Phương pháp CE để đo lường độc tính ánh sáng in vitro

Springer Science and Business Media LLC - Tập 62 - Trang 325-329 - 2005
I. Hinneburg1, S. Kempe1, H.-H. Rüttinger2, R.H.H. Neubert1
1Institute of Pharmaceutics and Biopharmaceutics, Department of Pharmacy, Martin-Luther-University Halle-Wittenberg, Halle, Germany
2Institute of Pharmaceutical Chemistry, Department of Pharmacy, Martin-Luther-University Halle-Wittenberg, Halle, Germany

Tóm tắt

Bài báo này trình bày một thiết lập thí nghiệm sử dụng điện di mao quản với phát hiện điện hóa và UV để kiểm tra độc tính ánh sáng của các chiết xuất thực vật và các thành phần qua việc tiêu thụ oxy và tạo ra các loài oxy phản ứng khi chiếu sáng bằng ánh sáng nhìn thấy. Thiết lập thí nghiệm đã được sử dụng để kiểm tra độc tính ánh sáng của các chiết xuất kiều mạch khác nhau và các chất chiết xuất riêng lẻ từ thực vật. Các chiết xuất kiều mạch cho thấy sự khác biệt trong hành vi độc tính ánh sáng của chúng, điều này có thể do sự khác biệt trong thành phần phytochemical. Sàng lọc các thành phần riêng lẻ đã tiết lộ rằng rutin và quercetin một mình không gây độc tính ánh sáng, nhưng quercetin kết hợp với hypericin và chlorophyll đã gây ra sự tiêu thụ oxy đáng kể. Đã chứng minh rằng thiết bị này là một công cụ có giá trị để sàng lọc các phản ứng độc tính ánh sáng tiềm năng của các chiết xuất thực vật và các thành phần riêng lẻ trong điều kiện in vitro.

Từ khóa

#độc tính ánh sáng #điện di mao quản #chiết xuất thực vật #oxy phản ứng #phytochemical

Tài liệu tham khảo

Pinnell S (2003) J Am Acad Dermatol 48:1–19 Yamamoto Y (2001) J Dermatol Sci 27 Suppl. 1:S1–S4 F’guyer S, Afaq F, Mukhtar H (2003) Photodermatol Photoimmunol Photomed 19:56–72 Schempp C, Schöpf E, Simon J (2002) Hautarzt 53:93–97 Ebermann R, Alth G, Kreitner M, Kubin A (1996) J Photochem Photobiol B: Biol 36:95–97 Ferguson J (2002) Photodermatol Photoimmunol Photomed 18:262–9 Podhaisky H, Riemschneider S, Wohlrab W (2002) Pharmazie 57:30–33 Wilhelm K, Biel S, Siegers C (2001) Phytomedicine 8:306–309 Jones P, King A, Earl L, Lawrence R (2003) Toxicol In Vitro 17:471–80 Radschuweit A, Rüttinger HH, Nuhn P (2001) J Chromatogr A 937:127–134 Theurer C, Gruetzner K, Freeman S, Koetter U (1997) Pharm Pharmacol Lett 7:113–115 Samel D, Donella-Deana A, de Witte P (1996) Planta Med 62:106–110 Rozanowska M, Ciszewska J, Korytowski W, Sarna T (1995) J Photochem Photobiol B: Biol 29:71–77 Rice-Evans C, Miller N, Paganga G (1996) Free Radical Biol Med 20:933–956 Milde J, Elstner E, Grassmann J (2004) Phytomedicine 11:105–13 Brockmann H, Weber E, Pampus G (1952) Liebigs Ann Chem 575:53–83 Hinneburg I, Neubert RHH (2005) J Agric Food Chem 53:3–7 Dechene E (1951) J Americ Pharm Assoc 40:495–497 Nishie K, Waiss AC, Keyl AC (1968) Photochem Photobiol 8:223–229 Takahama U (1985) Photochem Photobiol 42:89–91 Heijnen C, Haenen G, Oostveen R, Stalpers E, Bast A (2002) Free Rad Res 36:575–581