Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Một mối quan hệ liều lượng-đáp ứng hình chuông của FGF-1 tại chỗ trong việc tăng tốc quá trình lành vết thương da ở chuột cái BALB/cByJ già
Tóm tắt
Mục tiêu của nghiên cứu này là đặc trưng hóa các đặc tính liều lượng-đáp ứng điều trị của FGF-1 tại chỗ trong quá trình lành vết thương da toàn bộ độ dày của chuột cái BALB/cByJ già. Phương pháp sử dụng mô hình cắt bỏ có giá đỡ để nghiên cứu quá trình lành vết thương da và một phương pháp chụp ảnh có mẫu tinh vi, nhằm định lượng các tham số chính của quá trình lành vết thương cho các liều lượng khác nhau của FGF-1 tại chỗ. Bệnh lý học của các vết thương đã lành, đại diện cho mỗi nhóm liều lượng, cũng được đánh giá thông qua cắt và nhuộm. Kết quả cho thấy điều trị bằng FGF-1 tại chỗ để tăng tốc quá trình lành vết thương da ở chuột cái BALB/cByJ già cho mối quan hệ liều lượng-đáp ứng hình chuông hẹp, với hiệu quả điều trị giảm tại nồng độ cao (tức là mối quan hệ liều lượng-đáp ứng hình chuông). Phản ứng sinh lý của FGF-1 trong việc lành vết thương liên quan đến sự kết hợp của các loại tế bào (bao gồm tế bào nội mô mạch máu, tế bào keratinocytes biểu bì và tế bào fibroblast da). Những loại tế bào này trong nuôi cấy có thể có các mối quan hệ liều lượng-đáp ứng FGF-1 khác nhau; tuy nhiên, chỉ có phản ứng của tế bào fibroblast là hình chuông. Do đó, mối quan hệ liều lượng-đáp ứng hình chuông trong việc lành vết thương da chủ yếu phản ánh tác động lên tế bào fibroblast. Một mối quan hệ liều lượng-đáp ứng hình chuông hẹp đòi hỏi phải định lượng chính xác FGF-1 để có lợi ích điều trị. Kết quả xác định khoảng liều thực tiễn để đạt được lợi ích này.
Từ khóa
#FGF-1 #lành vết thương #chuột cái BALB/cByJ #liều lượng-đáp ứng #điều trịTài liệu tham khảo
Adler AI, Boyko EJ, Ahroni JH, Smith DG (1999) Lower-extremity amputation in diabetes. The independent effects of peripheral vascular disease, sensory neuropathy, and foot ulcers. Diabetes Care 22:1029–1035
Andrews AG, Dysko RC, Spilman SC, Kunkel RG, Brammer DW, Johnson KJ (1994) Immune complex vasculitis with secondary ulcerative dermatitis in aged C57BL/6NNia mice. Vet Pathol Online 31:293–300. https://doi.org/10.1177/030098589403100301
Ashcroft GS, Mills SJ, Ashworth JJ (2002) Ageing and wound healing. Biogerontology 3:337–345
Blaber SI, Diaz J, Blaber M (2015) Accelerated healing in NONcNZO10/LtJ type 2 diabetic mice by FGF-1. Wound Repair Regen 23:538–549. https://doi.org/10.1111/wrr.12305
Bogue MA, Grubb SC (2004) The mouse phenome project. Genetica 122:71–74. https://doi.org/10.1007/s10709-004-1438-4
Boyle JP, Thompson TJ, Gregg EW, Barker LE, Williamson DF (2010) Projection of the year 2050 burden of diabetes in the US adult population: dynamic modeling of incidence, mortality, and prediabetes prevalence. Popul Health Metr 8:29
Cogan NG, Mellers AP, Patel BN, Powell BD, Aggarwal M, Harper KM, Blaber M (2018) A mathematical model for the determination of mouse excisional wound healing parameters from photographic data. Wound Repair Regen 26:136–143. https://doi.org/10.1111/wrr.12634
Davidson JM, Yu F, Opalenik SR (2013) Splinting strategies to overcome confounding wound contraction in experimental animal models. Adv Wound Care 2:142–148
