Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Phương Pháp Thử Nghiệm Miễn Dịch Huỳnh Quang Sử Dụng Các Hạt Vi Nhựa Chelate Europium (III) Để Phát Hiện Nhanh, Định Lượng Và Nhạy Cảm Creatine Kinase MB
Tóm tắt
Isoenzyme creatine kinase MB rất quan trọng trong chẩn đoán nhồi máu cơ tim cấp tính (AMI). Một số xét nghiệm miễn dịch CK-MB có độ nhạy, độ chính xác và có sẵn cho ứng dụng lâm sàng, nhưng chúng là những quy trình tốn kém và mất thời gian. Hơn nữa, các xét nghiệm miễn dịch huỳnh quang chromatographic thông thường (FL-ICAs) đã gặp phải sự can thiệp của huỳnh quang nền và độ nhạy phân tích thấp. Một phương pháp FL-ICA nhanh và đơn giản với các hạt vi nhựa chelat Eu (III) đã được phát triển để xác định CK-MB trong 50uL mẫu huyết thanh bằng cách sử dụng đầu đọc que thử cầm tay bằng cách đo chiều cao đỉnh huỳnh quang của đường thử (HT) và đường đối chứng (HC) trong 12 phút. Phép thử là đáng tin cậy với hệ số tương quan tốt giữa tỷ lệ HT/HC và nồng độ CK-MB trong các mẫu. Dải tuyến tính là 0.85–100.29 ng/mL cho CK-MB, và giới hạn phát hiện (LOD) là 0.029 ng/mL. Các hệ số biến thiên (CV) intra- và inter-assay đều <10 % và tỷ lệ phục hồi trung bình từ 90.17 % -112.63 % cho CK-MB. Hệ thống hoạt động tốt trong các thí nghiệm can thiệp. Hơn nữa, một sự tương quan có ý nghĩa rất lớn (r = 0.9794, P < 0.001) giữa phương pháp này và hệ thống mini VIDAS bioMérieux thương mại có sẵn đã được đạt được cho việc đo 120 mẫu CK-MB. Những kết quả này chỉ ra rằng FL-ICA dựa trên các hạt vi nhựa chelat Eu (III) là đơn giản, nhanh chóng, có độ nhạy cao, đáng tin cậy và có thể tái hiện cho việc kiểm tra tại chỗ nồng độ CK-MB trong huyết thanh.
Từ khóa
#creatine kinase MB #nhồi máu cơ tim cấp tính #xét nghiệm miễn dịch #huỳnh quang #hạt vi nhựa chelat EuropiumTài liệu tham khảo
Thygesen K, Alpert JS, White HD (2007) Universal definition of myocardial infarction. J Am Coll Cardiol 50(22):2173–2195
Anderson JL, Adams CD, Antman EM, Bridges CR, Califf RM, Casey DJ, Chavey WN, Fesmire FM, Hochman JS, Levin TN, Lincoff AM, Peterson ED, Theroux P, Wenger NK, Wright RS, Smith SJ, Jacobs AK, Halperin JL, Hunt SA, Krumholz HM, Kushner FG, Lytle BW, Nishimura R, Ornato JP, Page RL, Riegel B (2007) ACC/AHA 2007 guidelines for the management of patients with unstable angina/non ST-elevation myocardial infarction: A report of the American College Of Cardiology/American Heart Association task force on practice guidelines (Writing Committee to revise the 2002 guidelines for the Management Of Patients with unstable angina/non ST-elevation myocardial infarction): developed in collaboration with the American College Of Emergency Physicians, the Society For Cardiovascular Angiography And Interventions, and the Society Of Thoracic Surgeons: endorsed by the American Association Of Cardiovascular And Pulmonary Rehabilitation and the Society For Academic Emergency Medicine. Circulation 116(7):e148–e304
Yang EH, Brilakis ES, Reeder GS, Gersh BJ (2006) Modern management of acute myocardial infarction. Curr Probl Cardiol 31(12):769–817
Tiwari RP, Jain A, Khan Z, Kohli V, Bharmal RN, Kartikeyan S, Bisen PS (2012) Cardiac troponins I and T: molecular markers for early diagnosis, prognosis, and accurate triaging of patients with acute myocardial infarction. Mol Diagn Ther 16(6):371–381
Friess U, Stark M (2009) Cardiac markers: A clear cause for point-of-care testing. Anal Bioanal Chem 393(5):1453–1462
Christenson RH, Vollmer RT, Ohman EM, Peck S, Thompson TD, Duh SH, Ellis SG, Newby LK, Topol EJ, Califf RM (2000) Relation of temporal creatine kinase-MB release and outcome after thrombolytic therapy for acute myocardial infarction. TAMI Study Group. Am J Cardiol 85(5):543–547
Norris RM, Whitlock RM, Barratt-Boyes C, Small CW (1975) Clinical measurement of myocardial infarct size. modification of a method for the estimation of total creatine phosphokinase release after myocardial infarction. Circulation 51(4):614–620
Rakowski T, Dziewierz A, Legutko J, Kleczynski P, Brzozowska-Czarnek A, Siudak Z, Urbanik A, Dubiel JS, Dudek D (2014) Creatine kinase-MB assessed in patients with acute myocardial infarction correlates with cardiac magnetic resonance infarct size at 6-month follow up. Hell J Cardiol 55(1):4–8
Christenson RH, Azzazy HM (1998) Biochemical markers of the acute coronary syndromes. Clin Chem 44(8 Pt 2):1855–1864
Apple FS, Murakami MM (2005) Cardiac troponin and creatine kinase MB monitoring during in-hospital myocardial reinfarction. Clin Chem 51(2):460–463
