sciences, College of Veterinary Medicine, University of Minnesota, St. Paul, USA
2Animal Diseases Research Institute, Nepean, Canada

Tóm tắt

Công nghệ kháng thể đơn dòng đã được áp dụng để nghiên cứu các sự kiện sớm trong nhiễm virus parvovirus heo (PPV) trong ống nghiệm. Những con chuột Balb/c được tiêm miễn dịch với tế bào tinh hoàn heo nguyên vẹn và các hybriđomas đã được sản xuất sau khi hợp nhất với các tế bào u tủy. Các dòng sinh sản kết quả đã được sàng lọc trước tiên trong hệ thống ELISA, nhằm phát hiện khả năng nhận diện kháng thể đơn dòng đối với tế bào tinh hoàn heo, và thứ hai, trong thử nghiệm kháng thể huỳnh quang để phát hiện kháng thể đơn dòng ức chế sản xuất kháng nguyên PPV. Một dòng duy nhất, 1H11, phù hợp với các yêu cầu sàng lọc này, nhận diện các protein có mặt trong các dòng tế bào cả cho phép và không cho phép tái bản virus parvovirus heo và ức chế sản xuất virus con từ một vài mẫu PPV. Một mẫu hình nhuộm tuyến tính của màng tế bào liên kết chéo, chỉ ra việc kháng thể đơn dòng liên kết tại màng tế bào, đã được chứng minh thông qua các xét nghiệm miễn dịch huỳnh quang gián tiếp. Trong các thí nghiệm blottings miễn dịch, 1H11 đã nhận diện một polypeptide có kích thước khoảng 40 kDa, hiện diện trong cả dòng tế bào cho phép và không cho phép.