Dunn L, Prosser HCG, Tan JTM, Vanags LZ, Ng MKC, Bursill CA (2013) Murine model of wound healing. J Vis Exp: JoVE. https://doi.org/10.3791/50265
Dutta S, Sengupta P (2016) Men and mice: relating their ages. Life Sci 152:244–248. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2015.10.025
Flurkey K, Currer JM, Harrison DE (2007) Mouse models in aging research. In: Fox JG, Davisson MT, Quimby FW, Barthold SW, Newcomer CE, Smith AL (eds) The mouse in biomedical research normative biology, husbandry, and models, vol III, 2nd edn. Elsevier, Burlington, pp 637–672
Gould L et al (2015) Chronic wound repair and healing in older adults: current status and future research. Wound Repair Regen 23:1–13. https://doi.org/10.1111/wrr.12245
Ioli V, Wiens B, Mellin T, Thomas K, Ellis R, Ryan J, White CJ (1992) Effect of topically applied acidic fibroblast growth factor (FGF-1) on healing of chronic venous stasis and diabetic ulcers. In: Abstracts of the 5th annual symposium on advanced wound care: 150
Keylock KT, Vieira VJ, Wallig MA, DiPietro LA, Schrementi M, Woods JA (2008) Exercise accelerates cutaneous wound healing and decreases wound inflammation in aged mice. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol 294:R179–R184. https://doi.org/10.1152/ajpregu.00177.2007
Kim DJ, Mustoe T, Clark RA (2015) Cutaneous wound healing in aging small mammals: a systematic review. Wound Repair Regen 23:318–339. https://doi.org/10.1111/wrr.12290
Linemeyer DL, Kelly LJ, Menke JG, Gimenez-Gallego G, DiSalvo J, Thomas KA (1987) Expression in Escherichia coli of a chemically synthesized gene for biologically active bovine acidic fibroblast growth factor. Biotechnology 5:960–965
Matuszewska B, Keogan M, Fisher DM, Soper KA, Hoe C-M, Huber AC, Bondi JV (1994) Acidic fibroblast growth factor: evaluation of topical formulations in a diabetic mouse wound healing model. Pharm Res 11:65–71
Mellers AP, Tenorio CA, Lacatusu DA, Powell BD, Patel BN, Harper KM, Blaber M (2018) Fine-sampled photographic quantitation of dermal wound healing senescence in aged BALB/cByJ mice and therapeutic intervention with fibroblast growth factor-1. Adv Wound Care 7:409–418. https://doi.org/10.1089/wound.2018.0801
Mellin TN, Cashen DE, Ronan JJ, Murphy BS, DiSalvo J, Thomas KA (1995) Acidic fibroblast growth factor accelerates dermal wound healing in diabetic mice. J Investig Dermatol 104:850–855
Mellin TN et al (1992) Acidic fibroblast growth factor accelerates dermal wound healing. Growth Factors (Chur, Switzerland) 7:1–14
Michaels J, Churgin SS, Blechman KM, Greives MR, Aarabi S, Galiano RD, Gurtner GC (2007) db/db mice exhibit severe wound-healing impairments compared with other murine diabetic strains in a silicone-splinted excisional wound model. Wound Repair Regen 15:665–670
Mogil JS et al (1999) Heritability of nociception I: responses of 11 inbred mouse strains on 12 measures of nociception. Pain 80:67–82. https://doi.org/10.1016/S0304-3959(98)00197-3
Mukai K, Nakajima Y, Urai T, Komatsu E, Nasruddin, Sugama J, Nakatani T (2016) 17 beta-Estradiol administration promotes delayed cutaneous wound healing in 40-week ovariectomised female mice. Int Wound J 13:636–644. https://doi.org/10.1111/iwj.12336
Nussbaum SR, Carter MJ, Fife CE, DaVanzo J, Haught R, Nusgart M, Cartwright D (2018) An economic evaluation of the impact, cost, and medicare policy implications of chronic nonhealing wounds. Value Health 21:27–32. https://doi.org/10.1016/j.jval.2017.07.007