Zhou C, Zhang X, Huang X, Guo X, Cai Q, Zhu S (2014) Rapid detection of chloramphenicol residues in aquatic products using colloidal gold immunochromatographic assay. Sensors (Basel) 14(11):21872–21888
Saito Y, Kato D, Inano K (2014) Development of norovirus rapid detection kit "QuickNavi-Norovirus2". Rinsho Biseib utshu Jinsoku Shindan Kenkyukai Shi 24(2):45–50
Toriyama K, Suzuki T, Inoue T, Eguchi H, Hoshi S, Inoue Y, Aizawa H, Miyoshi K, Ohkubo M, Hiwatashi E, Tachibana H, Ohashi Y (2015) Development of an immunochromatographic assay kit using fluorescent silica nanoparticles for rapid diagnosis of acanthamoeba keratitis. J Clin Microbiol 53(1):273–277
Shen J, Zhou Y, Fu F, Xu H, Lv J, Xiong Y, Wang A (2015) Immunochromatographic assay for quantitative and sensitive detection of hepatitis B virus surface antigen using highly luminescent Quantum dot-beads. Talanta 142:145–149
Zhang J, Kruss S, Hilmer AJ, Shimizu S, Schmois Z, De La Cruz F, Barone PW, Reuel NF, Heller DA, Strano MS (2014) A rapid, direct, quantitative, and label-free detector of cardiac biomarker troponin T using near-infrared fluorescent single-walled carbon nanotube sensors. Adv Healthc Mater 3(3):412–423
Liu Y, Zhang Z, Wang Y, Zhao Y, Lu Y, Xu X, Yan J, Pan Y (2015) A highly sensitive and flexible magnetic nanoprobe labeled immunochromatographic assay platform for pathogen Vibrio parahaemolyticus. Int J Food Microbiol 211:109–116
Harma H, Soukka T, Lovgren T (2001) Europium nanoparticles and time-resolved fluorescence for ultrasensitive detection of prostate-specific antigen. Clin Chem 47(3):561–568
Soukka T, Paukkunen J, Harma H, Lonnberg S, Lindroos H, Lovgren T (2001) Supersensitive time-resolved immunofluorometric assay of free prostate-specific antigen with nanoparticle label technology. Clin Chem 47(7):1269–1278
Kokko L, Lovgren T, Soukka T (2007) Europium (III)-chelates embedded in nanoparticles are protected from interfering compounds present in assay media. Anal Chim Acta 585(1):17–23
Zhang F, Zou M, Chen Y, Li J, Wang Y, Qi X, Xue Q (2014) Lanthanide-labeled immunochromatographic strips for the rapid detection of pantoea stewartii subsp. stewartii. Biosens Bioelectron 51:29–35
Xu W, Chen X, Huang X, Yang W, Liu C, Lai W, Xu H, Xiong Y (2013) Ru(phen)3(2+) doped silica nanoparticle based immunochromatographic strip for rapid quantitative detection of beta-agonist residues in swine urine. Talanta 114:160–166
Xia X, Xu Y, Ke R, Zhang H, Zou M, Yang W, Li Q (2013) A highly sensitive europium nanoparticle-based lateral flow immunoassay for detection of chloramphenicol residue. Anal Bioanal Chem 405(23):7541–7544
Xia X, Xu Y, Zhao X, Li Q (2009) Lateral flow immunoassay using europium chelate-loaded silica nanoparticles as labels. Clin Chem 55(1):179–182
Liang RL, Xu XP, Liu TC, Zhou JW, Wang XG, Ren ZQ, Hao F, Wu YS (2015) Rapid and sensitive lateral flow immunoassay method for determining alpha fetoprotein in serum using europium (III) chelate microparticles-based lateral flow test strips. Anal Chim Acta 891:277–283
Ham JY, Jung J, Hwang BG, Kim WJ, Kim YS, Kim EJ, Cho MY, Hwang MS, Won DI, Suh JS (2015) Highly sensitive and novel point-of-care system, aQcare chlamydia TRF kit for detecting chlamydia trachomatis by using europium (Eu) (III) chelated nanoparticles. Ann Lab Med 35(1):50–56
Yang Q, Gong X, Song T, Yang J, Zhu S, Li Y, Cui Y, Li Y, Zhang B, Chang J (2011) Quantum dot-based immunochromatography test strip for rapid, quantitative and sensitive detection of alpha fetoprotein. Biosens Bioelectron 30(1):145–150
Anfossi L, Calderara M, Baggiani C, Giovannoli C, Arletti E, Giraudi G (2010) Development and application of a quantitative lateral flow immunoassay for fumonisins in maize. Anal Chim Acta 682(1–2):104–109
McDonnell B, Hearty S, Leonard P, O’Kennedy R (2009) Cardiac biomarkers and the case for point-of-care testing. Clin Biochem 42(7–8):549–561
Peetz D, Schweigert R, Jachmann N, Post F, Schinzel H, Lackner KJ (2006) Method comparison of cardiac marker assays on PATHFAST, StratusCS, AxSYM, immulite 2000, triage, elecsys and cardiac reader. Clin Lab 52(11–12):605–614
Kim TK, Oh SW, Hong SC, Mok YJ, Choi EY (2014) Point-of-care fluorescence immunoassay for cardiac panel biomarkers. J Clin Lab Anal 28(6):419–427
Kim WJ, Kim BK, Kim A, Huh C, Ah CS, Kim KH, Hong J, Park SH, Song S, Song J, Sung GY (2010) Response to cardiac markers in human serum analyzed by guided-mode resonance biosensor. Anal Chem 82(23):9686–9693