Từ khóa


Tài liệu tham khảo

Abraham G, Colonno RJ (1984) Many rhinovirus serotypes share the same cellular receptor. J Virol 51: 340–345 Boyum A (1968) Isolation of mononuclear cells and granulocytes from human blood. Scand J Clin Lab Invest [Suppl] 97: 77–89 Choi CS, Molitor TW, Joo HS, Gunther R (1987) Pathogenicity of a skin isolate of porcine parvovirus in swine fetuses. Vet Microbiol 15: 19–29 Choi CS, Joo HS, Molitor TW (1989) Temperature dependent replication of porcine parvovirus isolates. Arch Virol 108: 121–129 Crowell RL, Lonberg-Holm K (1986) Introduction and overview. In: Virus attachment and entry into cells. American Society for Microbiology, Washington, pp 1–12 Dalgleish AG, Beverley PCL, Clapham PR, Crawford DH, Greaves MF, Weiss RA (1984) The CD 4 (T 4) antigen is an essential component of the receptor for the AIDS retrovirus. Nature 312: 763–767 Galfre G, Howe C, Milstein C, Butcher GW, Howard JC (1977) Antibodies to major histocompatibility antigen produced by hybrid cell lines. Nature 266: 550 Hallauer C, Kronauer G, Siegl G (1971) Parvoviruses as contaminants of permanent cell lines. I. Isolations from 1960–1970. Arch Ges Virusforsch 35: 80–90 Harding MJ, Molitor TW (1988) Porcine parvovirus: replication in and inhibition of selected cellular functions of swine alveolar macrophages and peripheral blood lymphocytes. Arch Virol 101: 105–117 Holland JJ (1961) Receptor affinities as major determinants of enterovirus tissue tropisms in humans. Virology 12: 312–326 Joo HS, Donaldson-Wood CR, Johnson RH (1976) Observations on the pathogenesis of porcine parvovirus infection. Arch Virol 51: 123–129 Kresse JI, Taylor WD, Stewart WW, Eernisse KA (1985) Parvovirus infection in pigs with necrotic and vesicle-like lesions. Vet Microbiol 10: 525–531 Laemmli UK (1970) Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T 4. Nature 227: 680–685 Linser P, Bruning H, Armentrout RW (1977) Specific binding sites for a parvovirus, minute virus of mice, on cultured mouse cells. J Virol 24: 211–221 Linser P, Armentrout RW (1978) Binding of minute virus of mice to cells in culture. In: Ward DC, Tattersall P (eds) Replication of mammalian parvoviruses. Cold Spring Harbor Laboratory, New York, pp 151–160 Linser P, Bruning H, Armentrout RW (1979) Uptake of minute virus of mice into cultured rodent cells. J Virol 31: 537–545 Lonberg-Holm K, Crowell RL, Philipson L (1976) Unrelated animal viruses share receptors. Nature 259: 679–681 Mengeling WL (1979) Prenatal infection following maternal exposure to porcine parvovirus on either the seventh or fourteenth day of gestation. Can J Comp Med 43: 106–109 Mengeling WL, Pejsak Z, Paul PS (1984) Biological assay of attenuated NADL-2 and virulent strain NADL-8 of porcine parvovirus. Am J Vet Res 45: 2403–2407 Mengeling WL, Cutlip RC (1975) Pathogenesis of in utero infection: experimental infection of five week-old porcine fetuses with porcine parvovirus. Am J Vet Res 36: 1173–1177 Mengeling WL, Cutlip RC (1976) Reproductive disease experimentally induced by exposing pregnant gilts to porcine parvovirus. Am J Vet Res 37: 1393–1400 Molitor TW, Joo HS, Collett MS (1983) Porcine parvovirus: virus purification and structural and antigenic properties of virion polypeptides. J Virol 45: 842–854 Molitor TW, Joo HS, Collett MS (1984) Porcine parvovirus DNA: characterization of the genome and replication form DNA of two virus isolates. Virology 137: 241–254 Molitor TW, Joo HS, Collett MS (1985) KBSH parvovirus: comparison with porcine parvovirus. J Virol 55: 257–263 Paul PS, Mengeling WL, Brown TT (1979) Replication of porcine parvovirus in peripheral blood lymphocytes, monocytes, and peritoneal macrophages. Infect Immun 25: 1003–1007 Paul PS, Mengeling WL (1984) Oronasal and intramuscular vaccination of swine with a modified live porcine parvovirus vaccine: multiplication and transmission of the vaccine virus. Am J Vet Res 45: 2481–2485 Reisert PS, Spiro RC, Townsend PL, Stanford SA, Sairenji T, Humphreys RE (1985) Functional association of class II antigens with cell surface binding of Epstein-Barr virus. J Immunol 134: 3776–3780 Ridpath JF, Mengeling WL (1988) Uptake of porcine parvovirus into host and nonhost cells suggests host specificity is determined by intracellular factors. Virus Res 10: 17–28 Spalholz BA, Tattersall P (1983) Interaction of minute virus of mice with differentiated cells: strain-dependent target cell specificity is mediated by intracellular factors. J Virol 46: 937–943 Tattersall P (1972) Replication of the parvovirus MVM. I. Dependence of virus multiplication and plaque formation on cell growth. J Virol 10: 586–590 Tennant RW, Rayman KR, Hand RE Jr (1969) Effect of cell physiological state on infection by rat virus. J Virol 4: 872–878 Towbin H, Staehelin T, Gordon J (1979) Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure and some applications. Proc Natl Acad Sci USA 76: 4350–4354 Tung AS, Ju ST, Sato S, Nisinoff A (1976) Production of large amounts of antibodies in individual mice. J Immunol 116: 676–681 Weir DM (1978) Salt fractionation of immunoglobulins. In: Handbook of experimental immunology. Blackwell, London, pp 7.1–7.11 Weiner HL, Ault KA, Fields BN (1980) Interaction of reovirus with cell surface receptors. I. Murine and human lymphocytes have a receptor for the hemagglutinin of reovirus type 3. J Immunol 124: 2143–2148