Ortman JM, Velkoff VA, Hogan H (2014) An aging nation: the older population in the United States. United States Census Bureau Report Number P25-1140, pp 1–28
Reed MJ, Karres N, Eyman D, Vernon RB, Edelberg JM (2006) Age-related differences in repair of dermal wounds and myocardial infarcts attenuate during the later stages of healing. In Vivo 20:801–806
Rozengurt E (1985) The mitogenic response of cultured 3T3 cells: integration of early signals and synergistic effects in a unified framework. In: Cohen P, Houslay M (eds) Molecular mechanisms of transmembrane signalling, vol 4. Elsevier, Amsterdam, pp 429–452
Sen CK et al (2009) Human skin wounds: a major and snowballing threat to public health and the economy. Wound Repair Regen: Off Publ Wound Heal Soc Eur Tissue Repair Soc 17:763–771. https://doi.org/10.1111/j.1524-475X.2009.00543.x
Sheikh ES, Sheikh ES, Fetterolf DE (2014) Use of dehydrated human amniotic membrane allografts to promote healing in patients with refractory non healing wounds. Int Wound J 11:711–717. https://doi.org/10.1111/iwj.12035
Shipley GD, Keeble WW, Hendrickson JE, Coffey RJ Jr, Pittelkow MR (1989) Growth of normal human keratinocytes and fibroblasts in serum-free medium is stimulated by acidic and basic fibroblast growth factor. J Cell Physiol 138:511–518
Student (1908) The probable error of a mean. Biometrika 6(1):1–25
Swift ME, Kleinman HK, DiPietro LA (1999) Impaired wound repair and delayed angiogenesis in aged mice. Lab Invest 79:1479–1487
Tan Y et al (2008) Comparison of the therapeutic effects of recombinant human acidic and basic fibroblast growth factors in wound healing in diabetic patients. J Health Sci 54:432–440
Thomas KA, Rios-Candelore M, Gimenez-Gallego G, DiSalvo J, Bennett C, Rodkey J, Fitzpatrick S (1985) Pure brain-derived acidic fibroblast growth factor is a potent angiogenic vascular endothelial cell mitogen with sequence homology to interleukin 1. Proc Natl Acad Sci USA 82:6409–6413
US Census Bureau (2000) Population projections program. Populations Division, U.S. Census Bureau. Washington, D.C. https://www.census.gov/programs-surveys/popproj.html
Vanhooren V, Libert C (2013) The mouse as a model organism in aging research: usefulness, pitfalls and possibilities. Ageing Res Rev 12:8–21. https://doi.org/10.1016/j.arr.2012.03.010
Verdier-Sevrain S, Yaar M, Cantatore J, Traish A, Gilchrest BA (2004) Estradiol induces proliferation of keratinocytes via a receptor mediated mechanism. FASEB J 18:1252–1254. https://doi.org/10.1096/fj.03-1088fje
Wang W, Lin S, Xiao Y, Huang Y, Tan Y, Cai L, Li X (2008) Acceleration of diabetic wound healing with chitosan-crosslinked collagen sponge containing recombinant human acidic fibroblast growth factor in healing-impaired STZ diabetic rats. Life Sci 82:190–204
Xia X, Babcock JP, Blaber SI, Harper KM, Blaber M (2012) Pharmacokinetic properties of 2nd-generation fibroblast growth factor-1 mutants for therapeutic application. PLoS ONE 7:e48210
Yuan R et al (2012) Genetic coregulation of age of female sexual maturation and lifespan through circulating IGF1 among inbred mouse strains. Proc Natl Acad Sci 109:8224–8229. https://doi.org/10.1073/pnas.1121113109